sMiaipm pP PARASITOLOGIE DE L’HOMME ET DES ANIMAUX DOMESTIQUES Par- L. GEDOELST, Professeur à i’Êcole de Médecine, de -l’Etat, 1.A1a\1 A Çuragheny-Bruxellês.'. . A1'/ . Avêc . 327. figures ( dans le texte. . LIERRE BRUXELLES \o->. VÀN IN & rÇi, mâle. (D’après Marotei. ) 101 Schistosoma bovis : dans la veine porte du bœuf et du mouton. Schistosoma bomfordi : dans les vaisseaux mésentériques du zébu (Inde) et chez les bovidés en France. Schistosoma spindale : dans les vaisseaux mésentériques du zébu (Inde). Schistosoma indicum : dans le système porte du cheval et de l’âne (Inde). 2. Bilharziella Looss, 1899. Corps aplati, lancéolé dans les deux sexes; mâles plus grands que femelles; pore génital du mâle sur le côté gauche du corps, nota- blement en arrière de la ventouse ventrale; tes- ticules nombreux, disposés en deux séries linéaires sur les côtés du tronc intestinal impair; pore génital de la femelle médian, immédiatement en arrière de la ventouse ventrale; utérus court, ne renfermant jamais plus d’un œuf à la fois; œuf allongé en avant, muni d’une petite épine termi- nale en arrière. Parasites dans le système circula- toire des oiseaux. Bilharziella polonica : parasite du canard do- mestique (Pologne). b. MÉTASTATIQUES. Développement sans générations intermédiaires, mais avec formation de deux formes larvaires et passage à un hôte intermédiaire. Holostomiens. Ventouse orale terminale ou subterminale et ventouse ventrale peu développées; en arrière de celle-ci un appareil de fixation de forme va- riable; corps le plus souvent divisé en une partie antérieure fixatrice et une partie postérieure renfermant les organes génitaux; branches intestinales non diverticulées s’étendant jusqu’à l’extrémité posté- rieure du corps; pore génital terminal et plus ou moins dorsal; Fig. 141. — Bilharziella polonica : femelle à gau- che, mâle à droite. JD’a- près Luehe.) 102 vitellogènes fort développés; utérus faiblement contourné et ne ren- fermant qu’un petit nombre d’œufs très gros. Adultes, parasites des reptiles, des oiseaux et des mammifères. Hôtes inter- médiaires : mollusques, poissons, batraciens, oiseaux et mammifères. 1. Hemistomum Diesing, 1850. Partie postérieure du corps sensiblement cylin- drique; partie antérieure aplatie, à bords laté- raux s’incurvant vers la face ventrale; ventouse ven traie généralement pas plus grande que la ventouse orale; organe fixateur postérieur sous la forme d’une papille compacte qui recouvre souvent la plus grande partie de la face ventrale antérieure et la ventouse ventrale. Hemistomum cilatum : dans l’intestin grêle du chien. Fig. 142. — Hemisto- mum spathaceum (D’après LueiIe.) 2. Strigea Abildgaard, 1790 Corps divisé en deux parties par un étranglement circulaire; partie antérieure transformée en une coupe par la fusion des bords latéraux; à l’intérieur de la coupe, la ventouse ventrale et l'appareil de fixation; pore génital s’ouvrant au sommet d’une papille conique au fond de la bourse copulatrice; celle-ci s’ouvre à l’extrémité pos- térieure du corps. Strigea gracilis : dans l’intestin du canard domestique (Pologne). Fig. 143. — Strigea strigis. ( D’après Lukhe. B. Némathelminthes. Vers de forme généralement cylindrique, à corps revêtu d’une cuticule. 1. NÉMATODES. Extrémité antérieure dépourvue d’une trompe armée de crochets; appareil digestif plus ou moins complet. a. ANGUILLULIDÉS. Fort petits nématodes; œsophage à deux bulbes; souvent un aiguillon chitineux ou des dents dans la cavité buccale; deux spi- culés égaux, souvent aussi une bourse copulatrice; vulve s’ouvrant au milieu du corps. Vivent le plus souvent libres dans l’eau douce, le sol ou les substances en macération, quelques-uns parasites des plantes, plus rarement des animaux. 1. Anguillulina Gervais et Vam Beneden, 1859. Un aiguillon dans la cavité buccale; bourse copulatrice sans papilles; utérus asymétrique. Anguillulina putrefaciens : vit dans les oignons; a été trouvée dans les vomissements d’un malade. 2. Rhabditis Dujardin, 1845. Cavité buccale dépourvue de dents; pas de lignes latérales; deux spiculés avec une pièce accessoire. Rhabditis pellio : a été observé dans le vagin chez une femme; a été signalé à plusieurs reprises dans des lésions de la peau chez le chien; normalement vit dans le sol. Rhabditis niellyi : a été rencontré dans des papules siégeant sur les membres d’un jeune garçon. b. ANGIOSTOMIDÉS. Nématodes à développement hétérogonique, comportant une gé- nération libre rhabditiforme et une génération filariforme. 104 1. Strongyloides Grassi, 1879. Forme parasite à bouche simple, sans armature chitineuse, en- tourée de quatre lèvres; œsophage très long, subcylindrique; herma- phrodite ou parthénogénétique (?). Strongyloides stercoralis : vit dans le tube digestif de l’homme et y détermine de l’irritation, qui se tra- duit par des poussées diarrhéiques. Strongyloides longus : vit dans l’intestin grêle du mouton, du porc, du lapin, etc. 2. Probstmayria Ransom, 1907, Bouche pourvue de six lèvres; extrémité postérieure du corps terminée en pointe aiguë; œsophage comportant une partie longue et cylindrique et une partie courte et piriforme renfermant un appareil dentaire; deux spiculés sensible- ment égaux; pas de bourse copulatrice ; multiples papilles postanales petites; vulve vers le milieu du corps; œufs peu nom- breux éclosant dans l’utérus. Probstmayria vivipara : dans le gros intestin du cheval et de l’âne. c. GNATHOSTOMIDÉS. Téguments recouverts totalement ou partiellement de minuscules épines à pointes multiples; tête globuleuse recouverte de spinules; bouche à deux lèvres; deux spi- culés; vulve en arrière du milieu du corps. Vivent dans l’estomac des vertébrés, spé- cialement des mammifères. Fig. 144. — Strongyloides stercoralis : femelle (D’après Looss.) Fig. 145. — Probstmayria vivipara mâle. (D’après Ransom.) Gnathostoma Owen, 1836. Caractères de la famille. Gnathostoma siamense : a été retiré d’une tumeur sous-cutanée chez une Siamoise (parasite erratique?). Gnathostoma hispidum : vit dans l’estomac du porc (Turkestan, Hongrie, Congo), aussi du bœuf. Gnathostoma spinigerum : a été trouvé dans l’estomac du chat domestique (Inde). d. FILARIIDÉS. Nématodes à corps allongé; bouche entourée de papilles ou de deux lèvres; œsophage mince sans renflement; un spiculé ou deux spiculés inégaux; vulve présente ou absente, dans le premier cas s’ouvrant le plus souvent dans la moitié antérieure du corps; ordinairement ovovivipares. Fig. 146 — Gnathostoma siamense. (D’après Le- VINSEN.) 1. Dracunculus Kniphoff, 1759. Vulve absente chez la femelle gravide, la décharge des organes génitaux s’effectuant par la bouche; mâles inconnus. Dracunculus medinensis : dans le tissu conjonctif sous-cutané de l’homme, du bœuf, du cheval, du chien, etc. Embryons dans Cyclops. 2. Filaria Müller, 1787. 'Ce genre constitue un groupement d’espèces, dont les caractères génériques doivent être précisés. Ce sont des nématodes filiformes, à vulve située toujours à l’extrémité antérieure; parasites dans les séreuses et le tissu conjonctif; leurs embryons (Microfilaria) parfois dans le sang ou la lymphe. Filaria clava : dans le tissu conjonctif péritrachéal du pigeon domestique. Filaria acutiuscula • sous la peau chez le chien. Filaria (Loa) loa : dans le tissu conjonctif sous-cutané, parfois aussi dans le péricarde, chez l’homme; embryons (Microfilaria diurna) dans le sang. Filaria labialis : rencontrée dans une pustule à la face interne de la lèvre supérieure chez l’homme. Filaria bancrofti ; dans le système lymphatique de l’homme; em- bryons (Microfilaria nocturna) dans le sang. Filaria osleri : dans la trachée du chien. Filaria evansi : dans les artères pulmonaires du dromadaire; embryons dans le sang. Filaria irritons : détermine la dermite granuleuse chez le cheval et l’âne. Filaria hœmorrhagica . dans le tissu conjonctif sous-cutané et intermusculaire ou interfasciculaire du cheval et de l’âne. Filaria conjunctivœ : dans l’œil chez l’homme, le cheval et l’âne. Filaria recondita : dans le tissu adipeux près du hile du rein chez le chien; embryons dans le sang (hématozoaires de Lewisj. Filaria perstans : dans le mésentère de l’homme; embryons dans le sang. Filaria mazzantii : sous la peau du cou du pigeon. Filaria gastrophila : dans l’estomac au voisinage du cardia et dans la partie inférieure de l’œsophage chez le chat. Filaria juncea : dans le tissu conjonctif à la racine du mésentère chez l’homme; embryons dans le sang. Filaria grassii : parasite du chien; embryons dans le sang. Filaria blini : dans la portion thoracique de l’aorte postérieure du buffle commun. Filaria taniguchii : a été trouvée dans un ganglion enflammé de l’aine chez un japonais; probablement identique à Filaria bancrofti. Filaria cordicola : dans le tissu conjonctif du cœur chez l’âne et dans la cavité abdominale chez le cheval (Afrique orientale allemande). Filaria herpetica : dans une affection cutanée papuleuse chez le cheval. Filaria spicularia : dans le tissu conjonctif sous-péritonéal de l’autruche du Cap. Filaria (?) anatis : autour du cœur du canard. Filaria (?) cygni : dans la cavité abdominale du cygne. Filaria (?) oculi canini : dans le corps vitré du chien. 107 Filaria (?) kilimarœ : dans la cavité abdominale d’un nègre. Microfilaria romanorum : trouvée une fois dans le sang d’une roumaine. Microfilaria powelli : dans le sang d’un homme (Bombay). Microfilariaphilippinensis : dans le sang de rhomme(IlesPhilippines). Microfilaria ochmanni •• dans le sang du chien (Afrique orien- tale allemande). Microfilaria numidœ : dans le sang de la pintade commune et de la pintade ptilorhynque. Microfilaria seguini : dans le sang des poules (Tonkin). Microfilaria sanguinis equi ■ dans le sang des équidés (Afrique). Des microfilaires ont été observées dans le sang des bovidés dans l’Inde et l’Afrique. 3. Agamofilaria Stiles, 1907. Formes immatures de filaires. Agamofilaria ocnli : a été trouvée dans le cristallin de l’homme Agamofilaria georgiana • a été retirée d’un ulcère chez une né- gresse (Etats-Unis). Agamofilaria palpebralis : a été recueillie dans une tumeur de la paupière supérieure chez un garçon. 4. Setaria Viborg, 1795. Armature buccale consistant en un cercle péribuccal saillant, lar- gement échancré sur les parties latérales, un peu moins dans les ré- gions dorsale et ventrale; extrémité caudale, dans les deux sexes, pourvue de deux appendices particuliers. Parasites dans les séreuses des herbivores, notamment des ruminants. Setaria equina : dans le péritoine du cheval, de l’âne, du mulet, du bœuf, du buffle; aussi dans la gaine vaginale, le sac pleural, entre la dure-mère et la pie-mère cérébrales, dans l’intestin, le tissu conjonctif sous-cutané, l’humeur aqueuse. Setaria labiato-papillosa : dans les séreuses du bœuf; aussi dans le globe oculaire; formes jeunes dans l’œil du cheval. Setaria sp. ■ à la surface du foie du porc à Hué, peut-être iden- tique à Setaria congolensis du Phacochère (Congo français). 5. Dirofilaria Railliet et Henry, 1911. Corps très long, filiforme, à cuticule striée en travers et sans bosses; bouche petite, inerme, entourée de six papilles céphaliques; mâles à queue spiralée avec les papilles préanales et souvent une partie des postanales volumineuses; spiculés inégaux; femelles à vulve située vers le 1/100 antérieur du corps; vivipares. Parasites dans le cœur ou les vaisseaux, le tissu conjonctif sous-cutané des mammi- fères; embryons circulant dans le sang (1). Dirofilaria immitis * dans l’appareil circulatoire du chien, aussi dans la cavité thoracique, les bronches, l’œsophage, le foie, l’estomac, le tissu conjonctif sous-cutané et intermusculaire; embryons dans le sang. Dirofilaria magalhâesi dans le ventricule gauche du cœur chez l’homme. Dirofilaria repens : dans le tissu conjonctif sous-cutané du chien. 6. Thelazia Bosc, 1819. Bouche sans lèvres; capsule buccale à bord antérieur retroussé en dehors et découpé en six festons; deux papilles céphaliques laté- rales et quatre submédianes; pas de pharynx; mâle à queue obtuse ordinairement recourbée en crochet, sans ailes latérales; nombreuses papilles préanales, dont une médiane impaire, au-dessus du cloaque; trois ou quatre (?) paires de papilles postanales; deux papilles laté- rales terminales à l’extrémité caudale de la femelle; vulve s’ouvrant un peu en arrière de la terminaison de l’œsophage; utérus à deux branches postérieures, vivipares. Parasites dans les conduits excré- teurs des glandes lacrymales des mammifères, sous les paupières ou à la surface de l’œil, exceptionnellement à l’intérieur du globe oculaire. Thelazia rhodesi : chez le bœuf et le buffle commun. Thelazia gulosa : chez le bœuf. Thelazia alfortensis : chez le bœuf. (1) Nous devons cette diagnose encore inédite aux créateurs du genre, MM. Rail- liet et Henry, qui ont bien voulu nous la communiquer; nous les remercions vive- ment pour leur grande obligeance. 109 Thelazia leesei : dans l’humeur vitrée d’un chameau atteint d’ophtalmie. Thelazia lacrymalis : chez le cheval. Thelazia callipœda : chez le chien. 7. Onchocerca Diesing, 1841. Filariidés à cuticule épaisse, striée en travers et renforcée à l’ex- térieur par des épaississements spiroïdes souvent interrompus au niveau des champs latéraux; papilles du mâle souvent asymétriques, toujours 4 papilles paranales; deux spiculés inégaux terminés le plus grand en pointe, le plus court en massue à crochet latéral rétrograde; femelles très longues, à corps en général étroitement spiralé, à queue obtuse, à vulve située à peu de distance de l’extrémité antérieure; utérus à deux branches; vivipares. Parasites dans les tissus de sub- stance conjonctive des mammifères. Onchocerca reliculata : dans le ligament suspenseur du boulet, les tendons fléchisseurs du pied, les parois des vaisseaux et le tissu conjonctif sous-cutané de la région des tendons chez le cheval. Onchocerca cervicalis : dans le liga- ment cervical du cheval. Onchocerca armillata : à la face in- terne de la tunique moyenne de l’aorte du bœuf, du zébu et du buffle. Onchocerca fasciaia : dans un nodule du tissu conjonctif sous- cutané de la tête d’un dromadaire. Onchocerca volvulus : dans des nodules fibreux sous-cutanés chez l’homme (Afrique occidentale). Onchocerca gibsùni : dans des nodules fibreux sous-cutanés dans la région de la poitrine chez les bovidés (Australie). Onchocerca (?) lienalis ’ dans la capsule de la rate du bœuf (Etats-Unis). Onchocerca gutturosa : sur le ligament cervical des bovidés (Con- stantine). Onchocerca (?) capræ : dans les muscles de la langue d’une chèvre (Turkestan). Fig. 147. — Onchocerca volvulus partie moyenne du corps. (D’après Fuel i.eborn.) 110 8. Spiroptera Rudolphi, 1819. Corps plus court et plus épais que chez Filaria ; vulve moins rapprochée de la bouche; queue des mâles en spirale et munie d’ailes latérales membraneuses. Parasites dans les tumeurs de l’œsophage, de l’estomac ou de l’intestin des vertébrés. Spiroptera megastoma : dans des tumeurs du sac droit de l’estomac du cheval et de l’âne. Spiroptera microstoma : en liberté dans l’estomac du cheval, de l’âne et du mulet. Spiroptera strongylina : dans l’estomac du porc. Spiroptera sanguinolenta : dans des tumeurs de l’estomac et de l’œsophage du chien; aussi dans des tumeurs de l’aorte, dans les ganglions lymphatiques, dans l’appareil respiratoire et dans l’intestin. Spiroptera pectinifera : dans le gésier de la poule. Spiroptera perforons : dans le ventricule succenturié de la poule (Italie). 9. Oxyspirura Drasche (in Stossich, 1897). Bouche sans lèvres, entourée de 2 papilles latérales et 4 sub- médianes; queue se terminant en pointe aiguë; pas de bourse caudale; deux spiculés inégaux, un long et filiforme, l’autre court et épais; vulve s’ouvrant dans la partie postérieure du corps, un peu en avant de l’anus. Oxyspirura mansoni : sous la membrane nictitante de la poule, du dindon et du paon. Oxyspirura parvorum ; sous la membrane nictitante de la poule (Queensland). 10. Gongylonema Molin, 1857. Extrémité antérieure du corps porte des différenciations de la cuti- cule en forme d’écussons; immédiatement en arrière de la bouche existent deux dépressions semi-lunaires simulant des ventouses. Gongylonema scutaîum : dans l’épithélium de l’œsophage (portion thoracique) du bœuf, du zébu, du cheval, du mouton et de la chèvre. Gongylonema verrucosum : dans l’estomac du mouton et du zébu. Gongylonema ingluvicola : dans le jabot d’une poule à Washington. 111 11. Dispharagus Dujardin, 1845. Œsophage formé de deux parties distinctes : une antérieure étroite, tubuleuse, une postérieure longue, épaisse, suivie d’un ventricule encore plus épais; de l’extrémité céphalique partent quatre cordons cutanés dirigés en arrière, parfois repliés ensuite en avant; mâles à extrémité caudale plus ou moins contournée, munie d’ailes latérales; deux spiculés inégaux; femelles à ovaire simple; ovipares. Parasites du tube digestif des oiseaux et des mammifères (œso- phage, estomac). Dispharagus iincinatus : dans l’œsophage, le ventricule succenturié et l’intestin grêle de l’oie et du canard. Dispharagus spiralis : dans l’œsophage et l’in- testin de la poule. Dispharagus nasutus : dans le ventricule suc- centurié et le gésier de la poule. Dispharagus laticeps : dans l’œsophage et le ventricule succenturié de la poule. Dispharagus hamulosus : dans le gésier de la poule. Dispharagus reticulatus : dans des tumeurs du pharynx du cheval. Fig 148. — Disphara- gus uncinatus : ex- trémité céphalique. (D’après v. Linstovv.) 12. Tropisurus Diesing, 1835. Mâles à corps filiforme, inerme ou armé d’épines; queue droite, aiguë, excavée en dessous; deux spiculés inégaux; femelles à corps subglobuleux, marqué de quatre bandes longitudinales équidis- tantes; queue courte, conique; vulve dans la partie postérieure du corps; ovipares. Parasites entre les tuniques de l’œsophage, du ventricule succenturié et du gésier des oiseaux. Tropisurus fissispinus : dans le ventricule succenturié du ca- nard. Fig. 149 — Tropisnrns Jtssispittus : femelle à gauche, extrémité caudale du mâle à droite. (D’après v. Lin- STOW1 13. Simondsia Cobbold, 1864. Femelle présentant vers la partie postérieure du corps une ex- croissance tégumentaire en forme de rosette renfermant, outre un pro- longement de l’intestin, un utérus très développé, qui émet de nom- breuses branches terminées en cul-de-sac; mâle à deux spiculés inégaux. Simondsia paradoxa : mâles libres dans l’estomac du porc; fe- melles enfermées dans de petites tumeurs ou kystes, d’où elles pro- jettent leur tête par un étroit orifice dans la cavité de l’estomac. e. MERMITHIDÉS. Nématodes à cuticule à striation oblique, dépourvue d’orifice buccal et d’anus; extrémité céphalique portant six papilles; mâles à deux spiculés et trois à quatre séries de nombreuses papilles. Agamomermis Stiles, 1903. Groupe de formes immatures. Agamomermis restiformis ; parasite signalé comme ayant été recueilli de l’urèthre d’un homme (Amérique). Filaria (?) hominis oris : a été observée dans la bouche d’un enfant; c’est probablement un Mermis. f. TRICHOTRACHÉLIDÉS. Corps allongé, à partie antérieure longue et mince, à partie pos- térieure plus ou moins renflée; mâles munis d’un spiculé simple ou dépourvus de spiculés; femelles à ovaire simple; vulve à l’origine de la partie renflée du corps; ovipares ou ovovivipares. Parasites des vertébrés. 1 Trichuris Rœderer et Wagler, 1761. Partie antérieure du corps longue et filiforme; partie postérieure brusquement renflée et plus courte; extrémité caudale arrondie et obtuse; anus terminal; mâles à extrémité postérieure spiralée et un spiculé; femelles à ovaire simple; vulve à l’origine de la partie renflée; œufs en forme de tonneau. Parasites du gros intestin et du cæcum des vertébrés. 113 Trichuris trichiura ‘ dans le cæcum de l’homme, parfois dans l’appendice et le colon, rarement dans l’intestin grêle. Trichuris crenata : dans le gros intestin et le cæcum du porc. Trichuris affinis : dans le gros intestin et le cæcum des bovidés, du mouton, de la chèvre et peut-être aussi du porc. Trichuris depressiuscula '■ dans le gros intestin et le cæcum du chien. Trichuris serrata : dans l’intestin du chat domestique. Trichuris campanula : dans l’intestin du chat domestique. Trichuris unguiculata : dans le cæcum du lapin domestique. Trichuris echinophylla ■ parasite du dromadaire. Trichuris discolor : parasite du zébu. 2. Trichosoma Rudolphi, 1819. Partie postérieure du corps légèrement et progressivement renflée. Parasites des vertébrés. Trichosoma plica : dans la vessie urinaire du chien. Trichosoma columbœ : dans le gros intestin du pigeon. Trichosoma retusum : dans les cæcums de la poule et de la pintade. Trichosoma anatis : dans les cæcums de l’oie domestique. Trichosoma caudinflatum dans l’intestin du faisan commun et de la poule. Trichosoma delicatissimum : dans l’intestin du faisan. Trichosoma aerophilum : dans la trachée du chat. Trichosoma collare : dans l’intestin de la poule. Trichosoma dubium : dans les cæcums de la poule. Trichosoma gallinum : dans le duodénum de la poule. Trichosoma strumosum : dans l’épithélium œso- phagien des jeunes faisans. Trichosoma coniortum : dans l’œsophage des jeunes canards. Trichosoma felis cati : dans la vessie du chat domestique. Fig. i5o. — Trichoso- ma contortum : ex trémité caudale du mâle. (D'après v. Lin- stovv.) Trichosoma lineare : dans l’intestin grêle du chat. Trichosoma annulatum : sous l’épithélium de l’œsophage de la poule. 3. Trichinella Railliet, 1895. Très petits nématodes; mâles sans spiculés, avec deux appendices coniques à l’extrémité caudale; femelles vivipares; un seul ovaire; vulve au cinquième antérieur du corps. Parasites des mammifères. Trichinella spiralis : adultes dans l’intestin, larves enkystées dans le tissu musculaire chez l’homme, le porc, le lapin, le cobaye, le veau, l’agneau, le cheval, le chien, le chat et de nombreux autres mammifères (rongeurs, carnassiers, etc.). g. EUSTRONGYLIDÉS. Tégument strié transversalement, armé ou inerme; bouche sans lèvres, munie de 6, 12 (ou 18) papilles disposées en un ou deux cercles; œsophage très long sans renflement; anus terminal chez la femelle; vulve ou dans le voisinage immédiat de l’anus ou dans la partie antérieure du corps; vagin très long; mâles munis d’un spiculé extraordinairement long; bourse cupuliforme dépourvue de côtes. 1. Eustrongylus Diesing, 1851. Extrémité antérieure inerme; 6 papilles buccales disposées en un cercle; vulve antérieure. Parasites dans le rein des mammifères carnassiers. Eustrongylus visceralis • dans le bassinet du chien, du bœuf, du cheval, du porc et de l’homme. 2. Hystrichis Dujardin, 1845. Extrémité antérieure spinulée; 6 papilles buccales peu apparentes; vulve au voisinage de l’anus. Parasites des oiseaux aquatiques. Hystrichis iricolor : dans les tissus de l’estomac et de l’œso- phage du cana'd domestique. 115 Hystrichis pachycephalus : dans des kystes de l’estomac du cygne. 3. Eustrongylides Jægerskiôld, 1908. Extrémité antérieure inerme; 12 (ou 18) papilles buccales disposées en deux cercles; vulve au voi- sinage de l’anus. Parasites des oiseaux aquatiques. Eustrongylides elegans : dans des tubercules de l’œsophage et de l’estomac du canard domestique. Eustrongylides tubifex : parasite dans l’intestin du canard. Eustrongylides papillosus : dans des tubercules de l’œsophage et de l’estomac du canard et de l’oie. Fig. i5i. — riystrichis pachycephnlus : extré- mité céphalique. (D’a- près v. Linstoyv.) h. STRONGYLIDES. Bouche nue ou munie d'une armature chitineuse; mâles pourvus généralement de deux spiculés et toujours d’une bourse caudale à rayons; généralement deux ovaires; vulve de situation variable. a. Cloacininés. L’appareil génital s’ouvre avec l’intestin dans une cavité commune ou cloaque. Cloacina v. Linstow, 1898. Caractères de la famille. Cloacina octodactyla : dans les bronches du chien. Fig. 1S2. — Clociciria octodactyla extrémité caudale du mâle. (D’après v. Linstow. 3. Métastrongylinés Bouche dépourvue d’armature chitineuse; deux spiculés égaux; deux ovaires. 116 1. Metastrongylus Molin, 1861. Bouche à six lèvres; bourse caudale à côtes postérieures et pos- térieures externes grêles, les autres épaisses; les moyennes sont dédoublées; spiculés très longs, grêles, striés; vulve immédiatement en avant de l’anus; utérus convergents Parasites dans les bronches des suidés, accidentellement chez l’homme. Metastrongylus apri : parasite du porc, du mou- ton ; a été rencontré aussi chez l’homme. Metastrongylus brevivaginatus : parasite du porc. Fig. i53. — Metastrongy- lus apri : un des lobes de la bourse caudale. (D’après Raillirt.) 2. Hæmonchus Cobb, 1898. Bourse caudale trilobée, à lobe médian asymétrique porté par le lobe droit; spiculés courts accompagnés d’une pièce accessoire; vulve s’ouvrant dans la moi- tié postérieure du corps et protégée par des appendices tégumentaires; utérus diver- gents; vers l’extrémité anté- rieure deux denticules laté- rales dirigées en arrière. Parasites de la caillette, ra- rement du duodénum des ru- minants. Hœmonchus contortus : parasite du bœuf, du mou- ton, de la chèvre, etc.; ce nématode a été trouvé une fois chez l’homme au Brésil. Fig. 134. — Hœmonchus coniortus : bourse caudale du mâle. (D’après Raii.met.) Hœmonchiis longistipes : parasite du dromadaire (Tchad). 3. Dictyocaulus Railliet et Henry, 1907. Bouche circulaire, nue; bourse caudale à côtes postérieures lo- bées, moyennes simples, bilobées ou bifides, antérieures dédoublées à branche d’avant plus courte; les autres côtes simples; deux spi- culés épais, courts, bruns, alvéolés, accom- pagnés d’une pièce accessoire ovalaire; vulve dans la région moyenne du corps; utérus divergents. Parasites dans les grosses bron- ches des herbivores. Dictyocaulus filaria : parasite du mou- ton et de la chèvre. Dictyocaulus viviparus : parasite du bœuf, du cheval, de l’âne, etc. Dictyocaulus arnfieldi : parasite du che- val et de l’âne. Fig. x55 — Dictyocaulits arn- fieldi : bourse caudale du mâle. jD’après Railliet.) 4. Synthetocaulus Railliet et Henry, 1907. Corps capillaire; bouche à trois lèvres; extrémité postérieure du mâle renforcée par un arc chitineux; bourse caudale à côtes anté- rieures et moyennes fendues, posté- rieures réunies en un large tronc à parois très épaisses; spiculés ponc- tués, striés ou pectinés, légèrement arqués; entre eux et en avant de la bourse caudale se trouvent des sortes de grosses dents chitineuses formant un angle ouvert en arrière; vulve un peu en avant de l’anus; utérus con- vergents. Parasites dans les bronches de petit calibre et le tissu pulmo- naire des herbivores, parfois des car- nivores. Synthetocaulus commntatus : parasite du lapin domestique. Syrithetocaulus rufescens ■ parasite du mouton, de la chèvre et' du lapin domestique. Synthetocaulus capillaris : parasite du mouton et de la chèvre. Synthetocaulus abstrusus : parasite du chat. Synthetocaulus unciphorus '■ parasite du mouton et de la chèvre. Synthetocaulus ocreatus : parasite du mouton (Algérie). Fig- i56. — Synthetocaulus commutatus bourse caudale du mâle. (D’après Rail MET.) 118 5. Hæmostrongylus Railliet et Henry, 1907. Bourse caudale à deux lobes; côtes postérieures absentes, la moy- enne et l’antérieure dédoublées. Parasites du système circulatoire. Hœmostrongylus vasorum : dans le cœur droit et les divisions de l’artère pulmonaire chez le chie i ; œufs dans les poumons, em- bryons dans les bronches. 6. Graphidium Railliet et Henry, 1909. Tégument portant de nombreuses arêtes longitudinales; bouche large, soutenue par une bague chitineuse; bourse caudale à côtes postérieures émanant d’un tronc commun, à côtes moyennes et antérieures dédoublées; spiculés longs et grêles; vulve au tiers ou au quart postérieur du corps, recouverte ou non par un appendice. Parasites du tube digestif des rongeurs. Graphidium strigosum : parasite du la- pin domestique. 7. Trichostrongylus Looss, 1905. Bourse copulatrice nettement bilobée sans lobe médian accusé; côtes postérieures courtes émanant d’un tronc commun médian allongé; côtes moyennes et antérieures subdivisées en une branche grêle et une branche épaisse; côtes antérieures externes simples et épaisses; spiculés courts, tordus, en forme de spatule, et associés à une pièce accessoire; utérus divergents; vulve dans la moitié postérieure du corps. Parasites dans le duodénum, plus rarement dans l’estomac des herbivores. Trichostrongylus retortœformis : parasite du bœuf, du mouton, de la chèvre, du lapin, etc, Fig. IJ7. — Hœmostrongylus vasorum extrémité caudale du mâle. (D’a- près Railliet.) Fig. i58. — Graphidiurn strigo- sum : bourse caudale du mâle. (D'après Railiiet.) 119 Trichostrongylus probolnrus : dans le duodénum du mouton, du dromadaire; a été signalé aussi chez l’homme. Trichostrongylus vitrinus : dans le duo- dénum du mouton, du dromadaire, de l’homme. Trichostrongylus axei : parasite du bœuf, du mouton, de la chèvre, du cheval et de l’âne. Trichostrongylus capricola : parasite de la chèvre et du mouton. Trichostrongylus instcibilis : dans le duo- dénum, exceptionnellement dans l’estomac du mouton, du dromadaire, ainsi que- de l’homme. Trichostrongylus tenuis : dans les cæcums de l’oie domestique, du canard domestique, de la poule, etc. 8. Ostertagia Ransom, 1907. Côte ventrale dédoublée en deux rayons étroitement accolés; bourse accessoire à l’intérieur de la bourse caudale; spiculés avec ou sans pièce accessoire, toujours peu appa- rente. Parasites de l’appareil digestif. Ostertagia ostertagi : dans la cail- lette du bœuf, du mouton et de la chèvre. Ostertagia trifurcata : dans la caillette du mouton et de la chèvre. Ostertagia marshalli : dans la caillette du mouton. Ostertagia mentulata : dans la caillette du dromadaire (Indes). Ostertagia occidentalis : dans la caillette du mouton. \ Ostertagia circumcincta : dans la caillette du mouton. Ostertagia trifida : dans la caillette du mouton. 9. Cooperia Ransom, 1907. Tête épaisse à cuticule formant souvent un renflement annulaire; côte ventrale largement séparée à son extrémité de la côte latéro- Fig. 1S9. — Trichostrongylus retortœformis : bourse cau- dale du mâle. (D'après Looss.) Fig. 160. — Ostertagia ostertagi : bourse cau- dale du mâle. (D’après Stôdter.) 120 ventrale; cote dorsale subdivisée en deux branches disposées en lyre ou en fer-à-cheval, chacune portant à son origine un rameau qui s’étend ventralement en un renflement vésicu- laire à la face interne de la bourse; spiculés sans pièce accessoire. Parasites du tube digestif. Cooperia curticei : dans l’intestin grêle du mouton. Cooperia punctata : dans l’intestin grêle des bovidés. Cooperia oncophora : dans l’intestin grêle des bovidés. Cooperia pectinata : parasite des bovidés (Texas). 10. Nematodirus Ransom, 1907. Côtes ventrales médianes dédoublées; deux côtes dorsales; spiculés longs et filiformes sans pièce accessoire. Parasites de l’appareil di- gestif des ruminants. Nematodirus filicollis : dans l’intestin grêle, rarement dans la caillette des moutons. Nematodirus digitatus . parasite du zébu et du bœuf. Nematodirus spathiger : dans l’intestin grêle du dro- madaire. Species inquirendæ. Strongylus rubidus : dans l’estomac des porcs (Améri- que). Strongylus pulmonaris : dans les bronches du bœuf et du mouton. Strongylus harkeri : dans la caillette du bœuf. Strongylus douglasi : dans l’estomac de l’autruche. Strongylus quadriradiatus : parasite du pigeon. Strongylus gibsoni : trouvé dans les fèces d’un chinois. Fig. 16t. — Cooperia cur- ticei : bourse caudale du mâle. (D’après Curtice.) Fig. 162. - Nematodirus jilicollis : bourse caudale du mâle. (D’après Railliet.) 121 Strongylinés. Nématodes à capsule buccale bien développée. Parasites du tube digestif, exceptionnellement de l’appareil respiratoire. T. ŒSOPHAGOSTOMÉÉS. Bourse caudale à côtes antérieures et moyennes fendues, posté- rieures et postérieures externes naissant d’un tronc commun, posté rieures bifurquées; vulve à peu de distance de l’anus; utérus diver- gents; fente ventrale plus ou moins évidente. 1 Œsophagostomum Moun, 1861. Extrémité céphalique offrant un bourrelet péristomique, en arrière duquel s’observe un renflement plus ou moins accusé, qui s’arrête brusquement à la face ventrale au niveau d’une fente transversale; capsule buccale courte, munie d’un court tunnel dorsal et d’une double coronule. Œsophagostomum dentatum : dans l’intestin du porc. Œsophagostomum venulosum : dans l’intestin de la chèvre, du mouton. Œsophagostomum columbianum dans l’intestin du mouton, aussi du bœuf Œsophagostomum radiatum : dans le gros intestin du bœuf. Œsophagostomum apiostomum : en- kysté à l’état larvaire dans le paroi du cæcum et du colon chez un nègre; à l’état adulte vit dans l’intestin grêle de l’homme (Nigeria). Œsophagostomum stephanostomum var. Thomasi : dans des nodosités de la paroi du tube digestif chez l’homme (Brésil). Œsophagostomum biramosum : dans le gros intestin du bœuf; détermine l’helminthiase nodulaire bovine. Fig. ib.i. — Œsopkagostommn venulosum : bourse caudale du mâle. (D’après Rail- UET.) 122 2. Chabertia Railliet et Henry, 1909. Capsule buccale subglobuleuse, sans dents, ouverte obliquement vers la face ventrale; deux coronules. Chabertia ovina '■ dans le gros intestin du mouton, de la chèvre, etc. 3. Ternidens Railliet et Henry, 1909 Capsule buccale subglobuleuse, ouverte obliquement vers la face dorsale et présentant à son fond trois dents complexes; deux coronules. Ternidens deminutus • dans le gros intestin des nègres. 4. Agriostomum Railliet, 1902. Capsule buccale dépourvue de dents; entrée de l’œsophage entourée d’un cercle chitineux armé de fortes •dents; extrémité céphalique relevée vers la face dorsale. Agriostomum vrybiirgi : dans le duodénum du zébu. Fig. 164. — Ternidens deminutus : bourse caudale du mâle. (D’après Rail- liet et Henry, in Brumpt.) ANKYLOSTOMÉÉS. Bourse caudale à côtes antérieures fendues, moyennes dédoublées, postérieures et postérieures externes naissant d’un tronc commun, postérieures tridigitées; vulve au tiers postérieur du corps; utérus divergents. 1. Strongylus Müller, 1784. Extrémité antérieure tronquée, droite ou un peu recourbée vers la face ventrale; bouche circulaire béante, transversale ou oblique, sui- vie d’une cavité ou capsule buccale chitireuse et garnie sur le bord de nombreuses denticules disposées en une ou plusieurs séries; deux spiculés et une bourse caudale souvent trilobée; vulve dans la partie postérieure du corps. Strongylus equinus : parasite des équidés, à l’état adulte, dans le cæcum, rarement le gros colon; à l’état larvaire, dans le pancréas, le foie, les poumons, Strongylus edentatus : adulte dans le cæcum et le gros colon du cheval ; agame, sous le péritoine et la plèvre, dans la cavité pé- ritonéale, dans le testicule, les ligaments du foie, le tissu con- jonctif péri-rénal, les muscles de l’avant-bras. Strongylus vulgaris : adulte dans le cæcum et le gros colon du cheval et de l’âne; agames dans les anévrysmes, dans les ganglions mésentériques, et dans les nodules muqueux du cæcum. Strongylus (?) sipunculiforniis ■ dans le gros intestin de l’éléphant indien. Strongylus (?) rectus : parasite de l’éléphant d’Afrique. Fig. i65. — Strongylus equinus : bourse caudale du male. (D’après Looss.J 2. Ankylostoma Dubini, 1843. Capsule buccale grande et proéminente, a ouverture anterieure toujours circulaire, armée à son bord ventral de fortes dents cour- bées en crochets; tubes génitaux très longs décrivant des circonvo- lutions courtes et serrées, transversales. Ankylostoma duodenale : dans le duodénum de l’homme. Ankylostoma caninum : dans l’intestin grêle du chien, du chat, etc. Ankylostoma braziliense ; dans l’intestin grêle du chat et du chien (Brésil). 3. Uncinaria Frœlich, 1789. Capsule buccale cylindrique, , à ouverture antérieure rappro- chée de la face ventrale, par suite de la présence de deux plaques à bords tranchants continuant latéralement la paroi de la capsule; Fig. 166. — Ankylostoma duodenale : bourse caudale du mâle. (En partie d’après Railliet, in Brumpt.) 124 tubes génitaux courts et gros, formant un petit nombre de replis à direction longitudinale. Uncinaria stenocephala : dans l’intestin du chien. 4. Crassisoma Alessandrim, 1909. Capsule buccale dépourvue de dents ou de lames chitineuses à son orifice an- térieur. Crassisoma urosubula- tum : dans l’intestin grêle du porc domestique. 5. Charaeostomum Railliet, 1902. Capsule buccale soutenue par de nombreuses côtes dis- posées en méridiens et portant à son fond deux lancettes ven- trales; à l’ouverture antérieure un bourrelet circulaire simple sans dents; extrémité céphalique un peu relevée vers la face dorsale. Charaeostomum longenuicronatum : dans l’intestin grêle du porc domestique, etc. Fig. 167. ilncinaria stenoce- phala : bourse caudale du mâle. (D'après Alessandrini.) Fig. i6R. — Crassisoma urosubulatum : bourse caudale du mâle. (D’après Albssandrini.) y'. BUNOSTOMEES. Bourse caudale à côtes antérieures fendues, moyennes dédoublées, postérieures et postérieures externes naissant d’un tronc commun, postérieures bifurquées; vulve au milieu du corps ou un peu en avant; utérus divergents. 1 Bunostomum Railliet, 1902. Capsule buccale munie vers le fond d’une forte dent dorsale et de deux ou quatre dents ventrales et à son entrée de deux dents ventrales se continuant par deux lames allant rejoindre deux lames dorsales; six papilles buccales; extrémité céphalique relevée vers la face dorsale; vulve un peu en avant du milieu du corps. Bunostomum trigonocephalum : dans l’intestin grêle du mouton, de la chèvre, etc. Bunostomum phlebotomum : dans la caillette du veau et le cæ- cum du zébu. Bunostomum longecirratum : dans l’intestin de l’yak. 2. Necator Stiles, 1903 Capsule buccale, petite, globuleuse et saillante, pourvue de la- melles tranchantes comme dans le genre Uncinaria-, paroi dorsale de la capsule portant une éminence conique située entre deux plaques chitineuses, pro- éminant dans la cavité buc- cale; tubes génitaux exces- sivement longs, à replis nom- breux, serrés et peu réguliers. Necator americanus : dans l’intestin grêle de l’homme. Fig. if8. — Necator americanus : bourse caudale du mâle. (Daprès Stii.es.) 3. Bathmostomum Railliet et Henry, 1909 Extrémité antérieure relevée vers la face dorsale; capsule buccale offrant à son entrée deux dents ventrales et portant vers son fond des lamelles chitineuses en gradins. Bathmostomum sangeri : dans l’intestin grêle de l’éléphant indien. 4. Gaigeria Raillif.t et Henry, 1910. Bourse caudale à lobes latéraux peu développés et à lobe postérieur considérable; côtes postérieures volumineuses, profondé- ment séparées et terminées par trois nodu- les; côtes postérieures externes naissant au voisinage de la bifurcation des côtes pos Fig. 169 —Bathmostomum san- geri : bcurse caudale du mile. (D’après Alessandrim.) térieures; tronc commun relativement long; vulve un peu en avant du milieu du corps. Gaigeria pachyscelis : dans l’intestin du mouton et du bœuf (Inde, Congo). 6. Grammocephalus Railliet et Henry, 1910. Extrémité céphalique relevée vers la face dorsale; capsule buc- cale offrant à son entrée deux lames ventrales et portant à son fond des lancettes très aiguës; spiculés courts et épais. Grammocephalus clathratus : dans l’intestin de l’éléphant indien. g'. CYLICOSTOMÉÉS. Bourse caudale à côtes antérieures fendues, moyennes dédoublées, postérieures externes naissant isolément, postérieures tridigitées ; vulve proche de l’anus ; utérus convergents. 1. Cylicostomum Looss, 1901. Bouche munie d’un rebord cuticulaire saillant portant six papules, deux latérales puissantes et quatre submédianes plus grêles; capsule buccale cylindroïde, munie en avant d’une coronule de denticules trian- gulaires; bourse caudale présentant un lobe postérieur allongé et deux lobes latéraux réunis en avant par un lobe antérieur; côtes posté- rieures à trois branches rameuses, moyennes dédoublées, antérieures bifides; deux spiculés longs et grê- les, crochus à l’extrémité; vulve un peu en avant de l’anus. Cylicostomam tetrcicanthum • dans le cæcum et le gros intestin des équidés. Cylicostomum labratum : dans les cæcums et le gros intestin des équidés. Fig. 170. — Cylicostomum nassatum : bourse caudale du mâle étalée. (D'après Looss. 127 Cylicostomum labiatum : dans le cæcum et le gros intestin des équidés. Cylicostomum coronatum : » » » Cylicostomum bicoronatum » » » Cylicostomum poculatum : » » » Cylicostomum calicatum : » » » Cylicostomum alveatum : » » Cylicostomum catinatum : » » » Cylicostomum nassatum : » » Cylicostomum radiatum : » » » Cylicostomum elongatum : » » » Cylicostomum auriculatum : » » » 2. Œsophagodontus Railliet et Henry, 1902. Capsule buccale à coronule interne, dont les denticules n’ont aucune relation avec celles de la coronule externe; trois dents œso- phagiennes. Œsophagodontus robustus : dans le cæcum du cheval et du mulet aux Indes Anglaises. 3. Gyalocephalus Looss, 1900. Extrémité céphalique séparée du corps par un étranglement. Gyalocephalus capitatus : dans la première partie du gros in- testin du mulet. 4. Triodontophorus Looss, 1902. Capsule buccale globuleuse, munie d’une paroi chitineuse relativement épais- se, mais dépourvue de dents dépendant de cette dernière; le revêtement chiti- neux de l’œsophage se projette au fond de la cavité buccale sous la forme de trois doubles dents; vulve très rappro- chée de l’extrémité caudale. Triodontophorus minor : dans le dernier quart du gros intestin de l’âne. Fig. 171. — Gyalocephalus capitatns : ex- trémité caudale du mâle vue latéralement. (D’après Looss.) Trîodontophorus serratus : dans la portion antérieure du gros intestin de l’âne. Fig. 172, — Triodontophonis serratus : bourse caudale du mâle. {D’après Looss.) £'. SYNGAMÉÉS. Bourse caudale à côtes antérieures et moyennes fendues, anté- rieures externes accolées aux moyennes, postérieures externes nais- sant isolément, postérieures bi- ou trifurquées; vulve dans le quart antérieur du corps; utérus divergents. Syngamus von Siebold, 18.36. Tête épaissie; bouche large suivie d’une capsule chitineuse; deux spiculés; deux ovaires; vulve située dans la partie antérieure du corps. Parasites dans l’appareil respiratoire des oiseaux et des mammifères. Syngamus trachealis : dans la trachée et les grosses bronches des gallinacés : poule, faisan, dindon, paon, etc. Syngamus bronchialis : dans le larynx, la tra- chée et les bronches de l’oie. Syngamus laryngeus : sur la muqueuse laryngienne des bovidés du Sud de l’Annam. Syngamus nasicola : dans les cavités nasales des chèvres (Cameroun). Fig. 173. - Syngamus trachealis (D’après v. Linstow.) fi. Genres non classés. 1. Stephanurus Diesing, 1839. Extrémité antérieure tronquée; bouche suborbiculaire, limitée par un anneau chitineux gar- ni de dents ; un seul spi- culé; bourse caudale mul- tilobée. Stephanurus denta- tus : dans les viscères abdominaux et en par- ticulier dans le tissu adipeux au voisinage du rein chez le porc. Fig. 174. — Stephanurus dentatus : bourse caudale du mâle étalée. » D’après Tayler.) 2. Amidostomum Railliet et Henry, 1909. Téguments à arêtes longitudinales; bouche suivie d’une capsule buccale globuleuse, déprimée, munie à son fond de deux dents pointues; bourse caudale à côtes antérieures et moyennes dédoublées, posté- rieures externes naissant sur le tronc des moyennes, postérieures bifur- quées; spiculés courts avec une pièce accessoire; vulve non loin de l’anus. Amidostomum anseris : en- tre les tuniques de l’estomac de l’oie domestique. 3. Ollulanus Leuckart, 1865. Capsule buccale poculi- forme; deux courts spiculés; un ovaire; vulve un peu en avant de l’anus ; bourse caudale bilo- bée, à lobes soutenus par six côtes. Fig. 175. — Amidostomum anseris : bourse caudale du mâle. (I)’après Railubt.) 130 Ollulanus tricuspis : dans l’épaisseur de la muqueuse stomacale du chat. 4. Physaloptera Rudolphi, 1819 Bouche a deux lèvres égales, ornées chacune de trois papilles et armées de dents; expansions cuticulaires variables en arrière des lèvres; bourse caudale constituée par le rebord cuticulaire de l’extré- mité postérieure profondément excavée; multiples papilles dont un certain nombre sont pédiculées et soutiennent la bourse caudale; deux spiculés inégaux; deux ovaires; vulve vers la partie an- térieure du corps; ovipares. Parasites du tube digestif, surtout de l’estomac des vertébrés car- nivores : mammifères, oiseaux, etc. Physaloptera truncata : dans le gésier de la poule au Brésil. Physaloptera geniina : dans l’estomac et l’in- testin du chat domestique (Egypte). Physaloptera bulbosa : parasite du paon. Physaloptera caucasica : dans le tube digestif de l’homme (Caucase). Physaloptera mordens : dans l’œsophage, l’estomac et l’intestin grêle de l’homme (Afrique tropicale). Fig. 17J. — Physaloptera alata : extrémité caudale du mâle. (D'après v. Lin- stow.) i. CHLAMYDONÉMATIDÉS. Corps assez trapu ; couche cuticulaire externe formant dans la seconde moitié du corps une enveloppe libre dans laquelle la femelle peut se rétracter, tandis que chez le mâle elle se termine à la base de la queue élargie; tête munie de 3 papilles sessiles et pourvue de 2 lèvres portant chacune 3 dents; en arrière et de chaque côté de la tête un organe papillaire; extrémité caudale de la femelle aiguë; extrémité caudale du mâle élargie portant 4 paires de côtes, 17 pa- pilles tactiles et de nombreuses éminences cuticulaires coniques; mâles à deux grands spiculés inégaux et trois glandes piriformes volumi- neuses s’ouvrant dans le cloaque; champs latéraux fort développés; cœlo- et polymyaires; pharynx pourvu d’un bulbe. Chlamydonema Noordhoek Hegt, 1910. Caractères de la famille. 131 Chlamydonema felineum : dans l’estomac du chat domestique (Batavia). k. ASCAR1DÉS. Bouche ordinairement entourée de trois lèvres; un ou deux spi- culés; ovaire double; œsophage avec ou sans renflement; ovipares. 1. Ascaris Linné, 1758. Trois fortes lèvres dentées latéralement; deux spiculés égaux; nombreuses papilles pré- et postanales; vulve en avant du milieu du corps; œufs globuleux ou ellipsoïdes. Parasites de l’intestin grêle des vertébrés. Ascaris lombricoides : dans l’intestin grêle de l’homme. Ascaris suum : dans l’intestin grêle du porc. Ascaris ovis : dans l’intestin grêle du mouton. Ascaris vitulorum : dans l’intestin grêle des bêtes bovines, sur- tout des veaux. Ascaris equi : dans l’intestin grêle du cheval, de l’âne, du mulet, aussi du bœuf. Ascaris maritima : a été observée une fois dans les vomissements d’un enfant (Nord du Groenland). Ascaris texana : espèce douteuse recueillie chez un homme (Texas). Ascaris lonchoptera : dans les conduits biliaires de l’éléphant indien. Ascaris crassa : dans l’intestin du canard domestique. 2. Belascaris Leiper, 1907. Lèvres à lobes latéraux prolongés en un lobule digitiforme incurvé en dedans; papilles céphaliques submédianes à base volumineuse, el- lipsoïde, portant deux pointes papilliformes; extrémité postérieure du mâle terminée par un fort appendice conique; ailes caudales plus ou moins évidentes; deux spiculés subégaux munis de deux ailes en gouttière; vulve vers le quart antérieur; ovaires et oviductes s’éten- dant en avant de la vulve; tronc commun de l’utérus long; œufs plus ou moins globuleux, à coque mince, creusée de fossettes. Belascaris mystax : chez le chat domestique; a été signalée aussi chez l’homme. Belascaris marginata : chez le chien domestique. 3. Toxascaris Leiper, 1907. Lèvres à lobules séparés des lobes par un profond sillon, élargis et bilobés à leur terminaison; papilles submédianes de moyenne gros- seur; extrémité postérieure du mâle sans ailes, s’atténuant en pointe; spiculés légèrement inégaux en forme de tubes creux non ailés; vulve vers le tiers antérieur; ovaires et oviductes ne s’étendant pas en avant de la vulve; tronc commun de l’utérus très court; œufs sub- globuleux, à coque épaisse et lisse. Toxascaris limbata : chez le chien domestique; peut se rencon- trer accidentellement chez l’homme. 4. Lagochilascaris Leiper, 1909. Cuticule se projetant au niveau des champs latéraux sous forme de deux saillies étroites sur toute la longueur du corps; lèvres sé- parées du corps par un sillon distinct et l’une de l’autre par une petite lèvre intermédiaire dépourvue de pulpe; l’angle tranchant de chaque lèvre bifurqué; chez le mâle plus de 24 paires de papilles préanales; chez la femelle, vagin se dirigeant vers l’extrémité céphalique; œufs globuleux à membrane épaisse ornée de dessins en mo- saïque. Lagochilascaris minor : a été rencontrée dans le pus d’abcès sous-cutanés chez deux habitants de la Trinité. 5. Heterakis Dujardin, 1845. Une ventouse préanale et deux spiculés chez le mâle; presque tous ovipares. Parasites dans l’intestin des vertébrés, principalement des oiseaux. Heterakis perspieillum : dans l’intestin grêle de la poule, du dindon et de la pintade. * Fig'- '77- Lagochilascarïs major. (D’après Lkip^r.) Heterakis lineata '■ dans l’intestin du canard domestique, aussi chez le coq. Heterakis compressa : dans l’intestin du coq. Heterakis columbœ : dans l’intestin du pigeon domestique, du faisan, etc. Heterakis vesicularis : dans les cæcums de la poule, du dindon, du paon, de la pintade, du faisan, du ca ard et de l’oie domestiques, etc. Heterakis dispar : dans les cæcums des oies grasses, des canards domestiques, etc. Heterakis compar : dans l’intestin grêle de divers gallinacés. Heterakis brasiliensis : dans l’intestin de la poule. Heterakis differens : dans l’intestin de la poule. Heterakis pusilla : dans l’intestin de la poule. Heterakis granulosa • dans l’intestin de la poule. Heterakis hamulus : dans l’intestin du paon. Heterakis circumvallata : dans l’intestin du cygne. Heterakis isolonche : dans les cæcums du faisan commun; déter- mine la typhlite verruqueuse des Phasianides. Fig. 178. — Heterakis dis- par : extrémité caudale du mâle. (D’après v. I.in- stow.) 6 Oxyuris Rudolphi, 1803. Bouche nue ou à trois lèvres peu saillantes; un spiculé; femelles à extrémité caudale très allongée; deux ovaires; vulve ordinairement vers la partie antérieure du corps; œufs oblongs, asymétriques. Pa- rasites des vertébrés. Oxyuris vermicularis : dans l’intestin grêle et le gros intestin de l’homme. Oxyuris compar : dans l’intestin grêle du chat, peut-être aussi du chien. Oxyuris curvula : dans le gros intestin du cheval, de l’âne, du mulet. Oxyuris mastigodes : dans le gros intestin du cheval, de l’âne et du mulet. Oxyuris ambigua : dans le gros intestin du lapin domestique, etc. 134 2. GORDIACÉS. Appareil digestif atrophié dans sa partie antérieure chez l’adulte; extrémité céphalique dépourvue de papilles; pas de spiculés; deux testicules; vulve unie à l’extrémité postérieure persistante de l’intestin pour former un cloaque. Parasites accidentels de l’homme. GORDIIDÉS. Caractères du groupe. J. Gordius Linné, 1758. hxtremite caudale du male biturquee avec un repli cuticulairel postcloacal, de la femelle arrondie avec orifice ana terminal. Gordius aquaticus : a été observé quatre fois chez l’homme. Gordius chilensis : insuffisamment décrit. 2. Paragordius Camerano, 1897. Extrémité caudale bifurquée chez le mâle, et dépourvue d’un repli postcloacal, trifurquée chez la femelle. Paragordius varius : a été observé quatre fois chez l’homme. Paragordius tricuspidatus : a été signalé une fois chez l’homme. Paragordius cinctus : a été rencontré une fois chez l’homme au Transvaal. 3. Parachordodes Camerano, 1897. Extrémité caudale bifurquée chez le mâle sans repli cuticulaire postcloacal, arrondie chez la femelle; tégument portant des aréoles polyédriques. Parachordodes tolosanus : a été observé trois fois chez l’homme- Parachordodes pustulosus '• a été signalé une fois chez l’homme. Fig. 179. — Gordius : extrémité caudale du mâle ; a, anus ; 6, re- pli postcloacal. (D’a- jîrès Hartmeyer.) Fig. 180. — Paragor- dius : extrémité caudale de la femelle. (D’après Hartmeyer.) 135 Parachordodes violaceus : a été rencontré une fois chez l’homme. Parachordodes alpestris : a été signalé une fois chez l’homme. 3. ACANTHOCÉPHALES. Extrémité antérieure du corps pourvue d’une trompe armée de multiples rangées de crochets; appareil digestif absent. Adultes, parasites dans l’in- testin des vertébrés. Fig. 181. — Parackor- dodes : extrémité cau- dale du mâle, a, anus. (D’après Hartmeyer .) a. GIGANTORHYNCHIDËS. Corps annelé; crochets à revêtement chitineux complet et à deux prolongements radicaux; gaine de la trompe peu développée. Gigantorhynchus Hamann, 1892. Caractères de la famille. Gigantorhynchus hirudinaceus : dans l’intestin du porc, surtout dans le duodénum, rarement dans le gros intestin; a été signalé aussi chez l’homme. Gigantorhynchus moniliformis : parasite ordinaire des petits ron- geurs (rats, etc.), a été signalé aussi chez l’homme (Italie) et chez le chien. b. ÉCHINORHYNCHIDÉS. Corps lisse; gaine de la trompe à double paroi; crochets à re- vêtement chitineux sur l’extrémité seule et munis d’un prolongement inférieur seulement. 1. Eehinorhynehus Müller, 1776. Cou absent ou très court; trompe longue, cylindrique, inclinée ventralement, à crochets nombreux, disposés en séries radiaires symé- triques, et invaginable totalement dans sa gaine; testicules globuleux ou ovoïdes allongés, situés l’un derrière l’autre dans le tiers moyen du corps; glandes prostatiques, au nombre de 6, arrondies ou ovoï- des; orifice génital dépourvu de crochets; œufs allongés. 136 Echinorhynchus grassii : dans l’intestin grêle du chien en Sicile. Echinorhynchus sphœrocephalus : dans l’intestin grêle du canard domestique. Echinorhynchus cuniculi : dans l’intestin grêle du lapin (Irlande). Echinorhynchus (?) longicollis : dans l’intestin grêle du canard domestique. Echinorhynchus tœniatus : parasite de Numida ptylorhyncha. Echinorhynchus hominis : espèce douteuse trouvée chez un enfant. 2. Polymorphus Luehe, 1911. Tégument de la partie antérieure du corps orné de fins crochets; trompe modérément longue, à crochets moyennement nombreux dis- posés en séries radiaires symétriques, et totalement invaginable dans sa gaine; cou long; testicules si- tués obliquement à côté l’un de l’autre; glandes prostatiques tubuliformes ; orifice génital terminal, dépourvu de crochets; œufs fusi- formes allongés, à 3 enveloppes. Polymorphus minutus : para- site du canard, de l’oie et du cygne domestiques. 3. Filicollis Luehe, 1911. Corps sacciforme, à cou long cylindrique; trompe dilatée chez la femelle et armée sur une petite région apicale de crochets dis- posés régulièrement en étoile; chez le mâle, la trompe bien séparée du cou est de forme ovoïde et armée de crochets disposés en séries régulières symétriques; tégu- ment du corps chez le mâle sur une faible étendue en arrière du cou muni de petits crochets, inerme ailleurs; testicules pas tout à fait médians, disposés un peu obliquement l’un derrière l’autre dans le tiers moyen du corps; glandes prostatiques très volumineuses, ir- Fig. 182. — Polymor phus minutus q* D’après Luehe.) Fig. 180. - Fiiicoius ana- Us Q . (D’après Luehe.) régulièrement ovalaires; orifice génital terminal et dépourvu de cro- chets; œufs ovoïdes à 3 membranes enveloppantes. Filicollis anatis '■ parasite du canard, de l’oie et du cygne do- mestiques. 4. Corynosoma Luehe, 1905. Corps en massue; tégument échinulé dans la région antérieure du corps, s’étendant plus loin ventralement que dorsalement; extrémité caudale du mâle munie de forts crochets autour de l’orifice génital; trompe inclinée vers la face ventrale, à crochets nombreux disposés en séries radiaires sy- métriques; cou présent; testicules arrondis, disposés plus ou moins obliquement l’un à côté de l’autre; glandes prostatiques piriformes ou claviformes; orifice génital terminal; œufs ovoïdes, relativement grands, à 3 membranes. Corynosoma strumosum : la larve a été observée dans l’estomac du chat domestique. Fig, 184. —Corynosoma strumosum Q . (D’après Luehb.) C. Annélides. Vers à corps allongé, métamérisé; système .nerveux comportant un ganglion cérébral avec une double commissure et une chaîne ven- trale; organes d’excrétion représentés par des néphridies disposées par paires. HIRUDINÉES. Annélides à corps ovalaire, aplatis dans le sens dorso-ventral et porteurs d’une ventouse à chaque extrémité du corps. 1. Rhynchobdellidés. Hirudinées dépourvues de mâchoires, à trompe protractile et à sang incolore. 138 GLOSSOSIPHONIIDÉS. Ventouse antérieure plus ou moins fusionnée au corps; ventouse postérieure distincte. 1. Hæmenteria de Filippi, 1849. Bouche s’ouvrant dans la lèvre antérieure de la ventouse anté- rieure; deux yeux; chaque anneau divisé en 2 sur la face dorsale. Hæmenteria officinalis ■ Amérique centrale. 2. Placobdella R. Blanchard, 1893. Diffère du genre précédent en ce que les an- neaux sont simples sur la face dorsale. Placobdella catenigera : sa piqûre saigne longtemps (48 heures). 3. Protoclepsis Livanow, 1902. Somites complets formés de 3 anneaux ; 4 paires d’yeux. Protoclepsis tessellata : pénètre dans les voies respiratoires des canards et des oies domestiques. 2. Arhynchobdellidés. Bouche munie de trois mâchoires dentées ou de 3 plis longitudinaux; pas de trompe protractile; sang rouge. Fig. i85. — Extrémité antérieure d’une Pla- cobdella pour montrer la position des yeux. (D’après Johansson.) Fig. rS6. — Prôtoclep sis : disposition des yeux. (D’après Jo- HANSSON.) GNATHOBDELLIDÉS. Bouche munie généralement de trois mâchoires dentées; 5, rare- ment 4 paires d’yeux. a. Hirudininés. Trois mâchoires dentées; 5 paires d’yeux; somites complets for- més de cinq anneaux; pores néphridiens à la face ventrale près des bords du corps. 139 1. Hirudo Linné, 1758. Mâchoires armées de 50 à 100 dents aiguës disposées sur une rangée; pas de sillon sous la lèvre antérieure; 24e somite formé de 3 anneaux. Les différentes espèces, dont le type est Hirudo medicinalis, sont utilisées en médecine. 2. Limnatis Moquin-Tandon, 1826. Mâchoires armées de plus de 100 dents aiguës; sillon labial à la face interne de la lèvre supérieure de la ventouse antérieure. Limnatis nilotica : dans la cavité buccale, le pharynx, le larynx, la trachée, les cavités nasales du cheval, du mulet, du bœuf, du chameau, du chien; aussi dans le vagin de la vache, de la ju- ment, de la mule; peut également se rencontrer chez l’homme (Bassin de la Méditerranée). D’autres espèces sont connues : L. mysomelas (Sénégambie), L. granulosa (Inde), L. africana (Sé- négal, Congo), L. maculosa (Singapore). ?. Hæmadipsinés. Gnathobdellidés terrestres, pourvus de 5 paires d’yeux, dont les 3e et 4e ne sont pas séparées par un anneau; les trois derniers somites du corps constitués chacun par un seul anneau. Fig. 187. — Hirudo me dicinalis. (Emprunté à JOHANSSON.) Hæmadipsa Tennknt, 1861. Somites moyens formés de 5 anneaux. Hœmadipsa zeylanica ■ se jette sur l’homme et les bestiaux. III. ARTHROPODES. Métazoaires à symétrie bilatérale, à cavité du corps bien déve- loppée, à segmentation hétéronome et à membres articulés. A. Diplopodes. Arthropodes à somites doubles, porteurs de deux paires d’appen- dices, ou à somites alternativement porteurs ou dépourvus d’appen- dices; respiration trachéenne. Parasites accidentels. JULIFORMES. Diplopodes à deux paires d’appendices à chaque somite. a. JULIDÉS. Tête distincte, grosse; plaques dorsales non élargies. Julus Linné, 1758. Antennes guère plus longues que la tête; premier anneau thora- cique beaucoup plus grand que les autres; corps lisse ou finement strié en travers; pattes courtes, à hanches et tarses uniarticulés. Julus terrestris •• dans le tube digestif de l’homme. Julus londinensis : dans le tube digestif de l’homme, b. POLYDESMIDÉS. Tête distincte, grosse; plaques dorsales élargies latéralement. Polydesmus Latreille, 1802. Tête sans yeux; deuxième à sixième articles des antennes à peu près d’égale longueur; corps à 20 anneaux, dont le premier est dé- pourvu d’appendices et les 2e à 4e n’en portent qu’une paire; tarse uniarticulé. Polydesmus complanatus : a été signalé dans le tube digestif de l’homme. B. Arachnides. Arthropodes munis de deux segments préoraux, le premier por- tant des yeux, le second des chélicères, et de six paires d’appendices post-oraux; respiration branchiale ou pulmonaire. 1. ACARIENS. Arachnides à segments basilaires de la seconde paire d’appendices unis sur la ligne médiane en arrière de la bouche, ceux des 3e à 6U paires d’appendices largement séparés; stigmates respiratoires et segmentation du corps présents ou absents. a. Métastigmates. Tégument plus ou moins coriace; une paire de stigmates au-dessus et en arrière de la base de la quatrième, cinquième ou sixième paire d’appendices. a. GAMASOIDÉS. Métastigmates pourvus d’un petit hypostome sans dents; pas d’yeux; face ventrale sans sillons. 142 1. DERMANYSSIDÉS Pattes toutes semblables dans les deux sexes; mandibules dispo- sées pour piquer; stigmates sur la face dorsale; ouverture sexuelle mâle au bord antérieur du sternum. Parasites des vertébrés. 2. Dermanyssinés- Plaque anale présente. 1. Dermanyssus Dugès, 1834. Téguments mous; mandibules di- dactyles chez le mâle, filiformes chez la femelle; vulve transversale; larves hexapodes. Parasites temporaires des oiseaux. Dermanyssus gallinœ : se jette sur les poules, les pigeons, les din- dons, les faisans, etc.; s’attaque aussi à l’homme, le cheval, le bœuf, la chèvre, le lapin, le chien, le chat. Dermanyssus hirundinis : vit dans les nids des hirondelles; s’attaque aussi à l’homme et à la bête bovine. 2. Liponyssus Kolenati, 1859. Corps faiblement cuirassé; man- dibules didactyles et inermes dans les deux sexes; vulve transversale. Parasites sur les mammifères et les oiseaux. Liponyssus suffuscus : vit en colonies au fond du pelage des lapins. Liponyssus bursa : parasite des poules (Buenos-Ayres). Fig. 188. — Dermanyssus gallinœ. (D’a- près Banks.J Fig. 189. — Liponyssus amcricanns. (D’après BanksJ Liponyssus sylviarum : vit dans les nids de fauvette; occasionne chez l’homme un prurit assez intense. 3. Lophoptes Mégnin, 1891. Mandibules didactyles, à mors fixe pourvu de deux petites dents et cà mors mobile élargi et non crochu. Lophoptes patavinus : vit à demeure dans la huppe des poules de Padoue. Holothyrinés. Bouclier supérieur d’une seule pièce, cly- péiforme, ainsi que le tégument inférieur qui s’enchâsse sous une sorte de bourrelet de son pourtour; orifice abdominal près du bord pos- térieur, bivalve; palpes étendus, à quatre arti- cles, le quatrième un peu plus fort que les autres; pattes longues, à dix articles, à onglet très fai- ble; deux paires de stigmates; point d’yeux. Holothyrus Gervais, 1842. Caractères de la sous-famille. Holothyrus coccinella : parasite des canards et des oies, également de l’homme (Ile Maurice). Rhinonyssinés. Pattes munies d’ongles rétractiles; stigmates situés à la face dorsale du corps; péritrème réduit à un simple bourrelet circulaire entourant l’ouverture des trachées. Hématophages, parasites des fosses nasales. Sternostoma Berlese et Trouessart, 1889. Rostre infère, complètement caché par Pépistome quand l’animal est vu de dos. Fig. 190. — I.ophoptes patavi- nus . (D'après Mégnin.) Fig. 191. — Holothyrus cocci- tie/la Q* . (D’après Mégnin.) Sternostoma rhinolethrum : dans les fosses nasales de l’oie domes- tique; provoque par- fois une inflammation catarrhale de ces ca- vités. 2. GAMASIDÉS. Première paire de pattes insérée aux côtés de l’orifice buc- cal; la face dorsale du corps ne se pro- jetant pas au-dessus du camérostome; orifice génital mâle situé généralement au bord antérieur de la plaque sternale, quelquefois en son milieu. 1. Lælaps Koch, 1836. Corps généralement ovoïde, à écusson dorsal simple; péri- trèmes deux fois aussi longs que larges; mâles à plaques ven- trales fusionnées, à orifice gé- nital au bord antérieur de la plaque sternale et à 2e paire de pattes inerme; femelles à plaque anale distincte, à plaque génitale non anguleuse en avant. Lælaps stabularis : fréquent dans la litière des étables mal entretenues; occasionne chez l’homme du prurit sans lésions cutanées. Fig. 192. — Siernostoma rhinolethrum • (D’après Neumann.) Fig. 190. — Lœlaps macropi/is. (D’après Banks.) 145 2. Raillietia Trouessart, 1902. Chélicères du mâle à pince atrophiée, terminées par un éperon fortement développé; chélicères de la fe- melle et des jeunes normales; deuxième paire de pattes ren- flée et tuberculeuse chez le mâle. Raillietia auris : dans l’oreille du bœuf. P. IXODOIDÉS. Acariens de gran- de taille, à téguments coriaces; rostre formé de trois pièces, deux chélicères ou mandibules et un hypostome portant à sa face inférieure des dents; deux palpes formés de 4 articles; une paire de stigmates près des hanches de la 4e paire; larves hexapodes; nymphes octopodes. Parasites intermittents. Fig. 194. - Raillietia auris (D’après Freund 1. ARGASIDÉS. Rostre infère; pas d’écusson dorsal; pas d’ambulacres à ventouse. 1. Argas Latreille, 1796. Corps aplati, limité par un bord net; tégument non mamelonné, présentant çà et là de petites fossettes plus ou moins circulaires; face ventrale dépourvue de sillons; pas d’yeux. Argas persicus : parasite des poules, dindons, canards, oies, autruches; attaque aussi l’homme; transmet les spirochétoses des vo- lailles. Argas reflexus : parasite des pigeons; les larves ont été trouvées une fois sur le cheval (?) et les nymphes et adultes peuvent attaquer aussi les poules et l’homme. Fig. 195. — Argas persicus : A, vu par la face dorsale, B, par la face ventrale. M, rostre; G, orifice génital; A, anus. (D’après Doflein.) Argas brumpti : mord l’homme. Argas vespertilionis : attaque parfois l’homme (Mozambique). Argas victoriensis : larves recueillies sur les poules (Victoria). 2. Ornithodoros Koch, 1844. Corps aplati, à pourtour épais; tégument mamelonné; face ven- trale ornée de sillons et de plis; yeux quelquefois présents. Ornithodoros savignyi : attaque l’homme et divers animaux (poule, chien, cheval, chameau, chèvre, bœuf, porc). Ornithodoros moubata : attaque l’homme, le porc, le mouton, la chèvre, le chien ; transmet à l’homme Spirochœta duttoni et à la poule Spirochœta marchouxi; peut-être intervient-il dans la transmission de Filaria perstans à l’homme. Ornithodoros coriaceus : mord l’homme très sévèrement. Ornithodoros turicata : s’attaque à l’homme, au bœuf, au cheval, au lama, au porc; interviendrait peut-être dans la transmission de la fièvre récurrente de Colombie. Ornithodoros talaje : s’attaque à l’homme et produit des piqûres très douloureuses. Ornithodoros pavimentosus : mord l’homme (piqûre très douloureuse). Ornithodoros tholozani : mord l’homme, le chameau, le mouton; se rencontre aussi dans les poulaillers. Fig. 196. — Ornithodoros moubata Ç : A, vu par la face dorsale, B, par la face ventrale. — M, rostre; G, orifice génital ; A, anus. (D’après Doflein.) Ornithodoros lahorensis : parasite du mouton. Ornithodoros megnini : se rencontre dans l’oreille du cheval, de l’âne, du bœuf et aussi de l’homme. 2. IXODIDÉS. Rostre terminal; un écusson dorsal; des ambulacres à ventouse; stigmates disposés en arrière des hanches IV; dimorphisme sexuel; aires poreuses sur la face dorsale du rostre chez la femelle. a. PROSTRIÉS. Sillon anal contournant l’anus en avant Ixodes Latreille, 1796. Pas d’yeux; face ventrale du mâle ornée de sept écussons chi- tineux; péritrèmes ovalaires chez le mâle, circulaires chez la femelle. Ixodes ricinus : sur le mouton, la chèvre, le bœuf, le cheval, le chat, l’homme; transmet les babésioses bovine et canine. Ixodes ricinus var. scapularis : sur le bœuf, le mouton, le chien et l’ho mme. Ixodes ricinus var. ovatus : sur le cheval, le bœuf et le chien. Ixodes hexagonus : sur le chien, le mou- ton, le bœuf, le lapin, aussi sur l’homme; transmet la babésiose canine. Ixodes hexagonus var. cookei : sur le mou- ton (Texas), le chien et le chat (Etats-Unis). Ixodes brunneus : une nymphe a été re- cueillie sur l’oie. Ixodes pilosus : sur le bœuf, le cheval, l’âne, le mulet, le mouton, la chèvre, le porc, le chien, le chat et l’homme. Une variété, ho- wardi, sur le chien et le chat (Transvaal). Ixodes dentatus : a été signalé sur le lapin (Etats-Unis). Ixodes holocyclus : sur les mammifères do- mestiques : bœuf, chien, mouton (Australie). Ixodes tenuirostris : sur le faisan. Ixodes ausiraliensis : sur le chien. Ixodes rubicundus : sur le mouton et la chèvre (Sud de l’Afrique); cette tique est soupçonnée transmettre une affection mal définie ca- ractérisée par de l’anémie. Une variété, limbatus, sur le mouton et la chèvre (Katanga). Ixodes bicornis : attaque l’homme; sa morsure serait souvent mortelle pour les enfants. Ixodes putus : parasite des palmipèdes migrateurs; sa piqûre est très redoutée de l’homme. Ixodes caledonicus •• sur le pigeon domestique (Ecosse). Ixodes rasus : sur le bœuf, le chien et l’homme (Afrique or. et occ.). Ixodes ugandanus • sur le mouton (Afrique or. et occ.). Ixodes cavipalpus : sur l’homme (Rhodésie et Angola). Ixodes canisuga : sur le chien, le cheval, le mouton (Europe, N. Amérique). Fig. 197. — Ixodes minor çf , (D’après Neumann.) b. MÉTASTRIÉS. Sillon anal contournant l’anus en arrière, parfois obsolète. 149 *. Longirostres. Palpes longs, c’est-à-dire à articles 2 ou 3, ou bien 2 et 3 ensem- ble, beaucoup plus longs que larges. 1. Aponomma Neumann, 1899. Sillon anal contournant l’anus en arrière et se prolongeant en avant jusque près du sillon génital; pas d’yeux; pas de plaques anales chez le mâle. Aponomma exornatum : sur le chien en Afrique du Sud. Aponomma trimaculatum : sur le bœuf (Nouvelle Galles du Sud). Aponomma inornatum : sur le chien et le lapin. 2. Hyalomma Koch, 1844. Sillon anal contournant l’anus en arrière et se prolongeant en avant jusque près du sillon génital; yeux présents; plaques anales présentes chez le mâle; yeux situés chez la femelle vers le milieu de la longueur de l’écusson. Hyalomma œgyptium : sur le bœuf, le dromadaire, le chameau, le cheval, le mulet, l’âne, le mouton, la chèvre, le chien, le chat et même l’homme; intervient peut-être dans la transmission du farcin du bœuf; peut transmettre les babésioses bovine et équine. Une variété, impres- sum, sur le bœuf, le cheval, l’âne, le mulet, le mouton, la chèvre, le chien, la poule (larve et nymphe); une autre, dromedarii, sur le dro- madaire. Hyalomma syriacum : sur le bœuf, le dromadaire. Hyalomma monstrosum : sur le cheval (Inde). Fig. 198. — Aponomma ger- vatsi (y . (D’après Neumann.) Fig. '.99. — Hyalomma syriacum çf (D’a- près Neumann.) 3. Amblyomma Koch, 1844. Diffère du genre précédent par l’absence de plaques anales chez le mâle; yeux situés chez la femelle' au tiers ou au quart antérieur de l’écusson. Amblyomma americanum ■ sur les bovidés et sur l’homme. Amblyomma elephantinum : sur l’éléphant indien. Amblyomma variegatum : sur le bœuf, le mouton, la chèvre., le dro- madaire; joue peut-être un rôle dans la propagation du farcin du bœuf. Amblyomma cayennense : sur le cheval, le bœuf, le chien, l’homme, etc. Amblyomma dissimile : parasite des reptiles et des batraciens; est signalé comme ayant été trouvé chez l’homme. Amblyomma hebrœum : sur le bœuf, le mouton, la chèvre, le porc, l’homme. Amblyomma maculatum : sur le chien, le bœuf. Amblyomma marmoreum : larve et nymphe sur le bœuf et la chèvre. Amblyomma striatum : sur le chien. Amblyomma testudinarium : sur le buffle (Java). Amblyomma triguttatum : sur le bœuf, le chien et le cheval. Amblyomma moreliæ : sur le cheval. Amblyomma eburneum : sur le bœuf, le mouton et la chèvre. Amblyomma splendidum : sur le bœuf (Congo). Amblyomma calcaratum : sur le chien (Brésil). Amblyomma tholloni : sur l’éléphant africain. Amblyomma versicolor : sur le cheval (Mexique). Amblyomma gemma : sur le bœuf. Amblyomma lepidum : sur le bœuf et la chèvre. Fig. 2oo. — Amblyomma lon- girostreçy. D'après Neu- mann.) g. Brévirostres Palpes courts, c’est-à-dire dont les articles 2 ou 3, ou bien 2 et 3 ensemble, sont sensiblement aussi larges ou même plus larges que longs. 1. Hæmaphysalis Koch, 1844. Pas d’yeux; pas de plaques anales chez le mâle; palpe à 2e ar- ticle présentant à sa base et en dehors une forte saillie conique. Hœmaphysalis leachi : sur le chien, le chat, le cheval, le bœuf; trans- met la babésiose du chien, peut-être aussi la Theileria parva au Japon. Hœmaphysalis concinna : sur les moutons, etc.; une variété, lon- gicornis, sur le bœuf (Australie); une autre, hirudo, sur le chien (Japon). Hœmaphysalis leporis . a été ren- contrée sur le cheval (Etats-Unis). Hœmaphysalis punctata : sur l’hom- me, le bœuf, le mouton, la chèvre, le cheval; est capable de propager la Ba- besia bovis. Hœmaphysalis flava : sur le bœuf, la chèvre, le mouton, le cheval, le chien. Hœmaphysalis spinigera : sur le bœuf (Inde). Hœmaphysalis bispinosa : sur le bœuf, le cheval, la chèvre (Inde). Hœmaphysalis cornigera : sur le buffle (Inde, Bornéo, etc.). Hœmaphysalis neumanni : sur le cheval, le bœuf et le chien (Japon). Hœmaphysalis parmata : sur le bœuf, le mouton, la chèvre et le porc (Cameroun). Hœmaphysalis chordeilis : sur le dindon (Etats-Unis). Hœmaphysalis campanulata • sur le chien (Chine). Hœmaphysalis wellingtoni : sur la poule (Bornéo). 2. Dermacentor Koch, 1844. Yeux présents; mâles dépourvus de pla- ques anales; base du rostre plus large que longue, rectangulaire; hanches 4 beaucoup plus grandes chez le mâle que les autres. Dermacentor reticulatus •' sur le bœuf, le mouton, la chèvre, le cheval, le porc, le chien et même l’homme; transmet les babésioses canine et équine, Fig. 20i. — Hœmaphysalis spinnlosa Q (D'après Neumann.) Fig. 202. — Dermacenfor varie - gatus Q*. (D’après Neu- mann.) 152 Dermacentor electus : sur le cheval, le chien, le bœuf et l’homme. Dermacentor occidentalis : sur le bœuf, le chien et l’homme. Dermacentor andersoni : sur le bœuf, le cheval, le chien et l’homme; intervient peut-être dans la transmission de la fièvre tachetée des Montagnes Rocheuses. Dermacentor nigrolineatus : sur le cheval. Dermacentor nitens : dans l’oreille du cheval. Dermacentor salmoni : sur le cheval, le bœuf. Dermacentor variabilis ■ sur le chien, le bœuf, le cheval et l’homme; incapable de propager la babésiose bovine. Dermacentor variegatus : sur le bœuf. Dermacentor venustus : sur le mouton. Dermacentor modestus ■ sur le cheval. Dermacentor circumguttatns : sur l’éléphant africain. 3. Boophilus Curtice, 1891. Yeux présents; 2 paires de plaques anales chez le mâle; péri- trème arrondi; pas de sillon anal chez la femelle; une soie au bord inféro-interne du lr article du palpe. Boophilus annulatus : sur le bœuf, le mouton, le chien; est l’agent de transmission de la fièvre du Texas. Des variétés de cette espèce ont été signalées : argentinus (Bue- nos-Aires); caiidatus, sur le cheval (Japon); calcaratus, sur le bœuf, le mouton; trans- mettrait au bœuf Theileria parva; micro- plus, sur le bœuf; transmettrait Babesia bovis, mais non Theileria parva (Amé- rique centrale et du Sud, Australie, Phi- lippines, Inde, Afrique du Sud). Boophilus decoloratus : sur le bœuf, le cheval, le mulet, la chèvre, le chien (Afrique); transmet Spirochœta theileri et Babesia bovis, mais non Theileria parva, Theileria mutans et Nut- tallia equi; les larves peuvent piquer l’homme. Fig. 2o3. — Boophilus annulatus rf (D’après Neumann.) 4. Margaropus Karsch, 1879. Diffère essentiellement du genre précédent en ce que les p'aques anales sont remplacées par un écusson unique qui contourne en avant l’anus; pattes 4 à arti- cles bosselés chez le mâle. Margaropus phthi- rioides : sur le cheval, rarement sur le bœuf. 5. Rhipicephalus Koch, 1844. Yeux présents; une paire de plaques anales chez le mâle; base du rostre plus large que longue, hexagonale à la face dorsale, formant de chaque côté un angle saillant; article basilaire du palpe portant plu- sieurs soies; péritrème en virgule; un sillon anal chez la femelle. Rhipicephalus sanguineus : sur le chien, le bœuf, le mouton, le chat, le cheval, le dromadaire, parfois sur l’homme; transmet la babésiose canine en France, au Soudan et aux Indes; propage aussi Hœmogregarina canis. Rhipicephalus capensis : sur le bœuf, le cheval, la chèvre et le chien; transmet au bœuf Theileria parva. Rhipicephalus simus : sur le bœuf, le chien, le mouton, la chè- vre, le cheval; transmet au bœuf Theileria parva-, les larves ont été signalées sur l’homme. Rhipicephalus pulchellus : sur l’âne, la chèvre. Rhipicephalus bursa ■ sur le chien, la chèvre, le mouton; inocule la babésiose du mouton ou carceag. Rhipicephalus evertsi : sur le bœuf, le cheval, l’âne, le mulet, le mouton et le chien; transmet au bœuf Theileria parva et au cheval la babésiose équine. Fig. 204. — Margaropus phthiricides rf . (D’après Neumann.) 154 Rhipicephalus hœmaphysaloides : sur le bœuf, la chèvre, le mouton. Rhipicephcilus appendiculatus : sur le bœuf, le cheval, le mulet, le mouton, la chèvre, le chien; transmet au bœuf Thei- leria par va. Rhipicephalus oculatus : sur le bœuf. Rhipicephalus nitens : sur le bœuf; lui inocule Theileria parva. Rhipicephalus ziemanni : sur le bœuf (Cameroun). Rhipicephalus kochi : sur le bœuf et le cheval. Rhipicephalus tricuspis : sur le cheval. Rhipicephalus duttoni ■ sur le bœuf, le cheval. Rhipicephalus longus : sur le bœuf. Rhipicephalus supertritus : sur le cheval. Rhipicephalus cuneatus : sur le bœuf. Rhipicephalus lunulatus : sur le cheval. Rhipicephalus attenuatus : sur le cheval. Rhipicephalus gladiger : sur le cheval et la chèvre. Rhipicephalus dux : probablement sur l’éléphant d’Afrique. Rhipicephalus glyphis : probable- ment sur le bœuf (Togo). 6. Rhipicentor Nuttall et Warburton, 1908. Yeux présents; base du rostre hexagonale à angles latéraux très proéminents; plaques anales rudimen- mentaires; hanches augmentant de Fig. 2o5. — Rhipicephalus cunea- tus çf . (D’après Neumann.) Fig. 206. — Rhipicentor bicornis Q* • (D’a- près Neumann.) taille d’avant en arrière, toutes bifurquées; les épines des hanches 1 et 4 très longues, celles de la hanche 1 recouvrant la hanche 2 dans les deux sexes. Rhipicentor bicornis ■ sur le cheval et la chèvre, aussi sur l’homme. b. Prostigmates. Acariens à téguments mous, renforcés par des sclérites spéciaux; une paire de stigmates près de la première paire de pattes. a. TROMBIDOIDÉS. Le dernier article des palpes est incliné sur l’avant-dernier, qui est généralement terminé par une griffe; corps souvent recouvert de poils nombreux. 1. TROMBIDIDÉS. Téguments mous; mandibules biarticulées disposées pour mordre; larves parasites (Leptus autumnalis). 1 Trombidium Fabricius, 1775. Deux écussons dorsaux médians striés longitudinalement; 8 poils sur l’écusson antérieur et 2 sur le pos- térieur; rostre caché sous les bords repliés de l’écusson antérieur; lèvre inférieure for- mant un anneau chitineux; les deux poils maxillo-coxaux placés en avant de la ligne d’insertion des palpes; yeux bien déve- loppés; 2 poils sur chaque hanche I et 1 poil sur chaque hanche II; pas de poils entre les anches I ni II. Trombidium striaticeps : sur les gal- linacés, le chien et l’homme. Fig. 207. — Trombidium striaticeps. (D’après Oudemans.) 2. Metatrombium Oudemans, 1909. Deux écussons médians poreux ; 8 poils sur l’écusson antérieur et 2 sur l’écusson postérieur; rostre proéminant librement; lèvre infé- rieure ne formant pas d’anneau chitineux; les deux poils maxillo- coxaux placés en avant de la ligne d’insertion des palpes; yeux bien développés; 2 poils sur chaque hanche 1 et II; pas de poils entre les hanches 1 ni II; écussons dorsaux symétriques excessivement petits et lisses; poils pseudostigmatiques minces et simples. Metatrombium poriceps : sur les gallina- cés, le chien et l’homme. 3. Microtrombidium Haller, 1882. Un écusson dorsal médian portant 7 soies; œil postérieur mal développé; 1 poil sur chaque hanche I et 2 poils entre les hanches I ou II; les poils maxillo-coxaux insérés en arrière de la ligne d’insertion des palpes. Microtrombidium méridionale : sur l’homme et les vertébrés su- périeurs (chiens, chats, bovidés, moutons, chevaux, lapins, poules). Microtrombidium pusillum •• sur l’homme, etc. Microtrombidium wichmanni • sur l’homme, etc. Microtrombidium vandersandei : sur l’homme, etc. Fig. 208. — Metatrombium pc r/ceps. (D’après Oudemans 4. Species inqukvndæ. Trombidium akamushi : détermine chez l’homme au Japon une maladie spéciale due à un virus inoculé par le parasite. Trombidium tlalsahuate : attaque l’homme au Mexique. Trombidium americanum : attaque l’homme et les animaux. Trombidium irritons : attaque l’homme et les animaux. A ce groupe se rattachent probablement les larves hexapodes connues sous les noms vulgaires de : pou d’Agouti (Guyane), bête rouge des Antilles, ciron rutilant des Savanes, Miaibi (Nouvelle-Gre- nade), Mouqui (Para), Colorado (Cuba). 2. TÉTRANYCHIDÉS Téguments mous; une ou deux paires d’yeux et des trachées; palpes quadriarticulés, l’avant-dernier article muni d’un ongle fort proéminent; mandibules biarticulées, sty- liformes; pattes composées de six articles; ouvertures sexuelles préanales; larve peu différente de l’adulte. Tetranyehus Dufour, 1832. Corps une fois à une fois et demie aussi long que large; pattes I plus lon- gues que le corps; palpes se terminant en un article spécial en forme de pouce. Tetranyehus molestissimus : se jette sur l’homme et les mammifères. Tetranyehus telarius : passe parfois sur l’homme. 3. CHEYLÉTIDÉS. Palpes épaissis à la base, se mouvant la- téralement, le dernier article souvent armé de deux peignes; yeux absents; pattes I terminées par plusieurs longs poils. Adultes parfois pa- rasites. 1. Syringophilus Hellfjr, 1880. Corps allongé; rostre fort, à palpes triar- ticulés; pattes courtes, terminées par deux ongles robustes et plusieurs cirres pectinés. Parasites des oiseaux dans le tuyau des plumes de l’aile et de la queue. Syringophilus hipectinatus : chez la poule, la pintade, le pigeon, le canard, etc. Fig. 209. — Tetranychus telarius var. rnsseolus. D’après Aktaüi.t, in Braun.) Fig. 2to. — Syringophilus bipectinatus çf . (D’après Ou- DEMANS.) 158 2. Sarcopterinus Railliet, 1893. Rostre saillant, conique, obtus ; palpes épais, composés de trois articles; pattes composées de cinq ar- ticles et terminées par deux ongles et un cirre ; ouverture génitale du mâle dorsale. Parasites des oiseaux. Sarcopterinus nidulans : dans des nodules cutanés chez le pigeon. 3. Cheyletus Latreille, 1796. Palpes formant ensemble un for- ceps; article terminal du palpe armé de deux poils falciformes et de deux peignes; poils dorsaux en forme de véritables plumes. Cheyletus eruditus ■ a été rencontré dans le conduit auditif externe chez l’homme. 4. Cheletoides OUDEMANS, 1904. Diffère du genre précédent en ce que l’ar- ticle terminal des pal- pes est dépourvu de peignes. Cheletoides uncina- tus : dans le tuyau des plumes du paon. Fig. 211. — Sarcopterinus nidulans Q* (D'après Mégnin.; Fig. 212. — Cheyletus eruditus Cf . (D’après Oudemans.i Fig. 2i.î. — Cheyletoides i/r/cï- natus çf . (D’après Oudemans.) 5. Cheyletiella Canestrini, 1886. Le dernier article des palpes est armé de très pe- tits poils; pattes terminées par un cirre foliacé ou bi- fide, accompagné ou non d’une paire de crochets. Mutualistes sur les mam- mifères et les oiseaux. Cheyletiella parasitivo- rax : dans la fourrure des lapins. Cheyletiella heteropalpa : à la base des plumes des pigeons. 6. Aearopsis Moquin-Tandoa, 1863. Article terminal des pal- pes armé de 2 poils falciformes et 1 peigne; deux plaques dorsales séparées entourées de téguments mous, la plaque antérieure trapé- zoïdale. Aearopsis mericourti : a été signalé dans le conduit auditif externe de l’homme. p. EUPODOIDÉS. Palpes généralement à quatre ou cinq ar- ticles, le dernier article jamais en forme de pouce sur l’avant-dernier; téguments ornés de soies rares. Fig 214. — Cheyletiella parasitivorax Ç (D’après Canestrini.) Fig. 2i5. — Acaropsis dcctu çf ■ (D’après Oudemans.) 160 1. EUPODIDÉS. Palpes droits; rostre petit; céphalothorax orné de poils diver- sement disposés; dernier article de la patte 1 plus court ou à peine plus long que l’article précédent; yeux, quand ils existent, près du bord postérieur du céphalothorax. Tydeus Koch, 1886. Mandibules faibles; pattes à peine aussi longues que le corps; ouverture anale sur la face ventrale. Tydeus molestus s'attaque à l’homme et aux animaux (chien, chat, poule, pintade, canard). Fig. 216. — Tydeus molestus. (D’après Moniez, in Braun 2. TARSONÉMIDÉS Corps de forme diverse, à céphalothorax et abdomen distincts; palpes simples, petits, peu distincts; mandibules faibles, styliformes; trachées présentes, partant de la base du rostre à la face ventrale; pattes de la Ie paire terminées par un seul ongle; un appendice clavi- forme de chaque côté entre les pattes I et II chez la femelle Di- morphisme sexuel bien accusé. a. Pédiculoidinés. Pattes postérieures chez la femelle terminées par une griffe et une caroncule comme les autres paires de pattes. Pediculoides Taroioni-Tozzetti, 1878. Chez la femelle, pattes de la 4e paire semblables aux autres pour le développement, terminées par deux ongles et une ventouse; pattes de la Ie paire normales terminées par un ongle, sans ventouse; chez le mâle, pattes de la 4e paire différant peu des autres pour la longueur et la grosseur et terminées par un ongle; bouclier dorsai segmenté; abdomen de la femelle gravide renflé en une sphère. Fig. 217. — Pediculoides ventricosus : a, Q*, b, Q . (D’après Banks.) Pediculoides ventricosus : peut s’attaquer à l’homme. b. Tarsonéminés. Pattes postérieures de la femelle terminées en longs poils. 1. Tarsonemus Canestrini et Fanzago, 1876 Pattes de la 4e paire peu développées chez la femelle, dépourvues de crochet et de ventouse et terminées par deux soies; pattes de la Ie paire con- formées comme celles des 2e et 3e paires, sauf qu’elles ne portent qu’un seul ongle; chez le mâle, pattes de la 4e paire robustes et termi- nées par un ongle puissant; épimères des 3e et 4e paires très longues et fortes et convergeant en avant; bou- clier dorsal segmenté. Tarsonemus intectus : attaque l’homme (Vallée du Danube). Fig. 218. — Tarsonemus Ju- ins Ç . (D’après Banks.) Fig. 219. — Tarsmemus la- tus Q* . (D’après Banks.) Tarsonemus hominis : signalé comme ayant été rencontré dans des tumeurs de l’ovaire chez la femme. Tarsonemus sauli : signalé comme ayant été rencontré dans des tumeurs chez différents animaux : cheval, chien, souris. 2. Nephrophages Miyaké et Scriba, 1893. Genre créé pour un parasite douteux de l’homme. Nephrophages sanguinarius : qui a été rencontré mort dans l’urine sanguinolente d’un Japonais. c. Astigmates. Acariens dégénérés par la vie parasitaire; téguments comme chez les prostigmates; appareil respiratoire absent. SARCOPTOIDÉS. Corps de forme arrondie; céphalothorax et abdomen souvent sé- parés par un sillon; face ventrale pourvue d’épimères; palpes géné- ralement à trois articles, en général simplement filiformes; mandi- bules disposées comme les mors d’une pince; chez l’adulte, quatre paires de pattes, généralement à 5 articles, dont le terminal est armé de 1 à 2 griffes, d’une ventouse pédiculée ou non, ou d’une caron- cule; trachées et stigmates absents; yeux rarement présents; dimor- phisme sexuel très fréquent et souvent très marqué; larves hexapodes. La plupart parasites sur ou dans la peau des mammifères, des oiseaux, etc. a. CYTOLEICH1DÉS. Pas de ventouses anales ni génitales; article terminal des pattes, du moins des pattes postérieures, inerme, muni d’une ventouse lon- guement pédiculée; tocostome longitudinal; mandibules, palpes maxil- laires et lèvre inférieure fusionnés pour former un suçoir. Parasites dans le tissu cellulaire sous-cutané et dans les sacs aériens des oiseaux. 1. Cytoleichus Mégnin, 1879. Corps ovoïde; rostre libre, recouvert à la base seulement par l’épistome; mâle sans lobes abdominaux; pénis reporté fort en arrière. Cytoleichus nudus : en colonies dans les voies respiratoires des gallinacés (pou- les, faisans). 2. Laminosioptes Mégnin, 1880. Corps allongé; rostre entièrement re- couvert par l’épistome; pattes courtes, munies de ventouses caduques aux deux paires antérieures. Laminosioptes cysticola : à la surface et dans l’épaisseur de la peau et dans le tissu conjonctif sous-cutané et profond des gallinacés (poules, faisans, dindons); peut-être aussi dans les voies respira- toires du pigeon. 3. SARCOPTIDÉS. Palpes maxillaires simples, filiformes, à 3 articles; ventouses anales présentes ou absentes chez le mâle; pas de ven- touses génitales; ventouses des pattes, quand elles existent, portées sur un pé- dicule simple ou articulé; quand elles n’existent pas, les tarses se terminent par des soies raides; tocostome trans- versal; anus terminal ou dorsal; tégument incolore ou faiblement coloré. Parasites des mammifères et des oiseaux, sont la cause des gales. Fig. 220. — Cytoleichus nudus. (D’a- près Banks.) Fig. 22 t. — Laminosioptes cysticela. (D’après Banks.) 1. Notoedres Railliet, 1893. Pas de ventouses anales chez le mâle; pas de tubes copulateurs chez la femelle fécondée; ventouses ambulacraires portées sur des pédicules longs et inarticulés sur les 2 premières paires de pattes dans les deux sexes et de plus sur la 4e paire chez le mâle; orifice anal dorsal. Parasites des mammifères. Notoedres cati : chez lé chat do- mestique; cause une gale transmissible à l’homme. Notoedres cuniculi : chez le lapin. 2. Sarcoptes Latreille, 1806. Pas de ventouses anales chez le mâle; pas de tubes copulateurs chez la femelle; ventouses ambulacraires lon- gues et inarticulées sur les 2 premières paires de pattes dans les deux sexes et de plus sur la 4e paire chez le mâle; orifice anal terminal. Parasites des mammifères. Sarcoptes scabiei : détermine chez l’homme une gale non transmissible aux animaux. On admet dans ce genre les variétés suivantes causant les gales des animaux : Sarcoptes scabiei var. canis : cause la gale du chien, transmissible à l’homme, mais non à d’autres animaux. Sarcoptes scabiei var. caprœ : peut causer des gales chez la chèvre, le mouton, le cheval, le bœuf et l’homme. Sarcoptes scabiei var. drotnedarii : détermine la gale du chameau, du dromadaire, etc., transmissible à l’homme. Sarcoptes scabiei var. equi : est l’agent d’une gale du cheval, qui est transmissible à l’âne, au mulet et à l’homme. Fig. 222. — Notoedres cati Ç> . (D’après Mégnin.) Fig. 223. — Sarcoptes scabiei Q* . (D’après Banks.) 165 Sarcoptes scabiei var. ovis : cause une gale du mouton, qui est transmissible au chien et peut-être aussi à l’homme. Sarcoptes scabiei var. parvuliis : dans le conduit auditif externe du porc. Sarcoptes scabiei var. cuniculi : détermine une gale du lapin, non transmissible au chien, au mouton, au bœuf et au cheval. Sarcoptes scabiei crustosæ : détermine la gale norvégienne chez l’homme. Sarcoptes scabiei var. suis : cause une gale du porc, transmis- sible à l’homme. Sarcoptes scabiei var. leotiis : est l’agent d’une gale du lion, transmissible à l’homme. Sarcoptes scabiei var. vulpis : détermine une gale du renard, transmissible à l’homme. Sarcoptes scabiei var. aucheniœ : détermine une gale du lama, transmissible à l’homme. Sarcoptes scabiei var. wombati : cause une gale du Phascolomys wombat, transmissible à l’homme. 3. Cnemidocoptes Fürstenberg, 1870. Mâles avec ou sans ventouses anales; femelles sans tubes copu- lateurs; femelles fécondées sans ventouses ambulacraires; mâles à ventouses ambu- lacraires longues et inarticulées à toutes les pattes; anus terminal. Parasites des oiseaux. Cnemidocoptes lœvis : chez le pigeon, à la base des plumes. Cnemidocoptes gallinœ : détermine la chute des plumes chez la poule. Cnemidocoptes mutons : détermine une gale localisée surtout aux pattes chez la poule, le dindon. Cnemidocoptes prolificus ’ sur l’oie domestique (Alfort). Fig. 224. — Cnemidocoptes mutans Ç (D’après Banks.) 4. Psoroptes Gervais, 1841. Mâles avec ventouses anales; femelles avec tubes copulateurs; ventouses ambulacraires à pédicule long et articulé sur les Ie, 2e et 43 paires de pattes chez la femelle fécondée, sur les 3 premières paires chez le mâle; la 4e paire de pattes du mâle est rudimen- taire et porte une ventouse simple non articulée; lobes abdominaux chez le mâle; anus terminal. Parasites des mammifères. Psoroptes communis : espèce dont on connaît les variétés suivantes : Psoroptes commuais var. bovis : cause une gale chez le bœuf. Psoroptes commuais var. cuniculi : sur les oreilles et dans les conduits auditifs externes du lapin. Psoroptes communis var. equi : dé- termine chez le cheval, l’âne et le bardot une gale non transmissible au bœuf. Psoroptes communis var. ovis : cause une gale du mouton. Psoroptes communis var. caprœ : cause une gale de la chèvre (France, Congo belge). 5. Chorioptes Gervais, 1859. Ventouses anales chez le mâle; tubes copulateurs chez la femelle; ventouses am- bulacraires portées sur un pédicule court et inarticulé sur toutes les pattes du mâle, sur les Ie, 2e et 4e paires chez la femelle; la 4e paire rudimentaire ou presque rudi- mentaire chez le mâle; lobes abdominaux chez le mâle pourvus d’appendices foliacés; anus terminal. Parasites des mammifères. Chorioptes symbiotes : espèce dont on connaît les variétés suivantes : Fig. 225. — Psoroptes communis var. ovis Ç . (D’après Banks.) Fig. 226. — Chorioptes symbiotes çf (D’après Mégnln. Chorioptes symbiotes var. equi : détermine la gale du pied ou du paturon chez le cheval. Chorioptes symbiotes var. bovis : cause chez le bœuf une gale qui débute par la face supérieure de la queue pour s’étendre de là sur les autres régions. Chorioptes symbiotes var. ca- prœ : parasite de la chèvre. Chorioptes symbiotes var. ovis : sur le mouton. Chorioptes symbiotes var. cu- niculi : sur le lapin. 6. Otodectes Canestrini, 1894. Ventouses anales chez le mâle; tubes copulateurs chez la femelle; ventouses ambulacraires avec pé- dicule court et inarticulé à toutes les pattes chez le mâle, aux 2 pre- mières paires chez la femelle; la 4e paire de pattes moins développée que la 3e chez le mâle; abdomen du mâle non bilobé; anus terminal. Parasites des mammifères. Otodectes cynotis : sur les oreilles et dans les conduits auditifs externes du chien et du chat. Fig. 227. — Otodedes cynoiis . (D’après Banks. Y. LISTROPHORIDÉS. Mandibules en forme de pince; palpes maxillaires simples, fili- formes; ventouses anales presque toujours présentes; pas de ventouses génitales chez la femelle, très rudimentaires chez le mâle; pattes nor- males terminées par une ventouse ambulacraire court pédiculée, rarement par 2 ou 3 crochets; vulve transversale ou longitudinale; anus non dorsal; dimorphisme sexuel en général fort accusé; appareil fixateur aux poils des mammifères toujours présent. Parasites du pelage. 168 Listrophorus Pagenstecher, 1861. Lèvre inférieure transformée en un organe de préhension bilabié; pattes normales, toutes également développées, munies de ventouses; dimorphisme sexuel bien accusé; mâles munis de ventouses anales. Listrophorus gibbus : sur le lapin. 8. ANALGÉSIDÉS. Ventouses anales le plus souvent présentes; pas de ventouses génitales; vulve ordinairement transversale; bouclier dorsal plus ou moins dé- veloppé; dimorphisme sexuel généralement bien accusé. Vivent sur ou entre les plumes des oiseaux, pénètrent parfois dans la peau. Ptérolichinés. Bord postérieur de l’ab- domen de la femelle pourvu d’aucune autre espèce d’ap- pendices que de soies; pat- tes postérieures d’un déve- loppement sensiblement égal chez le mâle et la femelle; ventouses ana'es bien déve- loppées; téguments fort chitinisés ; pal- pes maxillaires sans rebord membra- neux. 1. Freyana Haller, 1877. Mâle avec ventouses anales; fe- melle à abdomen à contour postérieur circulaire ou faiblement incurvé; 3e et 4e paires de pattes submédianes; corps court à peine plus long que large (Eu- freyana); 2e et 3 ' articles des pattes an- térieures épaissis parfois(Microspalax). Fig. 228. — Listrophorus gib- bus Q* . (D’après Mégnin.) Fig. 22.j. — Freyana anatina çf . (D’après Haller.) Freyana (Eufreyana) anserina : sur l’oie et le cygne. Freyana (Eufreyana) anatina : sur le canard. Freyana (Microspalax) chanayi sur le dindon. 2. Pterolichus Robin, 1868. Pattes postérieures latérales ou sublatérales, pas submédianes; lobes abdominaux chez le mâle présents, rarement absents ; pattes de dévelop- pement égal dans les deux sexes (Eu- pterolichus). Pterolichus (Eupterolichus) bi- caudatus : chez l’autruche. 3. Falculifer Railliet, 1896. Deux formes de mâles : une à mandibules normales, une autre à mandibules dont l’article immobile est fort allongé; pour le reste res- semble à Pterolichus. Falculifer rostratus : sur le pigeon do- mestique. Falculifer cornutus : sur le pigeon domes- tique. P'. Dermoglyphinés. Ventouses anales parfois absentes ou pe- tites et à disposition irrégulière; bord posté- rieur de l’abdomen chez la femelle adulte orné seulement de soies et non d’appendices falciformes pairs. Vivent dans le tuyau des plumes. Fig. 2Ôo. — Pterolichus sp. (D’après Banks.) Fig. 2.îi. — Falculijer ros- tratus q* . (D’après Banks ) 170 Dermoglyphus Mégnin, 1877. Toutes les pattes dans les deux sexes munies d’ambulacres à ventouse; la première paire chez le mâle hé- téromorphe beaucoup plus développée que les autres. Dermoglyphus minor : chez la poule, le dindon et la pintade. Dermoglyphus varions : chez la pintade. Dermoglyphus elongatus : chez la poule. Dermoglyphus pachycnemis : chez l’autruche. y'. Analgésinés. Bord postérieur de l’abdomen de la femelle orné exclusivement de soies; pattes postérieures du mâle plus développées que celles de la femelle. 1. Analges Nitzsch, 1818. Pattes antérieures épineu- ses, avec un prolongement en forme de manchette à leur ar- ticle terminal; ventouses ambu- lacraires en général peu déve- loppées; Ie paire de pattes sans ventouses; abdomen du mâle le plus souvent non lobé, celui de la femelle toujours non lobé. Analges bifidus : sur le pigeon domestique. 2 Megninia Berlese, 1884. Pattes antérieures fort épi- neuses, à prolongement en man- chette sur l’article terminal; Fig. 232. — Dermoglyphus elon- gatus Q ■ (D’aprèsMégninJ Fig. 233. — Analges passer inus c? . (D’après Banks. toutes les pattes munies de ventouses en général peu développées; Ie paire de pattes plus développée et plus longue chez le mâle que les autres; abdomen en général bilobé, ra- rement indivis chez le mâle, indivis chez la femelle; pattes postérieures de la fe- melle peu développées, minces, géné- ralement plus courtes que l’abdomen. Megninia cubitcilis : sur le dindon. Megninia columbœ : sur le pigeon. Megninia velata : sur le canard. °r. Proctophyllodinés. Abdomen de la femelle adulte à deux lobes armés d’appendices falci- formes. Pterophagus Mégnin, 1877. Ventouses anales chez le mâle; toutes les pattes également développées dans les deux sexes; abdomen du mâle faiblement bilobé, chez la femelle muni de deux prolongements coniques, épais et armés de soies; pénis très petit; vulve sans épyginium; face dorsale armée de plaques chitineuses. Pterophagus strictus : chez le pi- geon domestique. £f. Épidermoptinés. Palpes maxillaires munis d’un re- bord membraneux; tégument faiblement chitinisé, strié, plus ou moins transparent; ventouses génitales ab- sentes; ventouses anales présentes chez le mâle; ventouses ambulacraires Fig. 2.'4 — Megninia albida D’après Tyrrell, in Banks.) Fig. 2oS. — Pterophagus strictus çf . D’après Mégnin.) 172 généralement à long pédicule; dimorphisme sexuel apparent. Vivent sur ou dans la peau. 1. Epidermoptes Rivolta, 1876. Pattes toutes egalement developpees dans les deux sexes; ven- touses ambulacraires normales; tarses armés de crochets dans les deux sexes; épimères libres; abdo- men de la femelle bilobé; pénis court et conique; épy- gynium situé en avant des épimères de la 3° paire de ' pattes. Epidermoptes bilobatus : sur la poule. 2. Rivoltasia Canestrini, 1894. Toutes les pattes égale- ment développées dans les deux sexes; ventouses am- bulacraires normales; tarses sans crochets dans les deux sexes; épimères des pattes antérieures libres chez le mâle, réunies par une plaque chitineuse chez la femelle; abdomen du mâle bilobé; pénis court et conique; pas d’épigynium. Rivoltasia bifarcata : chez la poule. Fig. 206. — Epidermoptes biloba tus çf . D’après Ca NESTR1M.) TYROGLYPH1DÉS. Tégument lisse ou mamelonné ou épineux; pattes de la 4e paire armées de crochets et le plus souvent d’une caroncule sessile. 173 1. Tyroglyphus Latreille, 1796. Sillon séparant le céphalothorax de l’abdomen ; tégument mou et lisse; mandibules en forme de pince; palpes maxillaires à trois articles ; ventouses génitales dans les deux sexes; ventouses anales chez le mâle; ventouses ambulacraires à la 4e paire de pattes. Tyroglyphus siro : ingéré, pro- voque du catarrhe stomacal et in- testinal chez l’homme; occasionne aussi une éruption prurigineuse des parties découvertes du corps chez les ouvriers qui manipulent les gousses de vanille. Tyroglyphus longior : a été ren- contré dans les selles, l’urine et le pus de lésions cutanées chez l’homme. Tyroglyphus farinœ : ingéré, peut produire du catarrhe intestinal ; pro- voque aussi des éruptions cutanées et de fortes démangeaisons chez des ouvriers manipulant du blé. 2. Histiogaster Berlese, 1883. Sillon, ventouses génitales et anales comme dans le genre précédent; ventouses ambulacraires absentes chez le mâle; à l’extrémité postérieure de l’abdomen du mâle une plaque chitineuse proéminant librement en arrière; mandibules en forme de pince. Histiogaster entomophagus : a été trouvé à l’intérieur d’une tumeur digitale; peut donner lieu également à des éruptions cu- tanées prurigineuses chez l’homme. Fig. 237. — Tyroglyphus sp. (D'après Per gande, in Banks ) Fig. 23*. — Histiogaster ma/us Ç (D’après Banks.) Histiogaster spermaticus : a été rencontré dans le liquide obtenu par ponction d’un kyste du pli de l’aine chez l’homme (Inde). 3. Rhizoglyphus Claparède, 1869. Sillon, ventouses génitales et anales comme dans les gen- res précédents; ventouses am- bulacraires à toutes les pattes; mandibules en forme de pince; 2 formes de mâles : chez le mâle hétéromorphe, la première paire de pattes dépourvues de crochet est transformée en un organe de préhension. Rhizoglyphus parasiticus : produirait une éruption cutanée chez les ouvriers des planta- tions de thé (Inde). 4. Glyciphagus Herinq, 1838. Sillon présent ou absent; mandibules en forme de pince; ventouses génitales dans les deux sexes; pas de ventouses anales ni ambulacraires chez le mâle. Glyciphagus domesticus : est accusé d’occasionner en Angleterre la gale des épiciers (irritation violente, mais passagère de la peau). 2.-9. — Rhizoglyphus rhizophagus. (D’après Banks.' Fig'. 240. — Glyciphagus obesus. (D’après Banks.) 5. Carpoglyphus Robif-, 1869. Sillon absent; ventouses génitales dans les deux sexes; pas de ventouses anales ni ambulacraires chez le mâle; mandibules en forme de pince; épinières des 2 premières / paires de pattes unies entre elles; vulve reportée en avant; pattes ar- mées de crochets et de caroncules. Carpoglyphus alienus : a été rencontré dans l’urine purulente d’un homme. d. Vermiformes. Acariens à corps allongé; sans appareil respiratoire. DÉMODICIDÉS. Céphalothorax et abdomen non distincts; palpes maxillaires à 3 articles, dont le terminal en forme de crochet; mandibules styliformes; quatre paires de pattes à 3 articles; pas d’yeux; pas de dimor- phisme sexuel ; larves apodes ou hexapodes, nym- phes octopodes. Parasites des glandes sébacées et des follicules pileux des mammifères. Demodex Owen, 1843. Caractères de la famille. Demodex folliculorum : chez l’homme. On ad- met de cette espèce les variétés suivantes : Demodex folliculorum var. canis : chez le chien. Demodex folliculorum var. caprœ : chez la chèvre. Demodex folliculorum var. cali : chez le chat. Fig. 241. — Carpoglyphus passularum çf . (D’après Banks. Fig. 242. — Demodex fol- liculorum. (D'après Banks.) Demodex folliculorum var. ovis : chez le mouton. Demodex folliculorum var. equi : chez le cheval. Demodex folliculorum var. cuniculi : chez le lapin. Demodex bovis : chez le bœuf. Demodex phylloides : chez le porc. 2. LINGUATULIDES. Arachnides à corps allongé, annelé, présentant deux paires de crochets aux côtés de la bouche dépourvue de mâchoires; pas de pattes. 1. Linguatula Frôlich, 1789. Linguatulides à corps déprimé; face dorsale con- vexe; bords crénelés; cavité du corps formant des diverticules dans chacun des anneaux. Linguatula serrata : adulte, dans les fosses nasales du chien, du cheval, de la chèvre, du mou- ton, du mulet et même de l’homme; larve, dans les viscères, les ganglions mésentériques, le foie et les poumons du mouton, de la chèvre, du bœuf, du cheval, du porc, du lapin, du chat et de l’homme. 2. Porocephalus Humboldt, 1811. Corps cylindrique; cavité du corps ne présen- tant pas de diverticules latéraux Porocephalus armillatus : larve chez l’homme et le chien (Afrique). Porocephalus moniliformis : larve chez l’homme et le chien (Java, lies Philippines). Porocephalus naiœ sputatricis : larve trouvée chez l’homme aux Indes. Fig. 243. — Linguatula ■errata. (D’après Brumpt.1 Fig. 244. — Porocephalus armillatus. (D’après Sambon,, in Hanson.) C. Chilopodes. Arthropodes à somites pourvus d’une seule paire d’appendices; respiration trachéenne. Parasites accidentels. a. SCUTIGÉRIDÉS. Yeux composés; antennes très longues; écussons dorsaux moins nombreux que les écussons ventraux; nombre des pattes constant; pleures sans stigmates. Scutigera Lamarck, 1801. 8 écussons dorsaux; 15 segments munis de pattes. Scutigera coleoptrata : a été signalé sans preuves suffisantes comme pouvant vivre dans le tube digestif de l’homme. b. LITHOBIIDÉS. Yeux simples (ocelles) en nombre variable; antennes moins lon- gues que le corps; écussons ventraux aussi nombreux (15) que les écussons dorsaux; nombre des pattes constant (15); stigmates disposés par paires. Lithobius Leach, 1814 Ocelles agglomérés en deux groupes latéraux au nombre de 2 à 40; les écussons 2, 4, 6, 9, 11 et 13 plus courts que les autres. Lithobius forficatus et Lithobius melctnops : ont été rencontrés dans les cavités nasales de l’homme. c. GÉOPHILIDÉS. Yeux absents; antennes à 14 articles; écussons ventraux aussi nombreux que les écussons dorsaux ; nombre des pattes variable sui- vant les genres et même les individus (31 à 173); stigmates disposés par paires dans les pleures. 1. Geophilus Leach, 1814. Antennes filiformes; bords de la lèvre supérieure frangés; mâ- choires inférieures munies en dehors de deux paires de palpes. Geophilus carpophagus : a été observé dans les fosses nasales de l’homme. » Geophilus eleclricus : a été rencontré dans les fosses nasales et le tube digestif de l’homme. Geophilus similis et Geophilus cephalicus ■ ont été signalés dans les fosses nasales de l’homme. Geophilus sodalis : a été trouvé dans l’albumine d’un œuf de poule. 2. Himantarium Koch, 1847. Tête petite, plus large que longue ; antennes courtes et renflées; mâchoires inférieures sans palpes; segments du corps munis de pleu- rites intermédiaires; nombre des paires de pattes 97 à 173. Himantarium gervaisi : a été signalé dans le tube digestif de l’homme. 3. Chæteehelyne Meinert, 1870. Tête petite; antennes courtes, filiformes ou légèrement renflées; mâchoires inférieures sans palpes; nombre des paires de pattes 55 à 77. Chœtechelyne vesuviana : a été rencontrée dans le tube digestif ainsi que dans les fosses nasales de l’homme. 4. Haplophilus Verhoeff, 1896. Genre analogue à Himantarium; segments du corps dépourvus de pleurites intermédiaires; nombre des paires de pattes 73 à 145. Haplophilus subterraneus : a été signalé dans le tube digestif de l’homme. 179 D. Hexapodes. Arthropodes à respiration trachéenne; tête munie d’antennes; trois paires de pattes et ordinairement deux paires d’ailes; thorax com- posé de trois segments et abdomen généralement de neuf segments apparents. I. APTÉRYGOTES. Insectes originellement aptères, à développement direct (améta- boliens). COLLEMBOLES. Aptérygotes munis le plus souvent d’un appendice saltatoire fourchu replié sous le ventre et inséré plus ou moins près de l’ex- trémité de l’abdomen. Achorutes Templeton, 1835. Corps épais, formé de neuf segments, dépourvu d’écailles et fai- blement velu; antennes droites, légèrement coniques, composées de quatre aiticles, et plus courtes que la tête; seize yeux; pattes courtes, assez grosses; appendice saltatoire court, large à sa base, inséré sous le ventre au niveau du quatrième anneau. Achorutes viaticus : p«eudo-parasite observé sur le chien. D’autres collemboles insuffisamment caractérisés ont été décrits chez des chevaux sous le nom de Podurhippus pityriasicus. Chez l’homme a été signalée une espèce de collembole semblant appartenir au genre Seira, voisine de Seira domestica. II. PTÉRYGOTES. Insectes pourvus d’ailes ou secondairement aptères, à développe- ment accompagné de métamorphoses plus ou moins complexes. 180 1. ANOPLURES. Appareil buccal disposé pour sucer; antennes à 3, 4 ou 5 articles; yeux absents ou présents; ailes absentes; abdomen à 9 segments; stigmates sur les 3e-8c segments abdominaux, rarement aussi sur le 2e; 1 paire de stigmates sur le mésothorax, rarement une 2e paire plus petite sur le métathorax. Ectoparasites des mammifères. a. PÉDICULIDÉS. Corps aplati; tête non tubuliforme en avant; yeux gros à pig- mentation accusée; antennes à 3 ou 5 articles; une paire de stigmates sur le mésothorax et sur les 3e-8e segments abdominaux. Pédiculinés. Antennes à 5 articles. J. Pediculus Linné, 1758. Toutes les pattes puissantes, la paire antérieure plus ramassée et plus vigoureuse que les autres; abdomen allongé, modérément étroit; segments abdomi- naux sans prolongements latéraux. Pediculus capitis : sur l’homme. Pediculus corporis : sur l’homme; trans- met le typhus exanthématique et peut-être la fièvre récurrente. Pediculus (?) punctatus : sur l’Yak. 2. Phthirus Leach, 1815. Pattes antérieures grêles munies d’un cro- chet long et mince; les autres pattes très Fig. 245. — Pediculus capitis çf. (D’après Giebbl.) puissantes et munies de crochets gros et courts; abdomen court et large; segments abdo- minaux 5 à 8 pourvus de prolongements la- téraux augmentant de longueur du premier au dernier. Phthirus pubis : sur l’homme. b. HÉMATOPINIDÉS. Corps aplati ; tête tubuliîorme en avant; yeux peu apparents ou absents; antennes à 3 ou 5 articles; une paire de stigmates sur le mésothorax et sur les segments abdominaux 3 à 8. Fig. 246. — Phthirus pubis. (D’après Giebel.) a. Hématopininés. Antennes à 5 articles; yeux rudimentaires portés sur un prolon- gement latéral aigu de la région postérieure de la tête; pattes toutes de la même grosseur. Hæmatopinus Leach, 1817. Thorax et abdomen larges; épaississe- ments chitineux des pleures sur les segments abdominaux 3 à 8, légèrement proéminents en dehors. Hæmatopinus asini : sur le cheval et l’âne. Hæmatopinus eurysternus : sur le bœuf. Hæmatopinus ovillus : sur le mouton. Hæmatopinus suis : sur le porc. Hæmatopinus suis adventicius : sur le porc (Asie). Hæmatopinus tuberculatus : sur le buffle, le chameau et le dromadaire. ig. 247. — H te mat opinas sais (D'après Giebel.) 182 [3. Linognathinés. Antennes à 5 articles; yeux absents; région postérieure de la tête sans prolongements latéraux; pattes antérieures plus grêles que les autres. l. Linognathus Enderlein, 1905 Tête plus ou moins grêle; bord abdominal lisse; stigmates grands; pattes médianes et postérieu- res sensiblement de même développement. Linognathus pedalis ■ sur le mouton. Linognathus piliferus : sur le chien. Linognathus stenopsis ' sur la chèvre. Linognathus vituli : sur le bœuf. Linognathus africanus sur le mouton (Nigérie, Afrique occidentale). 2. Hæmodipsus Enderlein, 1904. Abdomen allongé, à bords latéraux lisses, non épineux ; stigmates remarquablement pe- tits; pattes médianes et postérieures sensi- blement de même développement ; pilosité très longue. Hæmodipsus venfricosus : sur le lapin. 3. Solenopotes Enderlein, 1904. Abdomen relativement large et ramassé ; bords latéraux en arrière du stigmate anté- rieur armés d’une épine puissante ; stigmates modérément grands proéminant au-delà du bord postérieur de l’ab- domen; crochets des pattes antérieures très longues et aiguës. Solenopotes capillatus : sur le bœuf. Fig. 248- — Linognathns piliferus. (D’après Giebel ) Fig. 249 — Hœmodipsus lyrioce- phalus. (D’après Giebel.) Fig. 25o. — Solejiopotes capillaius. (D’après Endkrlein.) c. HÉMATOMYZIDÉS. Tête tubuliforrne en avant; antennes à 5 articles; pattes non transformées en crampons; tibias et tarses très longs et grêles. Hæmatomyzus Piaget, 1869. Caractères de la famille. Hæmatomyzus elephantis : sur l’éléphant indien. Hæmatomyzus elephantis var. su- matranus : sur l’éléphant indien (Su- matra). Hæmatomyzus paradoxus : sur l’éléphant (République Argentine). Fig. 25t.— Hcematomyzus clephantis. (D’après Newman.) 2. MALLOPHAGES Appareil buccal disposé pour mordre; pas d’ailes; tête large. a. Ischnocères. Antennes filiformes à 3 ou 5 articles; pas de palpes maxillaires; mandibules verticales; méso- et métathorax généralement fusionnés; quatre testicules; 5 tubes ovariens. *. TRICHODECTIDÉS. Antennes à 3 articles; tarses armés d’un seul crochet. Parasites des mammifères. Trichodectes Nitzsch, 1818. Caractères de la famille. Trichodectes breviceps : sur le lama. Trichodectes capræ : sur la chèvre. 184 Trichodectes climax : sur la chèvre. Trichodectes crassipes • sur la chèvre an- gora. Trichodectes latus : sur le chien. Trichodectes limbatus : sur la chèvre. Trichodectes parumpilosus : sur le cheval. Trichodectes pilosus : sur le cheval et l’âne. Trichodectes scalaris : sur le bœuf. Trichodectes sphœrocephalus : sur le mouton. Trichodectes subrostratus : sur le chat. P. PHILOPTÉRIDÉS. Antennes à cinq articles, non logées dans une excavation de la face inférieure de la tête, mais prolongeant la tête latéralement; tarses à deux crochets. Parasites des oiseaux. Fig. 2Ô2. — Trichodectes vul- pis Q , (D’après Kellogg.) 1. Philopterus Nitzsch, 1818. Tête large; antennes semblables dans les deux sexes, le premier article épais, le second le plus grand et les arti- cles 3 à 5 à peu près égaux ; méso- et métathorax complètement fusionnés ; première paire de pattes petites; abdomen généralement ovalaire, à 9 segments sensiblement égaux en longueur. Parasites de tous les ordres d’oiseaux, à l’exception des gallinés. Philopterus cygni : sur le cygne. Philopteras icterodes : sur le canard et l’oie. 2. Goniocotes Burmeister, 1835. Petites espèces; antennes du mâle dépourvues d’appendices, sem- blables dans les deux sexes, les deux premiers articles étant parfois plus grands chez le mâle que chez la femelle. Fig. 253. — Philopterus icterodes çf . (D’après Neumann.) Gouiocotes abdominalis sur la poule. Goniocotes chrysocephalus ■ sur le faisan. Goniocotes compar : sur le pigeon. Goniocotes gigas : sur la poule. Goniocotes hologaster : sur la poule, la pintade. Goniocotes rectangulatus : sur le paon et la pintade. 3. Lipeurus Nitzsch, 1818. Corps allongé; tête étroite; antennes chez le mâle à 1er article long et épais et 3e ar- ticle muni d’un appendice; antennes chez la femelle filiformes, à 1er article le plus gros et le 2e le plus long ; métathorax au moins deux fois aussi long que le prothorax et montrant souvent une constriction, indice de la ligne de fusion du méso- avec le métathorax; segments abdominaux 8 et 9 fu- sionnés. Parasites des oiseaux. Lipeurus anseris : sur l’oie domestique. Lipeurus columbœ sur le pigeon, la tourterelle. Lipeurus heterographus : sur la poule, le canard. Lipeurus crassicornis : sur l’oie domes- tique. Lipeurus numidœ : sur la pintade. Lipeurus meleagridis : sur le dindon. Lipeurus quadrimaculatus : sur l’autruche. Lipeurus anatis : sur le canard. Lipeurus caponis : sur la poule, le faisan, la pintade. Fig. 254. — Gouiocotes compar Q* !" D’après Kellogg.) Fig. 255. — Lipeur us columbæ Q* (D'après Neumann ) 4. Goniodes Nitzsch, 1818. Corps grand et large; tête anguleuse; antennes à 3e segment muni d’un appendice chez le mâle; pro- thorax trapéziforme ; métathorax très grand, à bords arrondis; abdomen lar- gement ovale. Goniodes burnetti : sur la poule. Goniodes colchicus : sur le faisan. Goniodes damicornis : sur le pigeon. Goniodes dissimilis : sur la poule. Goniodes falcicornis . sur le paon. Goniodes minor : sur le pigeon. Goniodes numidianus : sur la pintade. Goniodes parviceps : sur le paon. Goniodes stylifer : sur le dindon. Goniodes truncatus : sur le faisan. Fig. 256. — Goniodes cervinicornis Ç (D’après Kellogg.) 5. Ormthonomus Neumann, 1909. Corps allongé, étroit; tête large, quadrangulaire; antennes insé- rées en avant du milieu de la tête et différentes dans les deux sexes : chez le mâle, les deux premiers articles plus gra ds que les autres et le troisième obliquement tronqué, muni ou non d’un appendice. Ornithonomus cygni : sur le cygne. Ornithonomus goniopleurus sur le cygne. b. Amblycères. Antennes renflées, à 4 articles, semblables dans les deux sexes; palpes latéraux à 4 ar- ticles; mandibules horizontales; suture entre le méso- et le métathorax généralement dis- tincte; tubes ovariens au nombre de 3 à 5. Fig. 257- - Ornithonomus cygtii Ç • (D’après Kellogg a. GYROPIDÉS. Tête à prolongements angulaires latéraux; pièces buccales en avant du bord antérieur de la tête. 1. Gyropus Nitzsch, 1818. Abdomen de forme ovalaire; tarses mu- nis d’une griffe. Gyropus ovalis : sur le cobaye. « 2. Glyrieola Mjôberg, 1910. Abdomen allongé; yeux absents; pièces buccales rétractiles entre la lèvre supérieure et la lèvre inférieure; tarses inermes. Gliricola gracilis : sur le cobaye, p. LIOTHÉIDÉS Tarses à deux griffes; antennes à 4 ar- ticles insérées dans une excavation de la face inférieure de la tête. Parasites des oiseaux, parfois des mammifères. 1. Liotheum Nitzsch, 1818. Corps allongé, ovale ou elliptique; tête généralement plus large que longue; palpes maxillaires s’étendant au-delà des bords la- téraux de la tête; antennes à lr article court, cylindrique, le 2e conique, tronqué, le 3e cupuliforme et le 4e cylin- drique ou ovoïde et généralement tronqué obliquement; prothorax en général plus long que le métathorax, à angles latéraux proéminents; abdomen à 9 segments; tarse à lr article court et muni d’un petit lobule aplati, le 2d très long et grêle. Liotheum longicaudutn : sur le pigeon, Fi K- 238. — Gyropus ovalis Q ;i>’après Kellogg.) Fig. 259. — Liotheum longicau- dum qJT . (D’après Neumann. 2. Menopon Nitzsch, 1818. Forme du corps semblable à Liotheum; antennes courtes, les 2 premiers articles tronqués, coniques, le second rarement muni d’un appendice, le 3U généralement pédiculé et cupuliforme, recevant le 4e sphérique, ovoïde ou cylin- drique, toujours le plus volumineux des quatre; méso- et métathorax fusionnés; pattes longues; 1er article du tarse très court avec un lobe de forme variable; le 2d long avec une petite plaque chitineuse souvent dilatée à son extrémité. Menopon biseriatum : sur la poule, le faisan, le dindon. Menopon giganteum : sur le pigeon. Menopon longicephalum : sur le pigeon. Menopon numidœ : sur la pintade. Menopon trigonocephalum : sur la poule, le pigeon, le canard. Menopon phœostomum : sur le paon. Menopon productum : sur le faisan. Menopon stramineum : sur le dindon. Menopon obscurum : sur le canard domestique. Menopon extraneum : sur le cobaye. Menopon jenningsi : sur le cobaye. Fig. 260. — Menopon mesoleucum (D’après Kellogg.) 3. Trinoton Nitzsch, 1818. Corps allongé; tête triangulaire à angles arrondis; antennes courtes; palpes proéminant au-delà des bords latéraux de la tête; yeux proéminents; thorax fort long; mésothorax séparé du métathorax par une suture distincte; pattes longues, puissantes; tarses à 1er ar- ticle court, à deux lobes étroits et aigus, le 2d muni de deux petits lobes près de son extrémité; abdomen ovale allongé, à 9 segments. Trinoton anseris : sur l’oie domestique et le cygne. Trinoton continuum : sur l’oie do- mestique; probablement variété de l’espèce précédente. Trinoton lituraium : sur l’oie do- mestique. Trinoton luridum : sur le canard et l’oie. 4. Læmobothrium Nitzsch, 1818. Espèces de grande taille ; corps allon- gé; tête en général plus longue que large, tronquée et excavée en avant; bord occi- pital concave ; suture mésothoracique obso- lète; métathorax séparé de l’abdomen par une suture, mais avec l’apparence générale d’un segment abdominal; pattes longues et puis- santes; 1er segment du tarse court et lobulé, le 2d très long et non lobulé; abdomen allongé. Læmobothrium lichtensteini ■ sur une autruche. 3. HÉMIPTÈRES. Hexapodes munis de deux paires d’ailes de dé- veloppement variable, la paire antérieure de consis- tance variable, la paire postérieure toujours membra- neuse; pièces buccales disposées pour sucer; méta- morphoses incomplètes. a. Hétéroptères. Ailes antérieures en hémélytres; rostre inséré sur le front. Gymnocérates. Antennes libres, proéminentes, formées de 3 à 5 articles, sans appendices latéraux. Fis. 261. — Trinoton lituratum Ç (D’après Kellogg.) Fig. 262. — Lœmobothrinm atrnm Ç> . D’après Kel- logg *. CLINOCORIDÉS. Ocelles absents; hémélytres rudimentaires; ailes postérieures ab- sentes; corps aplati; lèvre supérieure triangulaire; palpes à 1er article court et épais, 2e allongé, 3e et 41' filiformes. 1. Clinocoris Petersonn, 1829. Tête plus longue que la partie moyenne du thorax; thorax fort excavé en avant, à angles antérieurs proéminents; hémélytres rétrécis du côté interne; membres grêles; corps à pubescence courte. Clinocoris lectulorius : punaise des lits, pique l’homme; a été observé aussi dans les poulaillers; le rôle de cet hémiptère dans la transmission de la fièvre récurrente à l’homme n’est pas suffisamment démontrée; peut-être intervient-il dans la propagation de la leishma- niose cutanée (Bouton d’Orient). Clinocoris rotundatus : punaise des régions intertropicales; inter- vient peut-être dans la trans- mission de la fièvre récur- rente et du kala-azar, mais ce rôle a besoin d’être dé- montré expérimentalement. Clinocoris columbarius • vit dans les poulaillers et les pigeonniers; peut aussi piquer l’homme. Clinocoris inodorus : pu- naise des poules (Mexique); pique peut-être aussi l’homme. Clinocoris pipistrelli : pu- naise des chauves-souris; pique probablement aussi l’homme. Clinocoris (?) boueti : punaise de la Guinée, pique l’homme. Fig 2 .1. — Clinocoris rotundatns. (D’après Brumpt 2. Œciacus Stal, 1873 Thorax faiblement excavé en avant, à angles latéraux peu pro- éminents; tête à peine plus longue que la partie médiane du thorax; 191 hémélytres rétrécis du côté interne; membres moins grêles que dans le genre précédent; pilosité dense et longue. Œciacus hirundinis : vit dans les nids d’hirondelles; peut pé- nétrer dans les habitations et piquer l’homme. 3. ANTHOCORIDÉS. Hémélytres avec embolium; membrane avec 1 à 4 nervures qui prennent naissance au sommet et sur le long côté d’une cellule ba- sale triangulaire fort étroite; antennes à articles cylindroïdes, le 2e article parfois renflé à son extrémité supérieure, les autres filiformes ou légèrement fusiformes; tête subconique sur le côté; aile à cellule munie ou non d’un hamus. 1. Anthocoris Fallén, 1829. Hamus présent; pronotum longuement trapézoïdal, à côtés presque rectilignes, présentant en avant un bourrelet annulaire et en arrière une large échancrure; antennes et membres grêles; tête allongée en avant des yeux ; emboliutn large ; rostre ne s’étendant pas au-delà de l’extrémité du prosternum; ocelles en arrière des yeux; membrane à trois nervures. Anthocoris kingi : pique l’homme (Soudan égyptien). Anthocoris congolensis : pique l’homme (Congo belge). 2. Lyctocoris Hahn, 1835. Hamus présent; pronotum échancré en avant et en arrière, dé- pourvu en avant de bourrelet annulaire; rostre long, atteignant l’ex- trémité postérieure du métasternum; antennes à articles 1 et 2 gros, le second renflé en haut, à articles 3 et 4 filiformes, à peu près d’é- gale longueur; membrane avec une nervure partant de la cellule; pattes grêles. Lyctocoris campestris : peut occasionnellement piquer l’homme. Y. RÉDUVIIDÉS. Antennes à 4 articles; pattes toutes à 3 articles; 2 ocelles en arrière des yeux, parfois peu apparents; hémélytres sans embolium; membrane à nervures unies entre elles de manière à former deux cellules allongées; rostre court, solide, à 3 articles, coudé au niveau du 2e ou 3e' article; tête rétrécie dans la région du cou; hamus sur la nervure transversale; antennes flagelliformes. 1. Reduvius Fabricius, 1803. Tête allongée, coudée; yeux proéminents, presque contigus à la face inférieure de la tête; pronotum muni d’un bourrelet annulaire et d’une double saillie; ocelles présents. Reduvius personatus : peut piquer l’homme. 2. Rhinoeoris Hahn, 1834. Tête allongée ; racine du rostre n’atteignant que le tiers de la longueur de la tête; saillies du pronotum unies en arrière par un bourrelet transversal; scutellum triangulaire, obtus; métasternum pen- tagonal, aigu en avant, allongé de droite à gauche; cellule basale de la membrane avec nervures latérales; 1er article de l’antenne long, cylindroïde comme les autres articles; ocelles présents. Les espèces de ce genre piquent à l’occasion l’homme et notam- ment Rhinocoris iracundus, du Midi de la France. 3. Eulyes Amyot et Serville, 1843. Tête allongée, grêle; 2U article du rostre plus de trois fois plus long que le premier, celui-ci plus court que la partie préoculaire de la tête; abdomen fort dilaté sur le côté; pronotum et scutellum non ornés de tubercules; tibias antérieurs plus grêles à leur sommet. Eulyes amœna : pique l’homme (Bornéo et Java). 4. Prionotus Laporte, 1832. Lobe postérieur du thorax s’étendant longuement en arrière, de manière à recouvrir le scutellum et la base des hémélytres, et orné en son milieu d’une crête longitudinale; tête et prosternum chargés d’épines ou de tubercules; premier article du rostre plus long que la partie préoculaire de la tête; fémurs antérieurs inermes, peu renflés. Prionotus carinaius : pique l’homme (Brésil). 5. Conorhinus Laporte, 1832. Corps glabre; tête allongée, conique ou cylindrique, à partie pré- oculaire plus longue que la partie postoculaire; insertion des antennes distante des yeux; antennes deux fois plus longues que la tête; ocelles présents; thorax non ou à peine étranglé; scutellum inerme; pattes assez grêles; fémurs antérieurs non ou à peine plus gros que les postérieurs. Conorhinus sanguisugus : se nourrit du sang des mammifères (chevaux, etc.), des oiseaux (poules, etc.) et de l’homme (Amérique du Nord). Conorhinus rubrofasciatus : pique l’homme (Madagascar, Sierra Leone, Ceylan, Inde, Chine, Philippines, etc.); joue peut-être un rôle dans la propagation du Kala-azar dans l’Inde. Conorhinus renggeri : est la punaise des pampas; pique l’homme. Conorhinus variegatus : punaise de la Floride; il n’est pas cer- tain qu’elle pique l’homme. Conorhinus nigrovarius ■ pique l’homme dans l’Amérique du Sud. Conorhinus protractus : attaque peut-être l’homme (Utah). 6. Lamus Stal, 1859. Tête plus courte que le thorax, à partie préoculaire conique; article basilaire du rostre plus long que l’article apical; antennes insérées peu avant les yeux et plus de deux fois plus longues que la tête; ocelles présents; scutellum inerme; pattes assez grêles; fémurs antérieurs à peine plus robustes que les postérieurs, ornés d’épines. Lamus megistus : pique l’homme et les animaux (chat, etc.) au Brésil et leur transmet le Schizolrypanum cruzi. 7. Rhodnius Stal, 1859. Tête cylindrique, pas plus longue que le thorax; rostre grêle à second article trois à quatre fois plus long que les 1er et 3e; an- tennes à peine deux fois plus longues que la tête, à article basal court, inséré près de l’extrémité de la tête; ocelles présents; thorax non étranglé; pattes grêles; fémurs inermes. Rhodnius prolixus : attaque l’homme (Colombie, Venezuela, Cayenne). 8 Phonergates Stâl, 1853. Antennes courtes, à premier article plus court que la partie pré- oculaire de la tête; pattes courtes; tête dilatée en arrière des yeux; base du scutellum ornée d’un tubercule incliné en dehors. Des représentants de ce genre ont été signalés comme piquant l’homme (Afrique du Sud). 9. Rasahus Amyot et Serville, 1843. Tibias antérieurs légèrement et progressivement renflés à la base; abdomen jaunâtre ou marqué de jaune; hémélytres jaunes ou blan- châtres. Rasahus biguttatus : pique l’homme (Cuba, Panama, etc.). 10. Melanolestes Stàl, 1866. Tibias antérieurs renflés notablement et progressivement à partir du tiers apical; abdomen concolore; hémélytres noirs, non colorés. Melanolestes morio : pique l’homme (Guyane, Mexique). Melanolestes abdominalis : pique l’homme (Mexique, S. des Etats-Unis). S. NABIDÉS. Membrane présentant le plus souvent 4 nervures unies entre elles de manière à former 3 cellules; parfois les nervures moyennes font défaut; pattes grêles; pattes antérieures ravisseuses à fémurs renflés à la base; rostre légèrement coudé, à premier article court et épais; antennes flagelliformes; cellule de l’aile munie d’un hamus sur la nervure interne; nervures terminales rectilignes. Reduviolus Kirby, 1837 Corps noir, luisant; antennes, rostre, pattes et abdomen pâles; tête notablement et graduellement rétrécie en arrière des yeux. Reduviolus subcoleoptratus : suce le sang de l’homme (Etats-Unis). b. Homoptères. Deux paires d’ailes membraneuses; rostre inséré à la partie in- férieure de la tête. APHIDÉS. Antennes à 3-7 articles; rostre triarticulé; pattes longues; tarses presque toujours biarticulés, armés de deux griffes. Aphis Linné, 1758. Antennes longues, à 7 articles; 9e segment abdominal porteur à la face dorsale de deux appendices ou cornicules cylindriques. Aphis sp.? • est signalée comme attaquant les animaux domes- tiques à robe blanche (moutons, chevaux et bovidés) et déterminant une irritation de la peau avec chute des poils (Nouvelle-Galles du Sud). 4. SIPHONAPTÈRES. Hexapodes dépourvus d’ailes; antennes insérées en arrière des yeux, composées de 3 articles; segments thoraciques non fusionnés et arti- culés entre eux; abdomen à 9 segments; pattes robustes; mandibules disposées pour piquer. a. PULICIDÉS. Rostre plus ou moins fortement chitinisé, formé d’au moins 5 ar- ticles; tergites thoraciques réunis plus longs que le 1er tergite abdo- minal. a. Pulicinés. Rostre constitué par 5 articles ; souvent un peigne au bord pos- térieur du pronotum et parfois un autre peigne de chaque côté de la tête; jamais de peignes au métanotum ou aux segments abdo- minaux; le long du bord postérieur du tibia de la 3e paire de nom- breuses soies longues disposées en trois groupes ou en 7 à 8 paires. i. Pulex Linné, 1758. Pas de peignes; tête fort arrondie en avant et en dessous; yeux grands, distants du bord inférieur de la tête; palpes labiaux à 4 arti- cles; à la face in- terne des hanches postérieures une sé- rie de denticules; de part et d’autre du dernier article tarsal de la 3e paire 4 soies. Pulex irritons ■ puce de l’homme, peut passer sur le chien, le chat, le cheval, le lapin et même le poulet. Fig-. 264. — Pulcx irritans Q . (D’après Wolffhcegel.) 2. Xenopsylla Glinkewicz, 1907. Palpe labial à 4 segments ; massue de l’antenne indivise en avant; pleure du mésosternite subdivisé par une suture en sclérite sternal et méral; soie apicale dorsale du 7e tergite abdominal distante du bord du segment; courtes soies sur les hanches postérieures. Fig. 265. — Xenopsylla cheopis çf . (D’après Jordan et Rothschild.) Xenopsylla cheopis • puce du rat; peut piquer l’homme; est consi- déré comme un des principaux agents de transmission de la peste. Xenopsylla pallidus : a été trouvé sur l’homme (Brazzaville). 3. Ctenocephalus Kolenati, 1859. Un peigne de chaque côté au bord inférieur de la tête et au bord postérieur du pronotum; tête longue. Ctenocephalus canis : puce du chien, peut se rencontrer aussi chez le chat et chez l’homme; est peut-être l’agent de transmission de la leishmaniose canine. Ctenocephalus felis : puce du chat, peut passer aussi sur le chien, le- lapin domestique et l’homme. Ctenocephalus erinacei ■ puce du hérisson, peut pi- quer l’homme. 4. Spilopsyllus Baker, 1905. Tête courte ; un peigne disposé verticalement à la limite inféro-postérieure de la tête; un peigne au bord postérieur du pronotum. Spilopsyllus cuniculi : puce du lapin domestique. 5. Ceratophyllus Curtis, 1832. Un peigne au bord pos- térieur du pronotum; une épine chitineuse non loin de l’angle entre le front et le vertex; des épines chiti- neuses sur les tergites des 4-6 premiers segments abdominaux; 2 à 4 soies apicales chez la femelle. Ceratophyllus gal- linœ : sur la poule, le dindon. Ceratophyllus co- lumbœ : sur le pi- geon. Fig. z€6. — Ctenocephalus felis Ç . (D’après Wolffhubgel,) Fig. 267. — spiiopsyiius cwiicuii ç , (D’après w olffhuegel.) Fig. 268. — Ceratophyllus galltnce Ç . (D'après Wolffhuegei,. (3. Vermipsyllinés. Tête plutôt petite en comparaison avec le thorax; segments tho- raciques assez larges; article terminal des antennes annelé; yeux pro- éminents; mandibules notablement plus longues que les palpes maxil- laires; palpes labiaux portant plus de cinq faux articles. Vermipsylla Schimkewitsch, 1885. Article terminal de l’antenne portant neuf incisures annulaires; mandibules deux fois aussi longues que les palpes maxillaires; palpes labiaux ont 11-13 faux articles. Vermipsylla alacurt : sur la poule, le cheval, le chameau, le mouton, la chèvre et le bœuf. b. SARCOPSYLLIDES Rostre assez long, mais très mou, pâle, formé de 2 à 3 segments, y compris l’article basilaire; la région jugale de la tête pro- longée en arrière en pointe. 1. Dermatophilus Guérin, 1829. Rostre formé de deux seg- ments; tergites thoraciques ré- unis moins longs que la moitié du 1er tergite abdominal ; han- ches postérieures prolongées en une épine à leur extrémité distale, pas de soies à leur face interne; tibias avec 3 paires de soies dorsales; tarses grêles; quelques soies apicales des 2e, 3e et 4e articles des pattes postérieures très longues et minces ; 5e segment environ 8 fois aussi long que large; griffes faibles sans appendice basilaire; femelle sans stigmate aux 3 premiers tergites abdominaux. Dermatophilus pénétrons : chez la poule, le cheval, l’âne, le mulet, Ie porc, le bœuf, le mouton, la chèvre, le chien et le chat, ainsi que chez l’homme. Fig. 269 — Dcrmatuphilus pcnetrans : femelle fécondée. (D’après Wolffhuegel.) 2. Hectopsylla Frauenfeld, 1860. Rostre formé de trois segments; tergites abdominaux 2 à 8 munis d’un stigmate dans les deux sexes; hanches postérieures sans soies à la face interne; fémurs pos- térieurs prolongés ventralement en un crochet, en arrière du- quel le tibia est profondément excavé; quelques soies des tibias postérieurs et du tarse très lon- gues. Hectopsylla psittaci : sur le pigeon domestique. 3. Echidnophaga Olliff, 1886. Rostre formé de deux seg- ments; un stigmate sur les ter- gites abdominaux 2 à 8 dans les deux sexes; hanches posté- rieures armées à leur extrémité distale et en avant d’une large épine et portant des soies à leur face interne; fémurs postérieurs simples. Echidnophaga gallinacea : sur la poule, le dindon, le canard, le cheval, le bœuf, le chien et le chat; peut-être aussi sur l’enfant. Echidnophaga larina : a été rencontrée une fois sur le chien. Echidnophaga bradyia : sur le chat (Ethiopie). Fig. 270. — llectopsylla psittaci Ç . (D'après Wolff HUEGEL.) Fig. 271. — Echidnophaga gallinacea Ç . (D'après WOLFFHUEGEL.) 5. DIPTÈRES. Hexapodes munis de deux ailes membraneuses bien développées et de deux ailes rudimentaires (haltères); pièces buccales disposées pour piquer ou lécher; mésonotum formant la plus grande partie du thorax; métamorphoses complètes. 1. Orthorhaphes. Front de l’imago sans lunule; antennes composées d’articles plus ou moins nombreux; ailes le plus souvent à nervures nombreuses; palpe généralement multiarticulé; pièces buccales comprenant des mandibules et des maxilles; abdomen à 7-10 anneaux apparents; larve eucéphale ou acéphale. A. Némocères. Antennes à articles nombreux, au moins 6, semblables entre eux à l’exception du premier; palpe toujours visiblement multiarticulé; cellule anale de l’aile jamais fermée ni rétrécie vers le bord. a. PSYCHODIDÉS. Aile sans cellule discoïdale, sans nervure transversale; pas d’o- celles; antennes longues, à 16 articles; palpes à 4-5 articles; corps et ailes recouverts de poils longs et serrés. Phlébotominés. Psychodidés chez lesquels la 2e nervure longitudinale se subdi- vise en 2 ou 3 branches, qui prennent naissance à distance du point où cette nervure est unie à la 3e longitudinale; femelle dépourvue d’un ovipositeur corné; organes génitaux externes du mâle comprenant au moins trois paires d’appendices. Phlebotomus Rondani, 1840. Palpes à 4 articles, plus longs que la trompe; trompe allongée; lre nervure longitudinale simple, 2e doublement fourchue, 3e simple, 4e fourchue, 5e et 6e simples; nervures transversales rapprochées de la base de l’aile; cellules basales par conséquent très courtes. Phlebotomus papatasii : transmet à l’homme par ses piqûres la fièvre des Pappatac1 ou dengue (bassin de la Méditerranée). Phlebotomus du- boscqi : Soudan fran- çais. Phlebotomus ar- gentipes • pique l’hom- me (Inde). b. CULICIDÉS. Pièces buccales disposées pour piquer; tête ornée d’écailles de formes diverses; pas d’ocelles; thorax recouvert de soies ou d’écailles; métanotum généralement nu ; abdomen recouvert de soies ou d’écailles ou des deux ; membres et nervures des ailes toujours pourvus d’écailles de formes diverses; ailes présentant 6, exceptionnellement 7, nervures longitudinales; la nervure costale con- tournant entièrement le bord de l’aile; antennes de 14-15 articles, généralement plumeuses chez le mâle, pileuses chez la femelle; palpes de forme variable, composés de 1 à 6 articles. a. Anophélinés. Ailes à 6 nervures longitudinales; palpes longs dans les deux sexes, chez la femelle pas tout à fait aussi longs que la trompe; métanotum nu; première cellule submarginale aussi longue ou plus longue que la 2e cellule postérieure. Fig. 272. — Phlebotomus papatasii Ç . D’après Grassi.) Fig. 273. - - Position caractéris. tique de Anopheles 1 A) e*- Çulex [B) sur une paroi verticale. (D’après Water- house.) 1 Anopheles Meigen, 1818. Thorax et abdomen ornés d’écailles falciformes; écailles de la tête fourchues; écailles des ailes larges et lancéolées. Les espèces suivantes interviennent dans la propagation des fièvres mala- riques. Anopheles maculipennis : Europe, Algérie, Amérique du Nord. Anopheles bifurcatus ■ Europe. Anopheles (?) formosaensis : Japon. Anopheles (?) martini : Cambodge. Anopheles (?) pursati : Cambodge. Anopheles (?) vincenti : Tonkin. Anopheles (?) faranti : Nouvelles- Hébrides. Anopheles (?) ziemanni : Afrique. 2. Myzomyia Blanchard, 1902. Écailles du thorax et de l’abdomen falciformes; écailles de la tête four- chues; écailles des ailes petites, lon- gues et étroites ou faiblement lancé- olées. Les espèces suivantes interviennent dans la propagation du paludisme. Myzomyia funesta : Afrique. Myzomyia rossii : Indes et Iles Célèbes; transmet aussi la filariose. Myzomyia culicifacies : Indes. Myzomyia turkhudi : Indes. Myzomyia listoni : Indes. Fig. 274. — Schéma d’Anopheles. (D’après E. Sergent.) Fig. 275. — Schéma de Myzomyia. (D’aprè; E. Sergent. 3. Cycloleppteron Theobald, 1901. Écailles du thorax et de l’abdomen falciformes; écailles de la tête fourchues; ailes ornées de taches formées d’écailles larges. Cycloleppteron grabhami ■ Jamaïque. Cycloleppteron mediopunctatum : Brésil. 4. Pyretophorus R. Blanchard, 1902. Écailles du thorax étroites, incurvées; abdomen poilu; écailles petites et lancéolées. Les espèces suivantes transmettent le paludisme. Pyretophorus costalis : Afrique; trans- met aussi la filariose. Pyretophorus superpictus ; bassin de la Méditerranée, Indes; sert aussi d’hôte inter- médiaire à la Dirofilaria immitis du chien. Pyretophorus jeyporensis : Inde. Pyretophorus chaudoyei : trans- met peut-être le bouton d’Orient en Algérie. 5. Myzorhynchus R. Blanchard, 1902. Écailles du tho- rax falciformes; pas de touffes latérales à l’abdomen; touffe ventrale apicale net- te; palpes à écailles denses; écailles des ailes grandes, lancéolées, denses. Les espèces suivantes transmettent le paludisme. Myzorhynchus pseudopictus : Italie, Hongrie. Fig. 276. — Schéma de Cycloleppteron (D après E. Skrgent.) Fig. 277. — Schéma de Pyretophorus. (D’après E. Sergent.) Fig. 278. — Schéma de Myzorhyn- chus. (D’après E. Sergent.) Myzorhynchus sinensis : Extrême-Orient; transmet aussi la filariose. Myzorhynchus paludis : Afrique. Myzorhynchus barbirostris : Extrême- Orient; transmet aussi la filariose. Myzorhynchus coustani : Madagascar. 6. Nyssorhynchus R. Blanchard, 1902. Écailles thoraciques étroites, incurvées ou fuselées; écailles abdominales plates disposées en touffes latérales et en petits amas dorsaux. Les espèces suivantes transmettent le paludisme. Nyssorhynchus stephensi : Indes. Nyssorhynchus theobaldi : Indes. Nyssorhynchus fuliginosus : Indes. Nyssorhynchus maculipalpis : Indes. 7. Cellia Theobald, 1902. Abdomen presque complètement re- couvert de longues écailles irrégulières et orné de touffes latérales d’écailles. Les espèces suivantes transmettent le paludisme. Cellia argyrotarsis : Antilles, Brésil, Amérique du Nord; transmet aussi la fila- riose. Cellia pharoensis : Afrique. [B. Culicinés. Ailes à 6 nervures longitudinales; mé- tanotum nu; palpes longs chez le mâle, courts chez la femelle; première cellule submarginale aussi longue ou plus longue que la seconde cellule postérieure; trompe droite. Fig. 279. — Schéma de Nyssorhynchus. (D’après E. Sergent.) Fig. 280. — Schéma de Cellia. (D’après £. Sergent.) 1. Culex Linné, 1758. Écailles de la tête étroites et incurvées sur la nuque, fourchues et droites sur le sommet, plates sur le côté; écailles du thorax pili- formes ou fuselées sur le mésonotum, étroites incurvées ou fuselées sur le scutellutn; écailles de l’abdomen plates; écailles de l’aile linéaires ou légèrement lancéolées sur la nervure latérale; on- gles de la femelle égaux, simples ou unidentés, ceux du mâle inégaux aux deux premières paires, le plus grand étant uni- ou bidenté, le plus petit unidenté ou simple. Les espèces suivantes interviennent dans la transmission d’affections para- sitaires. Culex pipiens : transmet la filaire de Bancroft et les plasmodies parasites des oiseaux (Proteosoma danilewskyi). Culex fatigans : transmet la filariose et la dengue. Culex gelidus : transmet la filariose (F. bancrofti). Culex sitiens : transmet la filariose (F. bancrofti). Culex albolineatus : transmet peut- être aussi la filariose (F. bancrofti). 2. Stegomyia Theobald, 1901. Écailles de la tête larges, plates; écailles thoraciques étroites, recourbées ou fuselées sur le mésothorax, larges et aplaties sur le scutellum; écailles des ailes plus larges que chez Culex, serrées sur les portions apicales des nervures. Stegomyiafasciata (calopus) : agent de transmission de ia fièvre jaune. Fig. 281. — Schéma de Culex. (D’aprèsE. Ser- gent.) Fig 282 —Schéma de Stegomyia. D’après E. Sergent.) 3. Mansonia R. Blanchard, 1901 Écailles de la tête les unes étroites incurvées, les autres droites, longues et fourchues; thorax revêtu d’écailles piliformes et de nombreuses soies; écailles abdominales aplaties à extrémité convexe; écailles des ailes larges, plates, asymétriques, disposées de chaque côté des nervures seulement; abdomen de la femelle tronqué à son extrémité et le pénultième segment muni d’une rangée de courtes épines épaisses; pattes tachetées et annelées de blanc. Mansonia uniformis : Afrique, Asie et Océanie; transmet Filaria bancroffi, peut-être aussi le nagana et la maladie du sommeil. Mansonia annulipes : transmet Fi- laria bancrofti. 4. Tæniorhynchus Arribalzaga, 1891. Écailles de la tête les unes étroites incurvées, les autres droites et fourchues; écailles du thorax et du scutellum étroites et incurvées; écailles abdominales plates; écailles des ailes épaisses, coupées en diagonale ou suivant une ligne convexe, ou plus ou moins ob- tuses; écailles médianes linéaires des nervures souvent absentes; pattes gé- néralement tachetées; trompe annelée. Tæniorhynchus domesticus : trans- met Filaria bancrofti. Fig. 283. Mansonia : Schéma (D’après E. Sergent ) Fig. 284. — Schéma de Tœniorhynchus. {D’après E. Sergent.) c. TENDIPÉDIDÉS (CHIRONOMIDÉS). Insectes de petite taille; thorax fortement voûté; pattes générale- ment longues et grêles; ocelles absents; antennes composées de 6 à 15 articles, à poils longs formant plumet chez le mâle; trompe courte; palpes à 4 articles; nervures de l’aile sans écailles et plus marquées près du bord costal. Tendipédinés (Chironominés). Thorax prolongé au-dessus de la tête; antennes du mâle com- posées ordinairement de 10 à 14 articles, celles de la femelle de 7 articles; quatrième nervure longitudinale simple, non réunie à la cin- quième; nervure costale ne dépassant pas ou guère la troisième; pre- mière et troisième nervures simples, la cinquième bifurquée; une seule nervure transversale; abdomen composé de 8 segments. Chironomus Meiqen, 1803. Ailes normalement développées, nues ou couvertes d’une pilosité microscopique dressée; article antennaire terminal non grossi; palpes longs; mésonotum sans sillon longitudinal médian; métatarse antérieur aussi long ou plus long que le tibia; 4e article des tarses cylindri- que et plus long que le 5e; crochets tarsaux simples. Chironomus sp.? : larves ont été rencontrées comme parasites accidentels dans la mamelle d’une vache. Fig. 285. — Chironomus : aile. (D’après Kieffer.) p. Cératopogoninés Thorax non prolongé au-dessus de la tête; antennes de 14, rare- ment 13, articles dans les deux sexes, le dernier jamais plus long que les deux précédents réunis, les 5 derniers plus allongés ou autre- ment conformés que les précédents; quatrième nervure longitudinale bifurquée; pattes relativement robustes. 1. Tersesthes Townsend, 1893. Ailes jamais deux fois aussi longues que l’abdomen; antennes de la femelle à 13 articles; palpes à 3 articles; pas de nervure trans- versale ni entre la première et la deuxième, ni entre la troisième et la quatrième nervure longitudinale pattes inermes. Tersesthes torrens ' s’attaque principalement aux chevaux (Cuba, Mexique). Fig. 286. — Tersesthes iorrens : aile. (D'après Townsend.) 2. Mycterotypus Noe, 1905. Diffère du genre précédent par la présence d’une nervure trans- versale entre la première et la deuxième nervure; pattes couvertes de nombreuses spinules. Mycterotypus irritons : pique l’homme et les animaux domes- tiques (Italie). Mycterotypus bezzii : Italie. 3. Culicoides Latreille, 1809. Ailes jamais deux fois aussi longues que labdomen; antennes de la femelle à 14 articles; une nervure transver- sale entre la troisième et la quatrième ner- vure; surface alaire couverte d’une pilosité longue et appliquée; fémurs sans spinules; dernier article tarsal avec un empodium velu peu apparent, n’atteignant pas la moi- tié de la longueur des crochets, ceux-ci munis en dessous de leur base d’une longue soie; métatarse toujours plus long que le 2e article. Culicoicles pulicaris : importune l’homme par ses piqûres (Europe). Fig. 287. — Culicoides pulicaris Ç) D’après Kieffer.) Culicoides dufouri : pique l’homme (France, Autriche). Culicoides habereri : pique l’homme (Cameroun). Culicoides milnei : est signalé de l’Afrique Orientale, Uganda. Culicoides brucei : est renseigné comme suçant le sang en Uganda. Culicoides grahamii : est largement distribué dans l’Afrique tro- picale (Ashanti, Nigérie, Congo belge et Uganda); ses morsures sont particulièrement douloureuses. Culicoides varius : pique l’homme (Europe). 4. Œcacta Poey, 1851. Antennes à 15 articles dans les deux sexes; palpes à 5 articles; ocelles nuis; ailes larges, velues, couvertes de petites écailles, ciliées; Ie nervure épaissie à son extrémité et non reliée à la 3e par une nervure transversale, la 3e n’atteint pas tout à fait le bord; éperons des tibias nuis. Œcacta furens : pénètre dans les fosses nasales, les oreilles, de l’homme et des animaux domestiques; c’est un moucheron redoutable (Cuba). Œcacta hostilissima : pique sévè- rement l’homme (Guinée espagnole). 5. Johannseniella Williston, 1907. Troisième nervure longitudinale réu- nie à la première par une nervure trans- versale ou confondue avec elle au moins en partie, son extrémité dépas- sant le milieu de l’aile; quatrième nervure bifurquée; tous les fémurs inermes. — Ces moucherons importunent par leurs, piqûres. Johannseniella sordidella : est un véritable fléau pour l’homme sur la côte occidentale du Groenland. Fig. 288. — Œcacta furens. (D’après Poey, in Blanchard.) Fig. 289. — Johannsetiiella nitida aile. (D’après Kieffer.) 6. Hæmatomyidium Goeldi, 1905. Antennes à 14 articles; ailes à pilosité microscopique entremêlée de poils plus longs; nervure de l’aile analogue à celle de Culicoides', pattes peu longues; fémurs non renflés, inermes; métatarse postérieur deux fois aussi long que le 2e article. Hæmatomyidium paraense : commun dans les maisons de Para (Brésil); piqûres douloureuses et suivies d’une inflammation. d. MÉLUSINIDÉS (SIMULIIDÉS). Tête petite; thorax voûté; pattes robustes; ocelles absents; an- tennes à 10 articles; trompe courte; palpes longs, à 4 articles; ailes longitudinales grandes, à première et deuxième nervures très marquées, les autres minces; 32 et 4e nervures longitudinales fourchues, la 5e simple. Melusina Meigf.n, 1800 (Simulium Latreille, 1802). Deuxième article tarsien postérieur, dans les deux sexes, allongé, linéaire, entier, sans échancrure basilaire; cases pupales agrégées, im- parfaites; très nombreux filaments nymphaux (Prosimulium Roubaud, 1906); ou deuxième article tarsien court, arqué, échancré dorsalement à sa base dans les deux sexes; cases pupales solitaires, parfaites; filaments nymphaux en général peu nombreux (Eusimulium Roubaud, 1906). Melusina (Prosimulium) columbac- zensis : attaque l’homme, les chevaux, les bovidés, les moutons, les porcs, les chèvres, etc. (Serbie, Bulgarie, Hongrie, Autriche, Allemagne). Melusina (Prosimulium) cinerea ■ importune l’homme et les animaux do- mestiques (Europe). Melusina (Prosimulium) maculata : se jette sur l’homme et les animaux do- mestiques (bœufs, chevaux, ânes, mulets, chèvres, moutons). Melusina {Eusimulium) indica : cause des piqûres très irritantes (Assam). Melusina (Eusimulium) damnosa : détermine des piqûres très dou- loureuses à l’homme et aux animaux (Uganda). Melusina {.Eusimulium) griseicollis : pique l’homme (Dongola). Fig. 290. — Melusina maculata. D’après Gruenberg.) Fig. 291. — Aile de Melvsina, D’après Grubnberg.) Melusina (Eusimulium) venusta : s’attaque à l’homme, aux che- vaux, aux chiens, etc. (Brésil). Melusina (Eusimulium) albimana : importune surtout les chevaux, moins souvent l’homme (Brésil). Melusina (Eusimulium) rubrithorax : pique l’homme et les che- vaux (Brésil). Melusina (Eusimulium) montana : s’attaque à l’homme (Brésil). Melusina £ (Eusimulium) quadrivittata : pique l’homme (Amérique centrale). Melusina (Eusimulium) wellmanni : cause des piqûres douloureuses et très redoutées des indigènes (Angola). Melusina (Eusimulium) buissoni : espèce re- doutée des voyageurs aux lies Marquises; l’hypo- thèse a été émise qu’elle contribue à propager la lèpre. Melusina scutistriata : pique l’homme et les chevaux (Brésil). Melusina pernigra : attaque les chevaux au niveau du ventre (Brésil). Melusina pertinax : attaque vivement l’homme et le chien (Brésil). Melusina perflava, Melusina orbitalis, Melusina paraguayensis, Me- lusina infuscata : toutes espèces qui se jettent sur les chevaux (Brésil). Melusina subnigra : pique les chevaux, moins souvent l’homme (Brésil). Melusina distincta : pique les chevaux principalement au niveau de la crinière (Brésil). Melusina auristriata : attaque les chevaux, plus rarement l’homme (Brésil). Melusina subpallida '• se jette sur les chevaux (Brésil). Melusina flavopubescens : attaque l’homme et les chevaux (Brésil). Melusina pruinosa : recherche surtout les chevaux (Brésil). Melusina simplicicolor : pique l’homme (Brésil). Melusina minuscula : importune par ses piqûres l’homme et les chevaux (Brésil). Melusina meridionalis : tourmente par ses piqûres les poules et les dindons (Etats-Unis). Fig. 292. — Pupe de Me lusina. (D’après Mei- NERT.) e. BLÉPHAROCÉRIDÉS üipteres non poilus, à longues pattes et larges ailes; aile sans cellule discoïdale, mais à lobe anal particulièrement grand et angu- leux; nervation secondaire; yeux le plus souvent divisés par une bande non facet- tée en deux parties différemment facettées ; ocelles présents ; antennes grêles à 9-15 articles couverts d’une courte pubescence. Curupira F. Müller, 1882. Pas de nervure incomplète près du bord postérieur de l’aile; yeux non par- tagés par une bande transversale non fa- cettée; une nervure longitudinale entre la première et la quatrième nervure; yeux contigus; tibias munis d’éperons à leur extrémité. Curupira torrentium : a été signalé comme étant capable de sucer le sang des mammifères (Brésil). Fig. 290. — Tête de Blépharocéridé (D’après Kellogg.; Fig. 294. — Curupira torrentium : aile. (D’après Mueller.) B. Brachycères. Antennes à trois articles, le 3e étant parfois annelé; palpes à 1 ou 2 articles, rarement 3, le terminal étant grand, le basal petit; 2e nervure longitudinale simple, 3e souvent fourchue; cellule anale fermée ou rétrécie. 1. Brachycères homœodactyles. Adultes pourvus de trois pulvilles semblables; larves à stigmates postérieurs terminaux. a. TABANIDÉS. Tête grande et large; article terminal de l’antenne annelé, sans style; ocelles présents ou absents; trompe de longueur variable; palpes à 2 articles, le 2d article grand; scutellum et thorax jamais épineux; abdomen à 7 segments; pattes vigoureuses; ailes grandes; 3e nervure longitudinale fourchue; quatrième nervure à 3 branches; cellule discoï- dale formée par la quatrième nervure. Insectes suceurs de sang. Pangoninés. Tibias postérieurs avec deux épines à leur extrémité distale. 1. Chrysops Meigen, 1803 Trompe courte, jamais plus longue que la tête; antennes plus longues que la tête, sans saillie, le 1er article presque égal au 2d; article terminal à 5 sub- divisions; ailes marquées de taches ou de bandes sombres. Chrysops cœcutiens : pique l’homme et les ani- maux domestiques. Chrysops distindi- pennis ■ pique l’homme et les chevaux. Chrysops dimidiata : pique l’homme et les ani- maux domestiques. Chrysops silacea pique l’homme et les ani- maux domestiques. Chrysops stigmatica- lis : attaque les chevaux. Chrysops vittatus : attaque les chevaux surtout aux oreilles. i’ig. 29$. — Chrysops stigmaticalis. (D'après Gruenuerg. 2. Rhinomyza Wiedemann, 1820. Premier et second articles antennaires courts par rapport au troi- sième, celui-ci formé de 5 subdivisions et portant une grande saillie dentiforme; deuxième article beaucoup plus petit que le premier; second segment abdominal subégal aux segments voisins; éperons des tibias postérieurs normalement développés; yeux glabres; face concave au milieu (vue de profil); ailes à cellules marginales ouvertes. Rhinomyzci denticornis : pique l’homme. 3. Pangonia Latreille, 1802. Trompe allongée, toujours plus longue que la tête; antenne courte et simple, à article terminal formé de 8 subdivisions; palpes faible- ment développés, petits. 296 — Pcingonia f ’Ciricolor, (D'après Grüenberg.) Pangonia zonata : attaque les équidés, les bovidés et les chameaux Pangotiia angulata • pique les animaux domestiques. Pangonia rostrata : pique les animaux domestiques. Pangonia lateralis ■ pique les animaux domestiques. Pangonia gulosa : pique les animaux domestiques. Pangonia beckeri : pique l’homme et les animaux (chameaux, équidés et bovidés). Pangonia rüppellii : attaque les chevaux. Pangonia magrettii : pique le bétail, les chameaux; est réputée propager une maladie des dromadaires au Soudan. Pangonia distincta : pique les équidés et les chameaux. Pangonia neo-caledonica : attaque les bœufs. P. Tabaninés. Tibias postérieurs sans épines à leur base. 1. Tabanus Linné, 1761. Tête pas plus large que le thorax, plus large que haute; 3e ar- ticle antennaire dilaté près de sa base et formant une saillie en forme de dent, plus ou moins accentuée; 1er article toujours court; ailes hyalines ou pré- sentant de larges ban- des ou taches sombres ou uniformément som- bres; 3e nervure lon- gitudinale sans ra- meau récurrent. Tabanus autum- nalis : se jette sur les chevaux et les bœufs. Tabanus obscu- rissimus : suce le sang de l’homme et des ani- maux. Fig. 297. — Tabanus lungitudinalis D’après Gruenberg.) Tabanus thoracinus : attaque l’homme et le bétail. Tabanus par : pique le bétail. Tabanus fasciatus : attaque l’homme et le bétail. Tabanus africanus •' pique l’homme, le bétail, les chameaux. Tabanus biguttatus : se jette sur l’homme et les animaux domes- tiques ; peut transmettre le Surra aux dromadaires (Mbori) et aux chevaux (mal de la Zousfana), la Souma aux équidés et aux bovidés, et la maladie du sommeil à l’homme. Tabanus pluto : pique l’homme et a été observé sur le cheval; peut transmettre la maladie du sommeil à l’homme. Tabanus ruficrus : attaque l’homme et probablement aussi les animaux domestiques. Tabanus quadriguttatus : pique le bétail et probablement aussi l’homme. Tabanus secedens : attaque l’homme et le bétail; a été signalé comme un agent de transmission possible de Trypanosoma pecorum. Tabanus kingsleyi : pique l’homme. Tabanus socialis : pique l’homme. Tabanus tœniola : attaque l’homme et les animaux domestiques; peut transmettre la maladie du sommeil. Tabanus variatus : attaque l’homme. Tabanus ustus : pique le bétail. Tabanus canus : détermine des piqûres très douloureuses chez l’homme. Tabanus gratus : attaque l’homme, le chien et le bétail. Tabanus morsitans : est accusé de transmettre une maladie mor- telle aux équidés et aux chameaux. Tabanus ditœniatus : pique l’homme, les équidés, le bétail et les dromadaires; peut transmettre le Surra aux dromadaires (Mbori) et aux chevaux (mal de la Zousfana), la Souma aux bovidés et aux équidés et la maladie du sommeil à l’homme. Tabanus tomentosus : peut transmettre le Trypanosoma equiper- dum aux équidés et le trypanosome du Debab (Surra algérien) aux dromadaires. Tabanus nemoralis : peut transmettre les trypanosomes du Debab, du Nagana et du mal de la Zousfana. Tabanus unilineatus ■ peut transmettre la maladie du sommeil à l’homme. Tabanus nigritus : transmet le Debab aux dromadaires. Tabanus tropicus : est considéré comme propageant le Surra (Inde). Tabanus lineola : est considéré comme un des agents de dissé- mination du Surra indien. Tabanus camelarius : pique les chameaux. Tabanus mordax et Tabanus leucostomus : leur morsure est réputée fatale pour les chameaux. Tabanus atratus : attaque plutôt le bétail que les chevaux. Tabanus costalis : pique les animaux domestiques. Tabanus molestus : pique l’homme et le bétail. Tabanus bovinus : attaque le bétail. 2. Hæmatopota Meigen, 1803 Tête nettement plus large que le thorax, deux fois aussi large que haute; article terminal de l’antenne sans saillie basale; 1er article parfois allongé et fortement renflé; aile le plus souvent sombre avec anneaux et taches blan- châtres; 3enervure longitudi- nale avec rameau récurrent. Hœmatopota pluvialis : importune l’homme et les animaux domestiques (équi- dés et bovidés). Hœmatopota nigricor- nis ' pique l’homme et les animaux domestiques. Hœmatopota densha- mii : attaque l’homme et le bétail. Hœmatopota pallidipennis : pique l’homme. Fig. 298. — Hœmatopota obscura. (D’après üruenberg.) Hœmatopota mactans : pique les équidés et le bétail. Hœmatopota torquens ■ attaque l’homme. Hœmatopota lacessens : pique l’homme et le cheval. Hœmatopota copemanii : pique l’homme. Hœmatopota pertinens : pique l’homme. Hœmatopota noxialis : attaque gravement le bétail. Hœmatopota taciturna : est incriminée comme la cause d’une affection pulmonaire des moutons et des chèvres (Nil Bleu). 3. Hippocentrum Austen, 1908. Tête (du moins chez la femelle) entièrement ou pour la plus grande partie brillante; antennes extrêmement grêles, à premier article allongé; article terminal des palpes chez la femelle très grand et brillant sur sa face externe, qui est convexe, tandis que sa face interne est aplatie; ailes, bien que plus ou moins obscures et macu- lées de blanc, sans les dessins caractéristiques du genre Hœmatopota-, yeux comme dans ce dernier genre. Hippocentrum versicolor : importune surtout les chevaux; pique aussi l’homme. Hippocentrum trimaculatum : attaque l’homme. b. RHAGIONIDÉS (LEPTIDIDÉS). Tête petite, hémisphérique; corps grêle; ocelles présents; 3U ar- ticle antennaire court, conique ou arrondi, non annelé, muni d’une soie; trompe courte et épaisse, rarement longue et mince; palpe à deux articles; abdomen à 7 anneaux; pattes grêles; trois, exception- nellement deux pulvilles; ailes grandes, larges, souvent à dessins sombres; 3e nervure longitudinale fourchue; 4e nervure longitudinale aboutissant par 3 rameaux au bord de l’aile; cellule discoïdale formée par la 4U nervure longitudinale seulement. 1. Rhagio Fabricius, 1775. Antennes à 3e article conique ou ellipsoïdal et à soie terminale; rameau postérieur de la 3e nervure longitudinale et rameau antérieur de la 4e nervure longitudinale séparés au bord de l’aile; tibias pos- térieurs munis de deux éperons terminaux. Rhagio scolopaceus et Rhagio strigosus : ont été signalés comme suçant le sang de l’homme. 2. Symphoromyia Frauenfeld, 1867. Antennes à 3e article plus ou moins réniforme et à soie dorsale; nervation de l’aile comme chez Rhagio-, tibias postérieurs munis d’un éperon terminal. Symphoromyia sp. : a été signalée comme causant des piqûres très douloureuses chez l’homme (Californie). 2. Brachycères hétérodactyles. Imago muni de deux ou trois pulvilles, dans ce dernier cas la médiane différente des deux latérales, ou parfois totalement dépourvu de pulvilles; stigmates postérieurs chez la larve situés en avant de l’extrémité postérieure du corps. ASILIDÉS. Tête large, discoïde; front profondément excavé entre les yeux; ocelles présents; 3e article antennaire simple, le plus souvent muni d’une soie terminale; trompe allongée, puissante, aiguë; palpes à 1 ou 2 articles; thorax fort bombé, rétréci en avant; abdomen à 8 an- neaux; pattes longues et solides, avec 2 ou parfois sans pulvilles; ailes grandes; 3e nervure longitudinale fourchue; 4e nervure longitu- dinale délimitant la cellule discoïdale et aboutissant au bord de l’aile par 3 rameaux. Asilus Linné, 1758. Antennes à 3e article effilé et surmonté d’une soie nue à 2 ar ticles. Asilus crabroniformis '■ est accusé de s’attaquer à l’homme et aux grands animaux pour sucer leur sang. 2. Cyclorhaphes. Front de l’imago portant une lunule, au-dessus de laquelle existe une suture en fer-à-cheval à branches dirigées en arrière, par où fait hernie l’ampoule frontale; larves acéphales, avec ou sans armature œsophagienne; pupe en tonnelet s’ouvrant suivant une ligne préformée à l’extrémité antérieure; antennes toujours à 3 articles; le 3e article toujours muni de soies; palpes toujours formés d’un seul article; man- dibules absentes; maxilles rudimentaires; cellule discoïdale formée par les 4e et 5e nervures longitudinales; abdomen comprenant au maximum six anneaux visibles, le plus souvent moins. A. Aschiziens. Lunule toujours très apparente ; suture frontale courte, hémicir- culaire, parfois indistincte; ampoule frontale le plus souvent rudimen- taire ; macrochètes absents. a. SYRPHIDÉS. Ocelles présents; article antennaire terminal muni de soies ou d’un style; thorax fortement voûté; abdomen à 5-6 segments, rarement 7 ou 4; une nervure longitudinale supplémentaire {venia spuria) entre la troisième et la quatrième; cellule anale grande abou- tissant parfois au bord de l’aile; cellule discoïdale toujours présente; corps nu et souvent à reflets mé- talliques, ou couvert d’une pilosité à coloration vive. 1. Eristalis Latreille, 1804. Yeux pubescents; article terminal de l’antenne ovale, discoïde; ailes hyalines; cellule marginale fermée. Eristalis arbustorum : les larves de cette espèce ont été observées dans un cas de myiase intestinale chez l’homme. Fig. 299. — Aile de Syrphidé (Eristalis arbustorum',. (D’après Gruenberg.) Fig. 3oo. — Eristalis ar- bustorum : tête. (D’après Gruenberg.) Eristalis dimidiatus : larves ont été observées dans certains cas de myiase intestinale chez l’homme. 2. Tubifera Meigen, 1800. Yeux nus; article terminal de l’antenne court, discoïde arrondi ; cellule marginale ouver- te; fémurs postérieurs fortement épaissis. Tubifera pendula : les larves ont provoqué certains cas de myiase intestinale chez l’homme. Fig. 3oi. — Tubifera pendula tête. (D’après Gruenberg.) b. PHORIDÉS. Tête petite à front large dans les deux sexes et orné de trois à quatre rangées transversales de soies; face très courte, concave; palpes bien développés et généralement ornés de soies puissantes; yeux jamais grands, souvent fort réduits dans les formes aptères; ocelles toujours présents dans les formes ailées; troisième article de l’antenne de grande taille, cachant les autres, sphéroïde ou pointu et muni d’un style long; thorax grand et voûté; scutellum rarement absent; abdomen court, plus ou moins grêle et rétréci en arrière chez le mâle, ovalaire et acuminé postérieurement chez la femelle; pattes bien développées; ailes généralement grandes, parfois très petites ou tout à fait absentes chez la femelle; deux nervures longitudinales épaisses ne s’étendant pas au-delà du milieu de la longueur de l’aile et trois ou quatre nervures beaucoup plus délicates à direction oblique. Aphiochæta Brues, 1904. Ailes bien développées; la troisième nervure longitudinale fourchue vers son extrémité; nervure costale chargée de soies; quatre rangées de soies frontales; soies frontales antérieures en antéversion; tibias dé- pourvus de soies préapicales; ocelles situés sur un tubercule. Aphiochœta ferruginea : les larves de cette espèce ingérées peu- vent continuer à se développer dans l’intestin de l’homme. Aphiochœta rufipes : les larves ont été vues dans les matières vomies par un jeune homme atteint de troubles digestifs sérieux. Fig. 002. — Aphiochœta rati- fies : aile. (D’après Brues.) B. Schizophores. Lunule parfois absente; suture frontale toujours distincte et en fer-à-cheval; ampoule frontale en général bien développée; antennes toujours insérées dans des fossettes séparées; aile sans vena spuria; corps toujours orné de macrochètes. a. EUMYIDÉS. Adultes vivant librement; tête libre, mobile, disposée perpendi- culairement à l’axe du corps; cellule anale petite; cellule discoïdale parfois fusionnée avec la cellule basale postérieure, parfois absente ; abdomen le plus souvent à 4 segments; larves claviformes ou cylin- driques, le plus souvent munies de crochets buccaux, amphi- ou mé- tapneustiques; stigmates postérieurs séparés disposés sur deux plaques chitineuses, parfois prolongés en tubes, et constitués chez les larves au 3e stade par 3 fentes séparées, formant parfois une ligne d’ap- parence continue. a. Schizométopes. Front large chez la femelle, étroit chez le mâle, les yeux étant parfois contigus; lunule toujours distincte; cuillerons le plus souvent bien développés. 1. MUSCIDÉS. Quatrième nervure longitudinale (médiane) plus ou moins parallèle à la troisième, ou incurvée vers l’extrémité de la 3e nervure longi- tudinale; sous-costale distincte de la lre nervure longitudinale; cuil- lerons bien développés. a. Gastrophilinés. Pièces buccales rudimentaires; style de l’antenne toujours nu; 4e nervure longitudinale aboutissant au bord de l’aile sans contracter d’union ni avec la costale ni avec la cinquième longitudinale; larves avec une ou deux paires de crochets ehitineux incurvés et entre eux deux pièces triangulaires droites ; corps conique, atténué en avant, tronqué en arrière; cavité stigmatique fermée au moyen de lèvres; stigmates postérieurs constitués par trois arcades; antennes surmontées de deux petits points ocelliformes et largement séparées à leur base; bourrelets intermédiaires dorsaux absents. Parasites dans le tube digestif des équidés. Gastrophilus Leach, 1817. Face pourvue d’un sillon médian; nervure transversale terminale absente; cuillerons petits recouvrant à peine les balanciers; ocelles présents. — Larve avec deux paires de crochets chitineux; champs intermédiaires latéraux absents; lèvres de la cavité stigmatique postérieure dépour- vues de tubercules; arcades incurvées concentrique- ment. Parasites dans le tube digestif des équidés. Gastrophilus equi : parasite du cheval, de l’âne et du mulet, aussi chez le chien. Gastrophilus inermis : parasite du cheval. Gastrophilus pecorum ■ parasite du cheval. Gastrophilus flavipes : parasite de l’âne. Gastrophilus hœmorrhoidalis : parasite du cheval; a été observé aussi chez l’homme. Gastrophilus nasalis : parasite du cheval; une larve attribuée vraisemblablement à cette espèce a été observée chez une fillette. Fig. oo3. — Gastrephi- lus : larve. (D’après Brauer.) b. Muscidinés. Antennes à 3 articles, le 3e orné d’un style dorsal; trompe tou- jours présente; la 4e nervure longitudinale se coude ou s’incurve vers son extrémité pour se terminer au même point ou à une courte dis- tance de la 3e longitudinale, formant ainsi une nervure transversale terminale; tarses munis de pelotes; abdomen composé de 4 à 7 anneaux visibles. 1. Stomoxinés. Trompe disposée pour piquer. 1. Glossina Wiedemann, 1830. Antennes munies d’une soie ornée de nombreux poils penni- formes; 3 soies sternopleurales; palpes longs et accolés à la trompe; lre et 2e nervures longitudinales de l’aile nues à leur base; cellule basale anté- rieure fort élargie du côté distal; cel- lule discoïdale rétrécie à sa base; 4e nervure longitudinale se coudant im- médiatement après la nervure trans- versale postérieure et semblant con- tinuer celle-ci; lre cellule postérieure s’ouvrant par une étroite ouverture à distance de l’extrémité de l’aile. Glossina palpalis : transmet la maladie du sommeil et les Trypano- soma vivax, dimorphon, angolense, et pecaudi. Fig. ,'04. — Glossina palpalis : au repos. (D’après Doflein.) Fig. co5. — Glossina palpaiis : ailes étendues. (D’après Doflein.) Glossina brevipalpis : transmet le Nagana et probablement aussi la maladie du sommeil. Glossina longipalpis : transmet le Nagana. Glossina pallidipes : transmet le Nagana. Glossina morsitans : transmet le Nagana et peut-être la maladie du sommeil. Glossina longipennis : transmet le Nagana et en particulier l’Aïno des chameaux et des mulets somalis. Glossina tachinoides : transmet le Nagana. Glossina caliginea, Gl. nigrofusca, Gl. tabaniformis et Gl. fusca : sont signalées comme piquant l’homme. Glossina pallicera •• a été observée piquant le cheval. 2. Stomoxys Geoffroy, 1762. Palpes grêles, filiformes, mesurant à peine la moitié de la longueur de la trompe ; celle-ci acuminée à son extré- mité; soie de l’antenne plumeuse en dessus seulement; première cellule postérieure lar- gement ouverte ; 3e nervure longitudinale munie de soies à sa base. Stomoxys calci- trans : est un agent de transmission du Surra; pique le bétail, le chien, le mulet, et autres animaux domestiques; est l’hôte intermédiaire de la Setaria labiato-papillosa du bœuf. Stomoxys nigra : transmet le Surra ; pique les chevaux et les autres animaux domestiques. Stomoxys bouffardi : transmet par ses piqûres le Trypanosoma angolense (Souma). Fig. 006. — Stomoxys calcitrans. (D’après Gruenberg.) 3 Stygeromyia Austen, 1907. Palpes aussi longs que la trompe; celle-ci assez épaisse, terminée par des labelles charnus; soie de l’antenne plumeuse en dessus; 3e nervure longitudinale soyeuse à sa base; lre cellule postérieure étroi- tement ouverte. Stygeromyia maculosa : Arabie. Stygeromyia sanguinaria : Congo belge; pique l’homme. 4. Lyperosia Rondani, 1856. Soie de l’antenne plumeuse en dessus seulement; palpes aussi longs que la trompe; 3° nervure longitudinale nue; 4e nervure lon- gitudinale faiblement coudée; lre cellule postérieure largement ouverte à l’extrémité de l’aile. Lyperosia irritons : attaque le bétail surtout, ainsi que l’homme. Lyperosia exigua : est un agent de transmission du Surra. Lyperosia flavohirta : pique le bétail. Lyperosia punctigera : importune l’homme (Uganda). 5. Hæmatobia Robineau-Desvoidy, 1830. Soie de l’antenne moins plumeuse en dessus qu’en dessous; palpes aussi longs que la trompe; lre et 3e nervures longitudinales ornées de quelques petites soies à leur base; portion apicale de la 4e ner- vure longitudinale plus fortement coudée que chez Stomoxys; lre cel- lule postérieure largement ouverte. Hæmatobia stimulons : pique l’homme et les animaux domestiques. Hæmatobia sanguisugens : attaque le bétail. 6. Hæmatobosca Bezzi, 1907. Palpes aussi longs que la trompe; soie moins plumeuse en dessus qu’en dessous; 4e nervure longitudinale fortement coudée; lre cellule postérieure étroitement ouverte un peu avant l’extrémité de l’aile. Hæmatobosca atripalpis : Europe méridionale. Hæmatobosca perburbans : Chine, environs de Pékin. 7. Bdellolarynx Austen, 1909. Soie de l’antenne plus plumeuse en dessous qu’en dessus; lre et 3e nervures longitudinales nues à leur base; portion apicale de la 4e nervure longitudinale moins coudée que dans Hœmatobia; lre cellule postérieure largement ouverte. Bdellolarynx sanguinolentus : Inde. p. Muscinés. Trompe charnue disposée pour lécher et non pour piquer la peau. 1. Musca Linné, 1758. Yeux glabres, presque contigus chez le mâle; tibias médians dé- pourvus de soies sur le côté interne; téguments de coloration géné- rale noire avec dessins clairs; soie de l’antenne plumeuse; 4e nervure longitudinale coudée presque à angle droit; lre cellule postérieure ouverte. Musca domestica : importune l’homme et les animaux; on lui attribue des cas de myiase oculaire en Égypte chez les enfants atteints de trachome; elle peut donner lieu aussi à des cas de myiase in- testinale. Musca corvina et M. nigra : les larves peuvent se développer dans l’intestin de l’homme et donner lieu à des cas de myiase intestinale. Musca pattoni : lèche le sang qui s’écoule des morsures faites au bétail par des diptères piqueurs. 2. Philæmatomyia Austen, 1909. Trompe à portion proximale sous forme d’un bulbe chitineux épais, et à portion distale charnue composée d’une partie tubulaire extensible portant à son extrémité un cercle de denticules chitineuses épaisses; nervures de l’aile comme Musca. Philœmatomyia insigtiis : pique l’homme, le bœuf, le cheval et l’âne. 3. Pristirhynchomyia Brunetti, 1910. Trompe rappelant celle de Philœmatomyia, sauf que c’est la por- tion proximale qui est charnue et extensible, tandis que la portion distale est chitineuse et rigide; celle-ci est terminée par un bouton charnu portant l’orifice buccal entouré de denticules chitineuses; les autres caractères sont ceux de Philæmatomyia. Pristirhynchomyia lineata : suce le sang qui s’écoule de piqûres ou d’ulcères chez le bétail. 4. Hydrotæa Robineau-Desvoidy, 1830. Soie de l’antenne non plumeuse; yeux glabres, presque contigus chez le mâle; cuillerons assez bien développés; abdomen du mâle formé de quatre anneaux visibles; un point blanc au-dessus de l’in- sertion des antennes. Hydrotœa meteorica : commune sur le bétail dont elle suce les humeurs. 5. Fannia Robineau-Desvoidy, 1830 Soie des antennes non plumeuse; yeux glabres, presque contigus chez le mâle; cuillerons très peu développés; abdomen du mâle formé de cinq anneaux vi- sibles; pas de point blanc au-dessus de l’in- sertion des antennes. Les larves peuvent se développer dans le tube digestif de l’homme et donner lieu à des accidents de myiase intestinale. On a observé dans ces conditions les espèces suivantes : Fannia canicularis : on l’a signalée aussi dans des cas de myiase vésicale. Fannia incisurata. Fannia manicata. Fannia saltatrix. Fannia scataris. Fannia desjardensii ■ a été observée en Angola, où la myiase est désignée sous le nom de « Ovœnyo ». Fig. 3 7. — Fannia canicularis larve. (D’après Chevrel.) 6. Muscina Robineau-Desvoidy, 1830. Yeux glabres; trompe épaisse; lre cellule postérieure largement ouverte; 4U nervure longitudinale progressivement incurvée vers l’extré- mité de la 3e nervure longitudinale. Muscina stabulans : les larves peuve t vivre dans le tube digestif de l’homme et donner lieu à des accidents de myiase intestinale. c. Cœnosiinés. Cinquième segment abdominal du mâle profondément échancré à son bord postérieur, l’échancrure s’étendant au-delà de la moitié de la longueur du segment; quatrième nervure longitudinale droite; ab- domen en général cylindrique; soies sternopleurales présentes. Anthomyia Meigen, 1803. Tête plus ou moins anguleuse; front le plus souvent un peu proéminent; yeux modérément grands; abdomen allongé ou ovalaire, à pubescence toujours nette et souvent serrée; soie de l’antenne nue ou tout au plus pubescente. Anthomyia pluvialis : les larves ont été rencontrées dans des plaies cutanées de l’homme. 2. LARVÉVORIDÉS. Quatrième nervure longitudinale incurvée vers l’extrémité de la 3e nervure longitudinale, de manière à former un angle presque droit; cuillerons bien développés. a. Sarcophaginés. Yeux glabres; soie de l’antenne plumeuse ou pubescente à la base seulement ou entièrement glabre; abdomen concolore, parfois à reflets métalliques ou gris soyeux, à dessins parfois très réguliers. 1 Sarcophaga Meigen, 1826. Soie de l’antenne plumeuse, sauf dans son quart terminal où elle est glabre; abdomen gris à reflets chatoyants et à dessins formant damier; lre cellule postérieure ouverte ou fermée et dans ce cas courtement pédicellée; nervure transversale postérieure non disposée plus obliquement que la nervure transversale terminale. Sarcophaga carnaria : la femelle pond parfois ses larves sur des plaies ou dans les cavités naturelles de l’homme. Sarcophaga ruficornis : a été signalée comme déterminant des cas de myiase cutanée (Inde). Sarcophaga chrysostoma : les larves ont été rencontrées dans un ulcère du pied chez une jeune fille (Guyane anglaise). Sarcophaga plinthopyga : les larves se rencontrent aussi dans des ulcères chez l’homme (Rép. Dominicaine). Sarcophaga lambens : les larves ont été observées dans un cas de myiase sous-cutanée chez l’homme (Brésil). Sarcophaga affinis, S. hœmorrhoidalis et 5. hœmaiodes : les larves de ces espèces ont été observées dans le tube digestif, estomac et intestin, chez l’homme. 2. Sarcophila Rondani, 1856. Soie de l’antenne courtement plumeuse; 3e article de l’antenne dépassant deux fois la longueur du 2U article; front large dans les deux sexes; abdomen blanchâtre ou gris, à dessins plus ou moins nets, mais sans reflets chatoyants. Sarcophila latifrons : provoque chez l’homme certains cas de myiase cavitaire (oreille). Sarcophila meigeni et 5. ruralis : les larves ont été rencontrées dans des ulcères chez l’homme (Allemagne, Autriche-Hongrie, France). 3. Wohlfahrtia Brauer et Bergenstamm, 1889. Soie de l’antenne pubescente; 3e article de l’antenne plus ou moins deux fois aussi long que le 2e article; front large dans les deux sexes; abdomen blanchâtre ou gris à dessins plus ou moins nets, mais sans reflets chatoyants. Wohlfahrtia magnifica : dépose ses larves dans les plaies ou les cavités naturelles de l’homme et des animaux (bovidés, porcs, moutons, chiens, oiseaux domestiques, en particulier oies). b. Calliphorinés. Soie de l’antenne en général longuement plu- meuse; coloration du corps très souvent métallique. 1. Cynomyia Robineau-Desvoidy, 1830. Abdomen à reflets métalliques; 4e nervure lon- gitudinale s’incurvant à angle droit tout près du bord de l’aile; nervure transversale terminale con- cave. Cynomyia mortuorum : les larves sont considé- rées comme pouvant infecter les ulcères chez l’homme. Fig. 3o8. — Wohlfahrtia magnifica : larve. (D’après Brumpt.) 2. Lucilia Robineau-Desvoidy, 1830. Yeux glabres; lre cellule marginale postérieure s’ouvrant en avant de l’extrémité de l’aile; 4e nervure longitudinale coudée à angle obtus, arrondi; 3ü nervure longitudinale munie de soies dans sa partie pro- ximale, en avant de la petite nervure transversale; thorax et abdo- men métalliques, verts ou bleus, très brillants, sans reflets soyeux. Lucilia cœsar : les larves peuvent donner lieu à des accidents de myiase cutanée et intestinale chez l’homme. Lucilia sericata ■ les larves déterminent chez les moutons une myiase cutanée assez grave; ont été rencontrées de même chez l’homme dans des cas de myiase cutanée et intestinale. Lucilia regina : les larves ont été reconnues comme la cause de myiase intestinale chez l’homme. Lucilia nobilis : les larves ont été rencontrées dans le méat auditif chez l’homme. 3. Compsomyia Rondani, 1875. Thorax vert métallique orné de trois bandes longitudinales noires; abdomen métallique; soie de l’antenne plumeuse. Compsomyia macellaria : dépose ses œufs dans les plaies ou les introduit dans les cavités natu- relles (oreilles, nez, sinus frontaux) chez l’homme et les animaux domestiques (Amérique). Compsomyia viridula : les larves ont été rem contrées dans un ulcère chez l’homme et la cavité nasale d’une femme (Amérique centrale). 4. Pycnosoma Brauer et Bergenstamm, 1893. Corps bleu ou vert métallique; 3e nervure lon- gitudinale glabre ou parfois poilue; thorax sans bandes longitudinales noires; chez le mâle les fa- cettes des deux tiers ou trois quarts supérieurs de l’œil sont nette- ment plus grandes. Pycnosoma megacephala : les larves ont été rencontrées dans des plaies chez les bovidés (Congo belge). Pycnosoma putorium : les larves parasitent souvent l’homme et les animaux domestiques (Abyssinie, Congo Belge, Lourenço Marquès). Pycnosoma marginale : les larves ont été recueillies dans des plaies sur des bovidés (Congo Belge). Pycnosoma sp. : les larves de deux autres espèces ont été ob- servées dans des plaies sur des bovidés (Congo Belge). Fig. 009. — Compsomyia macellaria : larve. {D’après R. Blan- chard.) 5. Calliphora Robineau-Desvoidy, 1830. Thorax et abdomen d’un bleu d’acier avec des reflets grisâtres soyeux; yeux glabres; soie de l’antenne doublement et longuement plumeuse; 4e nervure longitudinale coudée à angle obtus, un peu en forme de V ; 3e nervure longitudinale poilue à la base. Calliphora vomitoria les larves ont été trouvées dans les fosses nasales et dans l’intestin de l’homme. Calliphora limensis : les larves causent une myiase nasale chez l’homme au Chili. Calliphora oceanica : dépose ses œufs dans la toison souillée des moutons et les larves pénètrent dans la peau (Australie). Calliphora villosa : peut déterminer des ac- cidents analogues chez les moutons australiens. Calliphora dux : détermine une myiase cuta- née très grave chez les moutons hawaïens. Calliphora erythrocephala et C. aztirea : les larves ont été rencontrées dans l’intestin de l’homme. 6. Cordylobia Gruenberg, 1903. Yeux glabres presque contigus chez le mâle; 3e article de l’antenne triple en longueur du 2e; soie de l’antenne plumeuse sur les 2/3 proximaux; bord antérieur de l’aile muni de soies courtes; 3e nervure longitudinale munie de soies de sa base jusque près de la petite t ervure transversale, celle-ci à direction légèrement oblique; nervure transversale postérieure légèrement incurvée en S; lre cellule postérieure étroitement ouverte en avant de l’extrémité de l’aile. Cordylobia anthropophaga : larve sous la peau de l’homme, du chien, du chat, de la chèvre. Cordylobia rodhaini : larve sous la peau de l’homme (Congo belge). 7. Auchmeromyia Schiner, Brauer et Bergenstamm, 1891. Yeux glabres écartés dans les deux sexes; soie de l’antenne plumeuse; corps de teinte jau- nâtre, non métallique; 2e anneau abdominal très grand. Auchmeromyia luteola : les larves vivent sur le sol et se gorgent du sang de l’homme pendant la nuit (Afrique), Fifi. ôio. — Cordylobia aitfhropo- phoga : larve. (D’après Auste.n.) Fig. ou. — Auchviiremyia lutco- la ; larve. (D’après Brumi'T.) 235 8. Pollenia Robineau-Desvoidy, 1830. Yeux contigus chez le male; soie de l’antenne entièrement plu- meuse; ailes hyalines; abdomen poilu, mais dépourvu de fortes et longues soies sur les arceaux dorsaux; thorax à pubescence jaune mêlée aux soies ordinaires. Pollenia rudis ' les larves ont été signalées dans un cas de myiase gastrique chez l’homme. 9. Cephenomyia Latreille, 1825. Front bombé proéminent; lre cellule marginale postérieure ouverte; 4e nervure longitudinale présente un appendice au niveau de son incurvation; 6e an- neau abdominal grand, à rebord presque circulaire; téguments à pilosité fine et serrée. — Larves à antennes contiguës à leur base; corps allongé; an- neaux armés d’épines dorsalement et ventralement, formant ceinture au bord antérieur; stigmates pos- térieurs réniformes; stigmates antérieurs petits. Cephenomyia trompe : les larves vivent dans le pharynx du renne. Fig. 3i2. — Cepheno- myia rufibarbis : larve (D’après Brauer.' c. Hypoderminés. Face présentant un champ médian, dit écusson facial, largement surbaissé; nervure transversale terminale présente; jamais d’appen- dice au point d’incurvation de la 4e nervure longitudinale; cuillerons grands; femelle ovipare munie d’un long oviscapte extensible; ailes le plus souvent troubles. — Larves sans crochets buccaux ou avec une paire de crochets; pas de champs intermédiaires dorsaux sur les segments moyens; corps ovale, épais; anneau terminal libre, non pro- fondément séparé des anneaux antérieurs; plaques stigmatiques pos- térieures réniformes ou arrondies ; trois paires de bourrelets latéraux; face dorsale concave, face ventrale convexe; vivent sous la peau des ruminants cavicornes, des équidés, des rongeurs, des cervidés. 1. Hypoderma Latreille, 1825. Antennes très courtes, à 2 premiers articles aplatis; trompe ru- dimentaire; palpes absents. — Larves dépourvues de crochets buccaux; antennes rudimentaires; spi- nulation moins développée à la face dorsale qu’à la face ventrale; épines disposées en ceintures sur les segments. Hypodernm lineata : parasite du bœuf; a été rencontré aussi chez l’homme. Hypoderma bovis : parasite du bœuf; a été observé aussi chez le cheval et chez l’homme. Hypoderma equi : parasite du cheval. Hypoderma diana : parasite ordinaire des cervi- dés, a été signalé également chez l’homme. 2. Œdemagena Latreille, 1816. Antennes très courtes, à 2 premiers articles aplatis; trompe rudimentaire, palpes petits, globuleux. — Larves dépourvues de crochets buccaux; anten- nes rudimentaires; spinulation également développée sur les deux faces et disposée en ceintures sur les segments. Œdemagena iarandi : parasite du renne. Fig. .1-3. — Hypoderina bovis : larve. (D’après Brauer.) Fig. ."14.— Œdcmagena tarandi : larve. (D’après Brauer.) d. Œstrinés. Face présentant une étroite bandelette ou sillon médian; nervure transversale médiane présente; femelle ovipare ou larvipare, dépourvue d’un long oviscapte; cuillerons grands. — Larves à bourrelets dor- saux intermédiaires aux anneaux moyens; une de crochets buc- caux; antennes munies de 1-3 points ocelliformes; anneau terminal du corps libre formant seul la cavité stigmatique; plaques stigmati- ques postérieures libres ou situées au fond d’une excavation du der- nier anneau; en dessous un appendice plus ou moins développé ser- vant pendant la vie parasitaire à nettoyer les plaques stigmatiques et lors de l’émigration à faciliter la propulsion du corps ; parasites des cavicornes, des cervidés, des proboscidiens, des équidés, etc. 237 1. Œstrus Linné, 1758. Front proéminent ; lre cellule marginale postérieure fermée et longuement pédicellée; 4e nervure longitudinale se coudant près de la nervure transversale postérieure et continuant celle-ci parallèlement au bord de l’aile; trompe rudimentaire conique ne dépassant pas les palpes; corps à peu près nu, à pilosité rare. — Larve de forme ovalaire, à face dorsale convexe, à face ventrale aplatie et présentant latéralement des bourrelets épais; antennes à 2 points ocelliformes; épines formant des ceintures développées à la face ventrale, absentes à la face dorsale; cavité stigma- tique postérieure large et peu profonde; plaques stigmatiques de forme pentagonale arrondie; stig- mates antérieurs à peine visibles; anneaux moyens présentant à leur face ventrale deux mammelons moyens et deux latéraux; parasites des cavicornes. Œstrus ovis ■ parasite du mouton et de la chèvre dans les sinus frontaux et leurs dépendances. Fig. 3i5. — Œstrus ovis : larve. (D’après Brauer.) 2. Rhinœstrus Brauer, 1886 Diffère du genre Œstrus en ce que le rudiment de trompe est long, dépassant les palpes et se terminant en deux bourrelets qui sont les rudiments des labelles et un prolongement moyen qui représente le labium; corps mammelonné et à pilosité très courte; abdomen tronqué en arrière; anneau terminal triangulaire. — Larve de forme elliptique, à face dorsale convexe, à face ventrale plane et présentant des bourrelets latéraux fort développés; antennes à deux points ocelliformes; ceintures épineuses dorsalement jusque sur le 7e anneau et les bourrelets latéraux, ventrale- ment sur tous les anneaux; cavité stigmatique pos- térieure étroite et profonde; plaques stigmatiques réniformes; stigmates antérieurs non apparents; anneaux moyens pourvus à la face ventrale de deux mammelons médians et deux latéraux; parasites des équidés. Fig. 316. — Rhinœstrus purpureus : larve. (D’après Brauer.) Phinœstrus purpureus : parasite du cheval, dans les cavités nasales, les sinus frontaux, le pharynx et même le larynx. 3. Pharyngobolus Brauer, 1866. Imago non connu. — Larves de forme elliptique, à face ventrale plus aplatie que la face dorsale; antennes à 3 points ocelliformes ; ceintures peu nombreuses formées d’é- pines assez grandes et incurvées en crochet, alter- nant avec des ceintures formées de plus petites épines; plaques stigmatiques postérieures réniformes; para- sites des proboscidiens. Pharyngobolus africanus : dans le pharynx de l’éléphant. d’Afrique. 4. Cephalomyia Macquart, 1843. Nervure transversale terminale presque perpen- diculaire à l’axe longitudinal de l’aile; lre cellule marginale postérieure fermée,faiblement pédicellée; antennes largement distantes l’une de l’autre; pièces buccales fort petites; corps presque glabre. - Larves à corps allongé, faiblement aplati à la face ventrale; antennes avec un seul point ocelliforme; chaque segment pourvu d’une ceinture de grosses épines coni- ques disposées par paires; cavité stig- matique étroite; plaques stigmatiques .réniformes; stigmates antérieurs in- visibles; parasites des tylopodes. Cephalomyia maculata : dans les cavités nasales du chameau et du dro- madaire. 5. Gobboldia Brauer, 1887. Nervure transversale terminale présente; cuillerons de grande taille; 2e article de l’antenne court, trilobé; palpes gros; face pourvue d’une fossette ovale, large et profonde. — Fig. 317. — Pharyngobolus africains : larve. (D’a- près Brauer.) Fig. 3x8. — Cephalo- Fig. 019. — Cobboldia viyia maculata : larve, elephantis : larve. (D’a- (D’après Brauer ) près Brauer.i Larve avec une paire de crochets chitineux très gros et fort proéminents; stigmates antérieurs grands et apparents; bourrelets intermédiaires laté- raux entre les segments moyens; lèvres de la cavité stigmatique posté- rieure munies de tubercules coniques; arcades à peu près droites; pa- rasites dans l’estomac et l’intestin des proboscidiens. Cobboldia elephantis : parasite de l’éléphant indien. Cobboldia loxodoniis : parasite de l’éléphant africain. 6. Neocuterebra Gruenberg, 1906. Imago inconnu. — Larve de forme ovale, biconvexe; deux très petits crochets buccaux; pas de bourrelets intermédiaires ni latéraux; revêtement chi- tineux constitué par de petites écailles ar- rondies ou dentées, régulièrement disposées; dernier segment invaginé dans l’anneau pré- cédent; plaques stigmatiques situées au fond d’une cavité stigmatique spéciale et présen- tant trois arcades elliptiques allongées. Neocuterebra squamosa : dans le tissu adipeux de la plante du pied de l’éléphant africain. Fig. 020. — Neocuterebra sq mi- mosa : larve. (D’après Gruenberg.) e. Cutérébrinés. Trompe coudée, rétractile dans une fossette longitudinale profonde à la face inférieure de la tête; palpes absents; femelle sans ovi- scapte apparent, les pièces génitales étant dirigées en dessous et en avant; soie de l’antenne plumeuse ou glabre; nervure transversale ter- minale présente; l’incurvation de la 4e nervure longitudinale au ni- veau de la nervure transversale postérieure ou un peu au-delà. — Larves à dernier anneau pouvant s’engager dans l’anneau précédent, de petite taille et constituant parfois comme un appendice du pénul- tième anneau qui forme la cavité stigmatique; antennes à deux points ocelliformes; une paire de crochets buccaux bien développés, ou très petits ou même absents; corps ovalaire ou claviforme et dans ce der- 240 nier cas atténué en arrière; face dorsale toujours convexe; face ven- trale concave; stigmates antérieurs développés, assez grands, situés entre le 2e et le 3e anneau ; plaques stigmatiques postérieures réni- formes; parasites sous la peau des rongeurs, des marsupiaux, des ongulés, des carnivores et même de l’homme. 1. Cuterebra Clark, 1815. Soie de l’antenne plumeuse en dessus; 3e article de l’antenne ovi- forme ou elliptique, court; abdomen ovalaire; cuillerons très grands; tarses larges, plats. — Larve ovale, chargée d’épines aiguës diversement conformées; parasites des rongeurs et des mar- supiaux. Cuterebra emasculator : normalement para- site dans le scrotum de l’écureuil strié d’Amé- rique; a été signalé aussi dans le scrotum du chien. 2. Dermatobia Brauer, 1860. Soie de l’antenne plumeuse en dessus; 3e article antennaire allongé; front fort proéminent; abdomen aplati; tarses minces; cuillerons mo- dérément développés. — Larve claviforme, fort acuminée en arrière, munie de gros tubercules et de rares ceintures d’épines ; stigmates pos- térieurs sous forme de trois fentes longitudi- nales convergentes situées de chaque côté du dernier anneau, qui est petit, cupuliforme et souvent entièrement caché dans l’anneau pré- cédent; parasites sous la peau des cervidés, des cavicornes, des carnassiers et même de l’homme. Dermatobia cyaniventris : sous la peau du bœuf, du chien de l’homme (Amérique cen- trale, Brésil). Fig. Ô2i. — Cuterebra emasct/lator : larve. (D’a- près Inskct Life.) Fig. 322. — Dermatobia cyaniventris : larve. (D'a- près R. Bianchard.) f. Tachininés. Membrane ventrale absente; deuxième segment ventral caché comme les autres sous les bords des tergites; soie interalaire présuturale pré- sente; antennes le plus souvent insérées au-dessus du milieu des yeux; soie glabre; au moins deux soies posthumérales et trois soies intraalaires postérieures. Tachina Meigen, 1803. Antenne à 2ü article fort allongé, 3e article aussi ou plus long que le 2e, à soie apparemment biarticulée, nue ou pubescente; ab- domen plus ou moins elliptique allongé; cellule discoïdale très large, aboutissant toujours à une certaine distance de l’extrémité de l’aile. Tachina larvarum : les larves ont été rencontrées dans certains cas de myiase intestinale chez l’homme. fi. Holométopes. Front également large dans les deux sexes ou plus large chez la femelle par élargissement de la zone moyenne; lunule souvent in- distincte, cachée sous le rebord frontal; cuillerons le plus souvent absents. 1. SEPSIDÉS. Tête arrondie; front large; antennes le plus souvent courtes; abdomen à 5-6 anneaux; ailes modérément grandes ou relativement petites; lre nervure longitudinale simple ou double; cellules basale postérieure et anale distinctes; tibias le plus souvent dépourvus de soies préapicales. Piophila Fallén, 1820. Première nervure longitudinale double, à branches accolées; ailes dépourvues de taches; trompe courte et large; abdomen elliptique allongé; nervures transversales fort rapprochées. Piophila casei : les larves ingérées donnent lieu à des accidents de myiase intestinale chez l’homme. 2. MICROPEZIDÉS Ailes grandes; lre nervure longitudinale double ou simple; 3e et 4° nervures longitudinales convergeant très fort à leur extrémité ; cel- lule discoïdale fort rétrécie en avant; cellules anale et basale posté- rieure distinctes et assez grandes; pattes longues; tibias sans soie préapicale; trompe à extrémité élargie. Calobata Meigen, 1803. Nervures transversales aussi ou plus distantes l’une de l’autre que la nervure transversale postérieure du bord de l’aile; cellule anale grande; lre nervure longitudinale à branches distinctes; cellule basale postérieure nettement séparée de la cellule discoïdale par une nervure transversale. Calobata cibaria : larves observées parfois dans des cas de myiase intestinale chez l’homme. 3. DROSOPHILiDÉS. Tête hémisphérique; front large; antennes à 3e article allongé ou arrondi, à soie pectinée ou plumeuse, rarement nue; abdomen à 5 anneaux, le plus souvent court et large; ailes assez grandes et généralement larges; lre nervure longitudinale simple et courte, se terminant vers le tiers du bord antérieur; cellule basale postérieure présente ou absente; cellule anale le plus souvent présente; pattes assez courtes; tibias à soie préapicale le plus souvent apparente; trompe à extrémité assez élargie. Drosophila Fallén, 1823. Nervure transversale postérieure présente; cellule basale posté- rieure absente; soie de l’antenne longuement plumeuse ou pectinée au-dessus. Drosophila tnelanogasirci et Drosophila funebris : 'es larves de ces deux espèces ont été rencontrées dans certains cas de myiase intestinale chez l’homme. 4. ÉPHYDRIDÉS. Tête hémisphérique à yeux proéminents; front large; antennes assez courtes, à 3e article ovalaire ou discoïde; abdomen à 3-6 an neaux, assez large; ailes aussi ou plus longues que l’abdomen; lre nervure longitudinale simple, courte; 3e et 4e nervures longitudinales le plus souvent presque parallèles ; cellules basale postérieure et anale absentes; pattes relativement courtes, assez fortes; tibias souvent munis de soies sur leur face externe. Éphydrinés. Antennes à 2e article dépourvu d’épine; yeux glabres. Tichomyza Macquart, 1835. Face très convexe; fémurs antérieurs normaux; ongles des tarses courbés; pelottes du dernier article bien développées; soie des antennes presque glabre. Tichomyza fusca : les larves ont été observées dans certains cas de myiase cutanée chez l’homme. 5. CHLOROP1DÉS. Ailes à subcostale fusionnée avec la lre nervure longitudinale; cellule discoïdale et cellule basale postérieure fusionnées; pas de cel- lule anale; tête et thorax dépourvus de grosses soies; petits diptères colorés en jaune vif ou en noir. Oscinis Latreille, 1804. Nervure costale s’étendant jusqu’à la terminaison de la 4e nervure longitudinale; face non proéminente. Oscinis sp.? : est suspectée transmettre le bacille de Koch-Weeks n causer ainsi des conjonctivites graves (Ceylan). b. PUPIPARES. Tête aplatie disposée parallèlement à l’axe longitudinal du corps, largement adhérente au thorax, souvent engagée dans une excavation de ce dernier; suture frontale toujours présente; ampoule frontale parfois rudimentaire; yeux largement séparés dans les deux sexes, parfois rudimentaires; ocelles le plus souvent absents; antennes petites, lar- gement séparées, insérées dans des fossettes profondes; pièces buc- cales disposées pour piquer; corps large et aplati; abdomen souvent dépourvu de segmentation apparente; ailes présentes, rudimentaires ou totalement absentes; nervation toujours plus ou moins rudimen- taire; pattes vigoureuses à griffes puissantes; femelles larvipares; adultes parasites des mammifères, des oiseaux, etc. HIPPOBOSCIDÉS. Palpes servant de gaine à la trompe; tête engagée dans le thorax; tarses à 1er article très court; yeux présents; ongles des tarses bien développés; corps aplati; parasites des mammifères et des oiseaux. a. Hippoboscinés. Ocelles absents; ailes complètement développées, à nervures an- térieures normales; pas de cellule anale; pronotum visible par au-dessus sous forme d’un bourrelet le plus souvent coloré. Hippobosca Linné, 1761. Ongles des tarses bidentés; tête ronde bien séparée du thorax; parasites des mammifères, exceptionnellement des oiseaux. Hippobosca equina • sur le cheval, le bœuf, le chien, le droma- daire; peut aussi piquer l’homme. Hippobosca cameliua : sur le cheval, le chameau, le dromadaire; peut aussi piquer l’homme. Hippobosca maculata : sur le cheval, le bœuf, le chameau, le dromadaire; peut aussi se rencontrer sur l’homme; a été reconnue comme agent de transmission de Trypanosoma iheileri. Hippobosca dromedarinci : sur le dromadaire. Hippobosca capensis : sur le chien. Hippobosca struthio- nis • sur l’autruche. Hippobosca rufipes : sur le bœuf et le cheval; a été aussi rencontrée sur l’autruche; intervient dans la transmission de Trypa- nosorna theileri. b. Olfersiinés. Ocelles absents; ailes toujours bien développées, sans cellule anale close; pronotum invisible en des- sus. 1. Lynchia Weyenberg, 1881. Ongles des tarses tri- dentés; ailes sans nervures transverses anale et médio- cubitale. Lynchia manra : parasite du pigeon domestique; est l’agent de transmission de Hœmoproteus columbœ. Lynchia capensis : sur les pigeons domestiques (Ténériffe). Fig. 323. — Hippobosca rufipes. (D’après Gruenberg.) Fig. 324. — Lynchia maura : aile. (D’après MassONNAT.) 2. Ortholfersia Speiser, 1902. Ongles des tarses simples; ailes sans nervure transversale anale. Ortholfersia spinifera : parasite du pigeon domestique. c. Lipopténinés. Ocelles présents ou absents; ailes plus ou moins rudimentaires, à nervation fort réduite, le plus souvent brisées et réduites à des moignons. 1. Melophagus Latreille, 1802. Ocelles absents; griffes des tarses simples; ailes réduites à des rudiments en forme de saillies; balan- ciers absents; yeux liné- aires. Melophagus ovinus ’ parasite du mou- ton; peut aussi piquer l’homme. 2. Lipoptena Nitzsch, 1818. Ailes le plus souvent brisées à la base; ocelles présents; ongles des tarses simples. Lipoptena cervi : parasite ordinaire du cerf, du chevreuil; peut également piquer l’homme. d. Ornithomyinés. Ocelles présents ou absents; ailes de développemènt variable, à cellule anale le plus couvent présente. Fig. 325. — Melophagus ovinus. (D’après GrubnberG.) Fig. 026. — Lipoptena cervi Ç (D’après Massonnat.) 1. Ornithomyia Latreille, 1802. Ailes bien développées; ongles des tarses tridentés; ocelles pré- sents; cellule anale nettement limitée par une nervure transversale; troisième nervure longitudinale non coudée au niveau de la nervure transversale moyenne ; prolon- gements antennaires diver- gents; parasites des oiseaux. Ornithomyia avicularia : parasite du pigeon domes- tique, etc.; peut être observée aussi chez l’homme. 2. Ornithoctona Speiser, 1902. Diffère du genre Orni- thomyia en ce que les pro- longements antennaires sont parallèles et larges. Ornithoctona nigricans var. columbœ ■ parasite sur le pigeon domestique. Fig. 327. — Ornithomyia aviculciria çf (D’après Massonnat.) 6. COLÉOPTÈRES Ailes supérieures cornées ou en élytres; ailes inférieures mem- braneuses repliées transversalement sous les élytres ; pièces buccales conformées pour broyer; antennes typiquement de onze articles. A. Cantharidiformes. Ailes inférieures à nervure médiane prolongée au-delà du pli trans- versal et émettant un rameau récurrent uni par une transversale à un rameau récurrent de la nervure radiale; premier arceau ventral visible de l’abdomen non complètement traversé par les cavités coty- loïdes des hanches postérieures. a. Brachymères. Hanches postérieures dilatées en lamelle recouvrant le fémur au repos; antennes renflées en massue à l’extrémité; hanches antérieures coniques et saillantes ou transversales; tarses de cinq articles; ab- domen de cinq arceaux ventraux. DERMESTIDÉS. Hanches antérieures coniques et plus ou moins saillantes; arceaux ventraux de l’abdomen libres; tarses non rétractiles dans les tibias; antennes terminées brusquement par une massue triarticulée. Dermestes Linné, 1758. Ocelle absent sur le front; prosternum sans prolongement en ar- rière des hanches antérieures contiguës. Dermestes lardarius : les larves peuvent s’attaquer aux pigeon- neaux, leur ronger la peau du cou et du ventre et produire ainsi des plaies souvent mortelles. b. Hétéromères. Hanches postérieures non saillantes et sans lame protectrice; an- tennes à articles en général non différenciés; tarses de 5 articles, le premier article absent aux pattes postérieures; abdomen à 5 arceaux ventraux. TÉNÉBRIONIDÉS. — Ténébrioninés. Cavités cotyloïdes antérieures fermées en arrière; hanches anté- rieures ni proéminentes, ni contiguës; ongles des tarses simples; an- tennes insérées sous un rebord du front. Ténébrioniens. Corps de forme allongée ; prosternum allongé en avant des han- ches antérieures. Tenebrio Linné, 1758. Tête non enfoncée dans le prothorax jusqu’aux yeux. Tenebrio molitor : les larves peuvent attaquer les pigeonneaux comme les larves de dermestes; les adultes ont été observés attaquant les poules couveuses, notamment aux pattes. c. Phytophages. Hanches postérieures non saillantes et sans lame protectrice; an- tennes à articles non différenciés; tarses modifiés par l’élargissement des trois premiers articles revêtus en dessous d’une semelle feutrée; troisième article tarsien bilobé, le quatrième réduit ou nul; abdomen à cinq arceaux ventraux. CÉRAMBYC1DÉS. Antennes longues et minces; pattes et corps allongés; dessous du corps sans duvet feutré imperméable. Prioninés. Prothorax offrant un rebord latéral séparant le pronotum du pros- ternum et orné de trois dents de chaque côté; tibias antérieurs non sillonnés; palpes à article terminal tronqué. Ergates Serville, 1832. Prothorax transversal, plus large en avant que long, crénelé sur les côtés et muni en outre d’une épine chez la femelle; tibias anté- rieurs munis de deux éperons; antennes subfiliformes ou sétacées, formées de 11 articles. Ergates faber : les larves ont été recueillies comme parasites accidentels dans les cavités nasales du dromadaire. d. Clavicornes. Hanches antérieures non ou peu saillantes, non contiguës; hanches postérieures non saillantes et sans lame protectrice; antennes plus ou moins renflées en massue; tarses de cinq articles plus ou moins nets; abdomen à cinq arceaux ventraux. CUCUJIDÉS. Hanches antérieures petites et globuleuses; élytres ornées de ran- gées longitudinales de points; corps plus ou moins aplati et allongé; hanches postérieures plus ou moins séparées; ongles des tarses non dentés à leur base. Cucujinés. Tarses à 3e article non bilobé, à 4e article très court et à 5e article pas plus long que les autres réunis; antennes de 11 articles; élytres recouvrant tout l’abdomen. Silvanus Latreille, 1807. Massue des antennes formée de trois articles de même largeur. Silvanus surinamensis : envahit parfois les lits et mord l’homme endormi. e. Malacodermes. Hanches antérieures saillantes et contiguës; hanches postérieures sans lame protectrice; antennes à articles semblables, les derniers par- fois différenciés; tarses ordinairement à cinq articles. MÉLYRIDÉS. Épistome nettement séparé du front sous forme d’une lame trans- versale en arrière du labre bien visible; antennes non dentées en peigne, insérées devant les yeux sur les côtés de la tête; élytres toujours présentes; tête dégagée du prothorax; abdomen à six ar- ceaux ventraux au maximum. Corynétinés. — Corynétiens. Hanches postérieures séparées l’une de l’autre et non saillantes au côté interne; tarses paraissant en dessus formés de 3 articles seu- lement, le 2e cachant le lei qui est très court, le pénultième très petit est caché entre les lobes du précédent, tous sont pourvus en dessous de lamelles membraneuses; antennes terminées par une courte massue de 3 articles; abdomen à cinq arceaux ventraux; corps bombé, à téguments assez consistants; prothorax pourvu d’un rebord latéral. Necrobia Latreille, 1796. Élytres planes autour de l’écusson; dernier article des antennes aussi long que les deux précédents réunis. Necrobia sp. : une larve a été observée chez une jeune fille dans une petite poche de la conjonctive formée par le soulèvement du tissu conjonctival. B. Staphyliniformes. Ailes inférieures à nervure médiane se divisant en deux rameaux prolongés jusqu’au bord de l’aile; pas de nervure transversale; deux plis transversaux; premier arceau ventral de l’abdomen non traversé complètement par les cavités cotyloïdes des hanches postérieures. SILPHIDÉS. - Silphinés. Antennes non coudées, de 11 articles; hanches antérieures pro- éminentes et contiguës; abdomen à 6 arceaux ventraux au moins; point d’ocelles; hanches postérieures normales, ne recouvrant pas les pattes postérieures; élytres présentant un ourlet latéral; ailes infé- rieures non frangées. Silphiens. Tête pénétrant normalement dans le prothorax; prosternum ne s’étendant pas en arrière des hanches antérieures. 252 1. Silpha Linné, 1758. Artennes à 1er article peu allongé, à 2e bien développé, à massue terminale allongée, progressivement renflée; élytres couvrant tout l’ab- domen et arrondies à l’extrémité, ou légèrement tronquées et laissant alors à découvert les deux derniers arceaux dorsaux de l’abdomen. Silpha sp. : les larves attaquent occasionnellement les pigeon- neaux. 2. Nicrophorus Fabricius, 1775. Antennes à 1er article très allongé, à 2e très court, à peine vi- sible; massue terminale courte et brusquement renflée; élytres tron- quées en arrière et laissant à découvert les trois derniers arceaux dorsaux de l’abdomen. Nicrophorus sp. : les larves attaquent parfois les pigeonneaux. Addenda et Corrigenda P. 15, ajouter : Microsporum depauperatum : trouvé dans une lésion squameuse de la cuisse d’une femme. P. 16, ajouter : Achorion violaceum : détermine chez l’homme sur la peau glabre des lésions trichophytoïdes simples ou associées à des formations faviques. P. 24-25 : D’après Vuillemin, le Mastigocladium blochii appartiendrait au genre Scopulariopsis Bainier, 1908. Mucédinées voisines des Pénicillium-, pinceaux conidifères irré- guliers, à support très court, à rameaux généralement gros, à stérig- mates relativement très allongés; conidies volumineuses, rondes ou ovales, lisses ou échinulées, toujours associées à un nombre plus ou moins grand de conidies à sommet pointu ou à base tronquée, ou bien encore présentant la forme d’un fer de lance tronqué à la base. Espèces de couleur plus ou moins vive, blanche, rose, jaunâtre, rougeâtre ou grisâtre, se développant sur les substances en décom- position; apparaissent d’ordinaire lorsque d’autres mucédinées, ou même parfois les Pénicillium verts classiques, ont plus ou moins achevé leur évolution. P. 33, ajouter : Amœba williamsi : espèce non pathogène rencontrée dans les selles des indigènes des Iles Samoa (Savaii). Amœba Umax : a été trouvée dans des cultures obtenues de fèces dysentériques à Manile. P. 38 : Bodo asiaticus : devient Prowazekia asiatica (p. 41). P. 39, ajouter : Trichomonas gallinarum : dans les cæcums de la poule P. 40, insérer : 3. Chilomastix Alexeieff, 1910. Corps de forme plus ou moins globuleuse, à extrémité posté- rieure parfois effilée; cytostome très développé; quatre flagelles anté- rieurs partant d’un double grain basal, trois flagelles dirigés en avant et un en arrière parcourant le cytostome; noyau placé à l’extrémité antérieure. Chilomastix gallinarum : dans les cæcums de la poule. Il est probable que le Tetramitus mesnili (p. 40) appartient au même genre. 4. Trichomastix Blochmann, 1884. Corps piriforme, arrondi en avant, effilé en arrière, et parcouru par un axostyle; quatre flagellums, dont trois plus courts, dirigés en avant, partant d’un granule basal, et un plus long, rejeté en arrière et partant d’un second granule basal situé un peu plus profondément; noyau situé dans la partie antérieure du corps; pas de vacuole con- tractile. Trichomastix gallinarum : dans les cæcums de la poule. 5. Fanapepea v. Prowazek, 1911. Corps piriforme, contourné d’un côté, à long prolongement cau- dal; deux flagelles antérieurs partant de deux corpuscules basilaires petits, difficiles à voir; noyau vésiculeux, le plus souvent peu chro- matique, antérieur et possédant un petit caryosome latéral; cytostome grand, sacculiforme, parcouru par une membrane ondulante qui prend naissance au niveau d’un troisième corpuscule basilaire. Fanapepea intestinalis ■ dans le contenu intestinal des indigènes des Iles Samoa. 255 P. 43, ajouter : Trypanosoma evansi var. mborii : agent de la Mbori, affection des dromadaires (Ouest africain). Trypanosoma annamense : dans le sang des équidés et des bo- vidés (Annam, Tonkin). Trypanosoma montgomeryi ' a été observé dans le sang d’une vache (Rhodésie). Trypanosoma frobeniusi : dans le sang d’un poney provenant de l’hinterland de Togo. P. 51, ajouter : Spirochœta laverani : dans des carcinomes de l’homme et du chien. Spirochœta granulosa penetrans : détermine la spirochétose des poules au Soudan égyptien. P. 72, supprimer : Davainea cantaniana. P. 76, ajouter : Hymenolepis exigua : dans le duodénum des poules (Tokyo). Hymenolepis inermis : dans le duodénum des poules (Tokyo). P. 92, supprimer : Le genre Fascioletta P. 96, ajouter • Echinostoma ilocanum : dans l’intestin de l’homme (Iles Philip pines). P. 104, supprimer : Strongyloides longus, qui doit s’appeler Trichosoma papillosum (à ajouter p. 114). P. 106, ajouter : Filaria bauchei : rencontrée dans le poumon du porc (Hué). P. 108, supprimer : Setaria sp., etc., et remplacer par : Setaria bernardi : observée à la surface du foie chez le porc (Hué). P. 110, ajouter : 8'. Physocephalus Diesing, 1861. Corps allongé, subcylindrique, muni latéralement de chaque côté d’une triple crête cuticulaire longitudinale; bouche bilabiée; extrémité caudale du mâle ailée et contournée en spirale, de la femelle droite et non ailée; vulve située dans la partie antérieure du corps. Para- sites dans l’estomac des pachydermes. Physocephalus sexalatus : dans l’estomac du porc domestique (Etats-Unis). Liste des Hôtes avec les parasites qu'ils hébergent. N. B. — Dans cette liste ne figurent comme parasites les diptères adultes, dont le parasitisme est intermittent et peut s’exercer assez indifféremment à l’égard de la plupart des animaux domestique?, que pour autant qu’ils aient été explicitement ou implicitement renseignés dans le corps de l’ouvrage comme parasitant certains hôtes en par- ticulier. Homme. Parasites végétaux. Mucor mucedo Mucor pusillus Lichtheimia corymbifera Rhizomucor parasiticus Rhizomucor niger Saccharomyces anginæ Saccharomyces tumefaciens Saccharomyces granulatus Saccharomyces blanchardi Saccharomyces membranogenes Saccharomyces samboni Saccharomyces ellipsoïdeus Saccharomyces roseus Saccharomyces krusei • Saccharomyces hominis Endomyces albicans Endomyces rhoi Endomyces tropicalis Endomyces pseudo-tropicalis Endomyces paratropicalis Parendomyces albus Cryptococcus degenerans Cryptococcus dermatitis Cryptococcus farciminosus Cryptococcus hominis Cryptococcus linguæ-pilosæ Cryptococcus corsellii Cryptococcus hessleri Cryptococcus rogieri Cryptococcus gluteitis Cryptococcus hudeli Cryptococcus harteri 258 Cryptococcus sakurani Trichophyton tonsurans Trichophyton sabouraudi Trichophyton violaceum Trichophyton effractum Trichophyton fumatum Trichophyton inflatum Trichophyton spongoïdes Trichophyton umbilicatum Trichophyton regulare Trichophyton pilosum Trichophyton glabrum Trichophyton sulfureum Trichophyton exsiccatum Trichophyton polygonum Trichophyton circonvolutum Trichophyton flavum Trichophyton plicatile Trichophyton mentagrophytes Trichophyton radiolatum Trichophyton granulosum Trichophyton lacticolor Trichophyton farinulentum Trichophyton persicolor Trichophyton felineum Trichophyton denticulatum Trichophyton megnini Trichophyton vinosum Trichophyton equinum Trichophyton purpureum Trichophyton ochraceum Trichophyton album Trichophyton discoïdes Trichophyton verrucosum Trichophyton faviformedu cheval Trichophyton faviforme aviaire Trichophyton albiscicans Trichophyton blanchardi Trichophyton ceylonense Trichophyton macfadyeni Trichophyton sp. Epidermophyton cruris Epidermophyton perneti Epidermophyton rubrum Epidermophyton bodini Endodermophyton concentricum Endodermophyton castellanii Endodermophyton indicum Microsporum audouini Microsporuin velveticum Microsporum umbonatum Microsporum tardum Microsporum canis Microsporum felineum Microsporum equinum Microsporum fulvum Microsporum villosum Microsporum pubescens Microsporum tomentosum Microsporum depauperatum Achorion schœnleinii Achorion quinckeanum Achorion gallinæ Achorion gypseum Achorion violaceum Bargellinia monospora Aspergillus herbariorum Aspergillus repens Aspergillus malignus Aspergillus nidulans Aspergillus nidulans var. nicollei Aspergillus niger Aspergillus flavescens Aspergillus siebenmanni Aspergillus fumigatus Aspergillus bronchialis Aspergillus bouffardi Aspergillus pictor Aspergillus barbæ Aspergillus fontoynonti Pénicillium crustaceum Pénicillium minimum Pénicillium montoyai Pénicillium barbæ Pénicillium brevicaule var. hominis Discomyces bovis Discomyces israeli Discomyces maduræ Discomyces freeri Discomyces brasiliensis Discomyces astéroïdes Discomyces fôrsteri Discomyces ros.enbachi Discomyces thibiergei Discomyces liquefaciens Discomyces garteni Discomyces minutissimus Discomyces carougeaui Discomyces pulmonalis Discomyces buccalis Discomyces lingualis Discomyces gedanensis Discomyces hominis Discomyces japonicus Discomyces proteus Discomyces radiatus Discomyces cerebriformis Discomyces carnea Discomyces fusca Discomyces aureus Discomyces luteolus Madurella mycetomi Madurella bovoi Indiella mansoni Indiella reynieri Indiella somaliensis Malassezia furfur Malassezia tropica Foxia mansoni Trichosporum beigeli Trichosporum ovoïdes Trichosporum ovale Trichosporum giganteum Trichosporum glycophile Trichothecium roseum Verticillium graphii Mastigocladium (Scopulariopsis) blochii Sporotrichum schenki Sporotrichum (Rhinocladium) beur- manni Sporotrichum (Rhinocladium) lesnei Sporotrichum dori Sporotrichum gougeroti Sporotrichum jeanselmei Sporotrichum indicum Sporotrichum asteroides Oïdium subtile Oïdium cutaneum Oïdium tropicale Monilia kochi Monilia candida Monilia montoyai Oospora tozeuri Hemispora stellata Montoyella nigra Botrytis pyogenes Acremonium potronii Pityrosporum ovale Pityrosporum cantliei Coccidioides immitis Pycnosporium lommeni Cladosporium sp. Champignons du frien Parasites animaux. Amœba gingivalis Amœba coli Amœba urogenitalis Amœba dysenteriæ Amœba diaphana Amœba lobosa var. guttula Amœba lobosa var. oblonga Amœba reticularis Amœba spinosa Amœba vermicularis Amœba miurai Amœba pulmonalis Amœba kartulisi Amœba buccalis Amœba undulans Amœba phagocytoïdes Amœba tetragena Amœba tropicalis Amœba nipponica Amœba minuta Amœba mortinatalium Amœba williamsi Amœba limax Paramœba hominis Chlamydophrys stercorea (Leydenia gemmipara) Cercomonas hominis Cercomonas vaginalis Cercomonas parva Cercomonas longicauda Monas pyophila Monas lens Bodo (Prowazekia) asiaticus Bodo urinarius Heteromita zeylanica Trichomonas vaginalis Trichomonas hominis Trichomonas pulmonalis Tetramitus mesnili Fanapepea intestinalis Lamblia intestinalis Prowazekia cruzi Prowazekia weinbergi Trypanosoma gambiense Trypanosoma rhodesiense Schizotrypanum cruzi Leishmania furunculosa Leishmania donovani Leishmania infantum Leishmania cunninghami Histoplasma capsulatum Plasmodium malariæ Plasmodium vivax Laverania malariæ Spirochæta recurrentis Spirochæta buccalis Spirochæta dentium Spirochæta pyogenes Spirochæta refringens Spirochæta pseudopallida Spirochæta vincenti Spirochæta duttoni Spirochæta balanitidis Spirochæta novyi Spirochæta carteri Spirochæta schaudinni Spirochæta bronchialis Spirochæta acuminata Spirochæta obtusa Spirochæta rossii Spirochæta gracilis Spirochæta aboriginalis 261 Spirochæta stenogyrata Spirochæta eurygyrata Spirochæta minei Spirochæta berbera Spirochæta laverani Treponema pallidum Treponema pertenue Diplospora bigemina (?) Eimeria stiedæ Eimeria jalina Eimeria hominis Sarcocystis bubali Sarcocystis lindemanni Rhinosporidium kinealyi Chilodon dentatus Chilodon uncinatus Colpoda cucullus Uronema caudatum Nyctotherus faba Nyctotherus giganteus Nyctotherus (?) africanus Balantidium coli Balantidium minutum Davainea madagascariensis Davainea asiatica Dipylidium caninum Hymenolepis diminuta Hymenolepis murina Drepanidotænia lanceolata Tænia solium Cysticercus cellulosæ Tæniarhynchus saginatus Cysticercus bovis (?) Tæniarhynchus africanus Tæniarhynchus hominis Tæniarhynchus philippinus Tænia (?) confusa Tænia (?) bremneri Echinococcus polymorphus Echinococcus multilocularis Braunia jassyensis Diphyllobothrium latum Diphyllobothrium cordatum Diphyllobothrium parvum Diplogonoporus grandis Sparganum mansoni Sparganum proliferum Sparganum baxteri Watsonius watsoni Gastrodiscus hominis Fasciola hepatica Fasciola gigantica Fasciolopsis buski Fasciolopsis rathouisi Fasciolopsis fülleborni Fasciolopsis (?) sp. Paragonimus westermani Agamodistomum ophthalmobium Opisthorchis felineus Opisthorchis noverca Clonorchis sinensis Clonorchis endemicus Heterophyes heterophyes Echinostoma ilocanum Dicrocœlium dendriticum Schistosoma hæmatobium Schistosoma mansoni Schistosoma japonicum Anguillulina putrefaciens Rhabditis pellio Rhabditis niellyi Strongyloides stercoralis Gnathostoma siamense Dracunculus medinensis Filaria (Loa) loa (Microfilaria diurna) Filaria labialis Filaria bancrofti (Microfilaria noc- turna) Filaria conjunctivæ Filaria perstans Filaria juncea Filaria taniguchii Filaria (?) kilimaræ Microfilaria romanorum Microfilaria powelli Microfilaria philippinensis Agatnofilaria oculi Agamofilaria georgina Agamofilaria palpebralis Dirofilaria magalhâesi Onchocerca volvulus Agamomermis restiformis Filaria (?) hominis oris Trichuris trichiura Trichinella spiralis Eustrongylus visceralis Metastrongylus apri Hæmonchus contortus Trichostrongylus probolurus Trichostrongylus vitrinus Trichostrongylus instabilis Strongylus gibsoni Œsophagostomum apiostomum Œsophagostomuin stephanostomum var. thomasi Ternidens deminutus Ankylostoma duodenale Necator americanus Physaloptera caucasica Physaloptera mordens Ascaris lombricoides Ascaris maritima Ascaris texana Belascaris mystax Toxascaris limbata Lagochilascaris minor Oxyuris vermicularis Gordius aquaticus Gordius chilensis Paragordius varius Paragordius tricuspidatus Paragordius cinctus Parachordodes tolosanus Parachordodes pustulosus Parachordodes violaceus Parachordodes alpestris Gigantorhynchus hirudinaceus Gigantorhynchus moniliformis Echinorhynchus hominis Limnatis nilotica Julus terrestris Julus londinensis Polydesmus complanatus Dermanyssus gallinæ Dermanyssus hirundinis Liponyssus sylviarum Holothyrus coccinella Lælaps stabularis Argas persicus Argas reflexus Argas brumpti Argas vespertilionis Ornithodoros savignyi Ornithodoros moubata Ornithodoros coriaceus Ornithodoros turicata Ornithodoros talaje Ornithodoros pavimentosus Ornithodoros tholosani Ornithodoros megnini Ixodes ricinus Ixodes ricinus var. scapularis Ixodes hexagonus Ixodes pilosus Ixodes bicornis Ixodes putus Ixodes rasus Ixodes cavipalpus Hyalomma ægyptium Amblyomma americanum Amblyomma cayennense Amblyomma dissimile Amblyomma hebræum Hæmaphysalis punctata Dermacentor reticulatus Dermacentor electus Dermacentor occidentalis Dermacentor andersoni Dermacentor variabilis Boophilus decoloratus Rhipicephalus sanguineus Rhipicephalus simus Rhipicentor bicornis Trombidium striaticeps Metatrombium poriceps Microtrombidium méridionale Microtrombidium pusillum Microtrombidium wichmanni Microtrombidium vandersandei Trombidium akamushi Trombidium tlalsahuate Trombidium americanum Trombidium irritans Tetranychus molestissimus Tetranychus telarius Cheyletus eruditus Acaropsis mericourti Tydeus molestus Pediculoides ventricosus Tarsonemus intectus Tarsonemus hominis Notoedres cati Sarcoptes scabiei Sarcoptes scabiei var. canis Sarcoptes scabiei var. capræ Sarcoptes scabiei var. dromedarii Sarcoptes scabiei var. equi Sarcoptes scabiei var. ovis (?) Sarcoptes scabiei var. crustosæ Sarcoptes scabiei var. suis Sarcoptes scabiei var. leonis Sarcoptes scabiei var. vulpis Sarcoptes scabiei var. aucheniæ Sarcoptes scabiei var. wombati Tyroglyphus siro Tyroglyphus longior Tyroglyphus farinæ Histiogaster entomophagus Histiogaster spermaticus Rhizoglyphus parasiticus Glyciphagus domesticus Carpoglyphus alienus Demodex folliculorum Linguatula serrata Porocephalus armillatus Porocephalus moniliformis Porocephalus naiæ sputatricis Scutigera coleoptrata (?) Lithobius forficatus Lithobius melanops Geophilus carpophagus Geophilus electricus Geophilus similis Geophilus cephalicus Himantarium gervaisi Chætechelyne vesuviana Haplophilus subterraneus Seira sp. Pediculus capitis Pediculus corporis Phthirus pubis Clinocoris lectularius Clinocoris rotundatus Clinocoris columbarius Clinocoris inodorus (?) Clinocoris pipistrelli (?) Clinocoris (?) boueti Œciacus hirundinis Anthocoris kingi Anthocoris congolensis Lyctocoris campestris Reduvius personatus Rhinocoris iracundus Eulyes amœna Prionotus carinatus Conorhinus sanguisugus Conorhinus rubrofasciatus Conorhinus renggeri Conorhinus variegatus (?) Conorhinus nigrovarius Conorhinus protractus (?) Lamus megistus Rhodnius prolixus Phonergates sp. Rasahus biguttatus Melanolestes morio Melanolestes abdominalis Reduviolus subcoleoptratus Pulex irritans Xenopsylla cheopis Xenopsylla pallidus Ctenocephalus canis Ctenocephalus felis Ctenocephalus erinacei Echidnophaga gallinacea (?) Phlebotomus papatasii Phlebotomus duboscqi Phlebotomus argentipes Anopheles maculipennis Anopheles bifurcatus Anopheles (?) formosaensis Anopheles (?) martini Anopheles (?) pursati Anopheles (?) vincenti Anopheles (?) faranti Anopheles (?) ziemanni Myzomyia funesta Myzomyia rossii Myzomyia culicifacies Myzomyia turkhudi Myzomyia listoni Cycloleppteron grabhami Cycloleppteron mediopunctatum Pyretophorus costalis Pyretophorus superpictus Pyretophorus jeyporensis Pyretophorus chaudoyei Myzorhynchus pseudopictus Myzorhynchus sinensis Myzorhynchus paludis Myzorhynchus barbirostris Myzorhynchus coustani Nyssorhynchus stephensi Nyssorhynchus theobaldi Nyssorhynchus fuliginosus Nyssorhynchus maculipalpis Cellia argyrotarsis Cellia pharoensis Culex pipiens Culex fatigans Culex gelidus Culex sitiens Culex albolineatus 265 Stegomyia fasciata Mansonia uniformis Mansonia annulipes Tæniorhynchus domesticus Mycterotypus irritans Culicoides pulicaris Culicoides duîouri Culicoides habereri Culicoides milnei Culicoides brucei Culicoides grahamii Culicoides varius Œcacta furens Œcacta hostilissima Johannseniella sordidella Hæmatomyidium paraense Melusina columbaczensis Melusina cinerea Melusina maculata Melusina indica Melusina damnosa Melusina griseicollis Melusina venusta Melusina albimana Melusina rubrithorax Melusina montana Melusina quadrivittata Melusina wellmanni Melusina buissoni Melusina scutistriata Melusina pertinax Melusina subnigra Melusina auristriata Melusina flavopubescens Melusina simplicicolor Melusina minuscula Chrysops cæcutiens Chrysops distinctipennis Chrysops dimidiata Chrysops silacea Rhinomyza denticornis Pangonia beckeri Tabanus obscurissimus Tabanus thoracinus Tabanus fasciatus Tabanus africanus Tabanus biguttatus Tabanus pluto Tabanus ruficrus Tabanus quadriguttatus (?) Tabanus secedens Tabanus kingsleyi Tabanus socialis Tabanus tæniola Tabanus variatus Tabanus canus Tabanus gratus Tabanus ditæniatus Tabanus unilineatus Tabanus molestus Hæmatopota pluvialis Hæmatopota nigricornis Hæmatopota denshamii Hæmatopota pallidipennis Hæmatopota torquens Hæmatopota lacessens Hæmatopota copemanii Hæmatopota pertinens Hippocentrum versicolor Hippocentrum trimaculatum Rhagio scolopaceus Rhagio strigosus Symphoromyia sp. Asilus crabroniformis Eristalis arbustorum Tubifera pendula 266 Aphiochæta ferruginea Aphiochæta rufipes Gastrophilus hæmorrhoidalis Gastrophilus nasalis Glossina palpalis Glossina brevipalpis Glossina morsitans Glossina caliginea Glossina nigrofusca Glossina tabaniformis Glossina fusca Stygeromyia sanguinaria Lyperosia irritans Lyperosia punctigera Haematobia stimulans Musca domestica Musca corvina Musca nigra Philæmatomyia insignis Fannia canicularis Fannia incisurata Fannia manicata Fannia saltatrix Fannia scalaris Fannia desjardensii Muscina stabulans Anthomyia pluvialis Sarcophaga carnaria Sarcophaga ruficornis Sarcophaga chrysostoma Sarcophaga plinthopyga Sarcophaga lambens Sarcophaga affinis Sarcophaga hæmorrhoidalis Sarcophaga hæmatodes Sarcophila latifrons Sarcophila meigeni J Sarcophila ruralis Wohlfahrtia magnifica Cynomyia mortuorum Lucilia cæsar Lucilia sericata Lucilia regina Lucilia nobilis Compsomyia macellaria Compsomyia viridula Pycnosoma putorium Calliphora vomitoria j Calliphora limensis Calliphora erythrocephala Calliphora azurea ; Cordylobia anthropophaga Cordylobia rodhaini Auchmeromyia luteola Pollenia rudis Hypoderma lineata Hypoderma bovis Hypoderma diana Dermatobia cyaniventris Tachina larvarum Piophila casei Calobata cibaria Drosophila melanogastra Drosophila funebris Tichomyza fusca Oscinis sp. Hippobosca equina Hippobosca camelina * Hippobosca maculata Melophagus ovinus Lipoptena cervi Ornithomyia avicularia i Silvanus surinamensis j Necrobia sp. Equus caballus. Parasites végétaux. Mucor racemosus Mucor spinosus Lichtheimia ramosa Lichtheimia regnieri Lichtheimia truchisi Rhizopus equinus Endomyces albicans Cryptococcus tokishigei Cryptococcus farciminosus Cryptococcus gottii Trichophyton mentagrophytes Trichophyton granulosum Trichophyton faviforme Microsporum equinum Aspergillus niger Aspergillus fumigatus Discomyces bovis Discomyces polychromogenes Sporotrichum (Rhinocladium) beur manni Fusarium equinum Parasite du Bursattee-Leeches Parasites animaux Amœba intestinalis Heteromita piriformis Heteromita rotunda Trypanosoma evansi Trypanosoma brucei Trypanosoma equiperdum Trypanosoma equinum Trypanosoma dimorphon Trypanosoma angolense cazalboui) Trypanosoma pecaudi Trypanosoma soudanense Trypanosoma togolense Trypanosoma venezuelense Trypanosoma pecorum Trypanosoma annamense Trypanosoma frobeniusi Babesia caballi Nuttallia equi Nuttallia tropica Spirochæta equi Sarcocystis bertrami Bütschlia postciliata Blepharocodon appendiculatus Blepharoprosthium pireum Blepharosphæra intestinalis Blepharocorys uncinata Blepharocorys valvata Blepharocorys jubata Paraisotricha colpoidea Paraisotricha oblonga Paraisotricha truncata Paraisotricha ovalis Paraisotricha triangularis Paraisotricha ampulla Paraisotricha incisa Cycloposthium bipalmatum Didesmis ovalis Didesmis quadrata Spirodinium equi Triadinium equi Anoplocephala magna Anoplocephala perfoliata Anoplocephala mamillana Cœnurus cerebralis Echinococcus polymorphus Pseudodiscus stanleyii Pseudodiscus collinsii Gastrodiscus ægyptiacus Fasciola hepatica Fasciola magna Dicrocœlium dendriticum Schistosoma indicum Probstmayria vivipara Dracunculus medinensis Filaria irritans Filaria hæmorrhagica Filaria conjunctivæ Filaria cordicola Filaria herpetica Microfilaria sanguinis equi Setaria equina Setaria labiato-papillosa Thelazia lacrymalis Onchocerca reticulata Onchocerca cervicalis Spiroptera megastoma Spiroptera microstoma Gongylonema scutatum Dispharagus reticulatus Trichinella spiralis Eustrongylus visceralis . Dictyocaulus viviparus Dictyocaulus arnîieldi Trichostrongylus axei Strongylus equinus Strongylus edentatus Strongylus vulgaris Cylicostomum tetracanthum Cylicostomum labratum Cylicostomum labiatum Cylicostomum coronatum Cylicostomum bicoronatum : Cylicostomum poculatum Cylicostomum calicatum | Cylicostomum alveatum I Cylicostomum catinatum Cylicostomum nassatum Cylicostomum radiatum ; Cylicostomum elongatum ! Cylicostomum auriculatum Œsophagodontus robustus Ascaris equi Oxyuris curvula ; Oxyuris mastigodes Limnatis nilotica Dermanyssus gallinæ Argas reîlexus (?) Ornithodoros savignyi Ornithodoros turicata Ornithodoros megnini Ixodes ricinus Ixodes ricinus var. ovatus Ixodes pilosus Ixodes canisuga Hyalomma ægyptium Hyalomma ægyptium var. impres sum Hyalomma monstrosum Amblyomma cayennense Amblyomma triguttatum Amblyomma moreliæ Amblyomma versicolor Hæmaphysalis leachi Hæmaphysalis leporis Hæmaphysalis punctata Hæmaphysalis flava Hæmaphysalis bispinosa Hæmaphysalis neumanni Dermacentor reticulatus Dermacentor electus Dermacentor andersoni Dermacentor nigrolineatus Dermacentor nitens Dermacentor salmoni Dermacentor variabilis Dermacentor modestus Boophilus annulatus var. caudatus Boophilus decoloratus Margaropus phthirioides Rhipicephalus sanguineus Rhipicephalus capensis Rhipicephalus simus Rhipicephalus evertsi Rhipicephalus appendiculatus Rhipicephalus kochi Rhipicephalus tricuspis Rhipicephalus duttoni Rhipicephalus supertritus Rhipicephalus lunulatus Rhipicephalus attenuatus Rhipicephalus gladiger Rhipicentor bicornis Microtrombidium méridionale Tarsonemus sauli Sarcoptes scabiei var. capræ Sarcoptes scabiei var. equi Sarcoptes scabiei var. cuniculi Psoroptes communis var. equi Chorioptes symbiotes var. equi Demodex folliculorum var. equi Linguatula serrata Podurhippus pityriasicus Hæmatopinus asini Trichodectes parumpilosus Trichodectes pilosus Conorhkius sanguisugus Aphis sp. Pulex irritans Vermipsylla alacurt Dermatophilus penetrans Echidnophaga gallinacea Tersesthes torrens Melusina columbaczensis Melusina cinerea Melusina maculata Melusina venusta Melusina albimana Melusina rubrithorax Melusina scutistriata Melusina pernigra Melusina perflava Melusina orbitalis Melusina paraguayensis Melusina infuscata Melusina subnigra Melusina distincta Melusina auristriata Melusina subpallida Melusina flavopubescens Melusina pruinosa Melusina minuscula Chrysops cæcutiens Chrysops distinctipennis Chrysops stigmaticalis Chrysops vittatus Pangonia zonata Pangonia beckeri Pangonia rüppellii Pangonia distincta Tabanus autumnalis Tabanus biguttatus Tabanus pluto Tabanus morsitans Tabanus ditæniatus Tabanus tomentosus Tabanus nemoralis Hæmatopota pluvialis Hæmatopota mactans Hæmatopota lacessens Hippocentrum versicolor Gastrophilus equi Gastrophilus inermis Gastrophilus pecorum Gastrophilus hæmorrhoidalis Gastrophilus nasalis Glossina palpalis Glossina brevipalpis Glossina longipalpis Glossina pallidipes Glossina morsitans Glossina longipennis Glossina tachinoides Glossina pallicera Stomoxys calcitrans Stomoxys nigra Stomoxys bouffardi Lyperosia exigua Philæmatomyia insignis Hypoderma bovis Hypoderma equi Rhinœstrus purpureus Hippobosca equina Hippobosca camelina Hippobosca maculata Hippobosca rufipes Eq uus asinus. Parasites végétaux. Trichophyton verrucosum Parasites animaux Heteromita piriformis Heteromita rotunda Trypanosoma brucei Trypanosoma equiperdum Trypanosoma congolense Trypanosoma angolense (cazalboui) Anaplasma marginale Echinococcus polymorphus Fasciola hepatica Dicrocœlium dendriticum Schistosoma indicum Probstmayria vivipara Filaria irritans Filaria hæmorrhagica Filaria conjunctivæ Filaria cordicola Setaria equina Spiroptera megastoma Spiroptera microstoma Dictyocaulus viviparus Dictyocaulus arnfieldi Trichostrongylus axei Strongylus vulgaris Triodontophorus minor Triodontophorus serratus Oxyuris curvula Oxyuris mastigodes Ornithodoros megnini Ixodes pilosus Hyalomma ægyptium Hyalomma ægyptium var. impres- sum Rhipicephalus pulchellus Rhipicephalus evertsi Sarcoptes scabiei var. equi Psoroptes communis var. equi Hæmatopinus asini Trichodectes pilosus Dermatophilus penetrans Melusina maculata Gastrophilus equi Gastrophilus flavipes Glossina brevipalpis Glossina longipalpis Glossina pallidipes Glossina morsitans Glossina longipennis Glossina tachinoides Philæmatomyia insignis Equus asino-caballus. Parasites végétaux. Cryptococcus farciminosus Sporotrichum (Rhinocladium) beur- manni Parasite du Bursattee-Leeches Parasites animaux. Trypanosoma evansi Trypanosoma brucei Trypanosoma angolense (cazalboui) Trypanosoma hippicum Anoplocephala magna Gastrodiscus ægyptiacus Gastrodiscus secundus Setaria equina Spiroptera microstoma Œsophagodontus robustus Gyalocephalus capitatus Oxyuris curvula Oxyuris mastigodes Limnatis nilotica Ixodes pilosus Hyalomma ægyptium Hyalomma ægyptium var. impres sum Boophilus decoloratus Rhipicephalus evertsi Rhipicephalus appendiculatus Sarcoptes scabiei var. equi Linguatula serrata Dermatophilus penetrans Melusina maculata Gastrophilus equi Glossina brevipalpis Glossina longipalpis Glossina pallidipes Glossina morsitans Glossina longipennis Glossina tachinoides ; Stomoxys calcitrans Stomoxys nigra Lyperosia exigua Bos taurus. Parasites végétaux. Rhizomucor parasiticus Saccharomyces guttulatus Endomyces albicans Cryptococcus tokishigei Cryptococcus hominis Trichophyton verrucosum Trichophyton depilans Aspergillus fumigatus Discomyces bovis Discomyces israeli Discomyces farcinicus Discomyces holmesi Discomyces valvulas destruens bovis Monilia bovis Parasite du Bursattee-Leeches Parasites animaux. Amœba bovis Chlamydophrys stercorea Mastigamœba bovis Cercomonas rhizoidea Oicomonas communis Oicomonas minima Sphæromonas communis Sphæromonas minima Sphæromonas maxima Piromonas communis Piromonas minima Piromonas maxima Trichomonas utero-vaginalis vitulæ Trypanosoma evansi Trypanosoma brucei Trypanosoma theileri Trypanosoma lingardi (himalay- anum) Trypanosoma indicum Trypanosoma muktesari Trypanosoma transvaaliense Trypanosoma jinjaense Trypanosoma franki Trypanosoma americanuni Trypanosoma dimorphon Trypanosoma congolense Trypanosoma nanum Trypanosoma vivax Trypanosoma angolense (cazalboui) Trypanosoma pecaudi Trypanosoma ingens Trypanosoma togolense 273 Trypanosoma pecorum Trypanosoma uniforme Trypanosoma annamense Trypanosoma montgomeryi Babesia bigemina Babesia hudsonia Theileria bovis Theileria parva Theileria mutans Theileria (?) argentina Nuttallia tropica Anaplasma marginale Plasmodium bovis Spirochæta theileri Spirochæta vaccinæ Peridinium tabulatum Amphidinium lacustre Eimeria zürni Hæmogregarina bovis Sarcocystis hirsuta Bütschlia parva Bütschlia neglecta Bütschlia lanceolata Isotricha prostoma Isotricha intestinalis Dasytricha ruminantium Ophryoscolex inermis Ophryoscolex caudatus Ophryoscolex cattaneoi Ophryoscolex purkinjei Entodinium bursa Entodinium caudatum Entodinium dentatum Entodinium rostratum Entodinium minimum Diplodinium maggii Diplodinium bursa Diplodinium caudatum Diplodinium mammosum Diplodinium dentatuin Diplodinium rostratum Diplodinium ecaudatum Moniezia planissima Moniezia benedeni Moniezia expansa Moniezia alba Thysanosoma giardi Cysticercus tenuicollis Cysticercus bovis Cœnurus cerebralis Echinococcus polymorphus Echinococcus multilocularis Fischœderius elongatus Fischœderius cobboldii Fischœderius siamensis Carmyerius (Carmyerius) gregarius Carmyerius (Gastrothyiacias) spa- tiosus Carmyerius (Gastrothylacides) man cupatus Cotylophoron cotylophorum Paramphistomum cervi Paramphistomum calicophorum Paramphistomum scoliocœlium Paramphistomum tuberculatum Stephanopharynx compactus Homalogaster poirieri (?) Homalogaster philippinensis (?) Fasciola hepatica Fasciola gigantica Fasciola magna Dicrocœlium dendriticum Dicrocœlium hospes Eurytrema pancreaticum Eurytrema cœlomaticum Schistosoma bovis Schistosoma bomiordi Gnathostoma hispidum Dracunculus medinensis Setaria equina Setaria labiato-papillosa Thelazia rhodesi Thelazia gulosa Thelazia alfortensis Onchocerca armillata Onchocerca gibsoni Onchocerca (?) lienalis Onchocerca gutturosa Gongylonema scutatum Trichuris affinis Trichinella spiralis Eustrongylus visceralis Hæmonchus contortus Dictyocaulus viviparus Trichostrongylus retortæformis Trichostrongylus axei Ostertagia ostertagi Cooperia punctata Cooperia oncophora Cooperia pectinata Nematodirus digitatus Strongylus pulmonaris Strongylus harkeri Œsophagostomum columbianum Œsophagostomum radiatum Œsophagostomum biramosum Bunostomum phlebotomum Gaigeria pachyscelis Syngamus laryngeus Ascaris vitulorum Limnatis nilotica Dermanyssus gallinæ Dermanyssus hirundinis Raillietia auris Ornithodoros savignyi Ornithodoros turicata Ornithodoros megnini Ixodes ricinus Ixodes ricinus var. scapularis Ixodes ricinus var. ovatus Ixodes hexagonus Ixodes pilosus Ixodes holocyclus Ixodes rasus Aponomma trimaculatum Hyalomma ægyptium Hyalomma ægyptium var. impressum Hyalomma syriacum Amblyomma americanum Amblyomma variegatum Amblyomma cayennense Amblyomma hebræum Amblyomma maculatum Amblyomma marmoreum Amblyomma triguttatum Amblyomma eburneum Amblyomma splendidum Amblyomma gemma Amblyomma lepidum Hæmaphysalis leachi Hæmaphysalis concinna var. lon- gicornis Hæmaphysalis punctata Hæmaphysalis flava Hæmaphysalis spinigera Hæmaphysalis bispinosa Hæmaphysalis neumanni Hæmaphysalis parmata Dermacentor reticulatus Dermacentor electus Dermacentor occidentalis Dermacentor andersoni Dermacentor salmoni Dermacentor variabilis Dermacentor variegatus Boophilus annulatus Boophilus annulatus var. argentinus Boophilus annulatus var. calcaratus Boophilus annulatus var. microplus Boophilus decoloratus Margaropus phthirioides Rhipicephalus sanguineus Rhipicephalus capensis Rhipicephalus simus Rhipicephalus evertsi Rhipicephalus hæmaphysaloides Rhipicephalus appendiculatus Rhipicephalus oculatus Rhipicephalus nitens Rhipicephalus ziemanni Rhipicephalus kochi Rhipicephalus duttoni Rhipicephalus longus Rhipicephalus cuneatus Rhipicephalus glyphis (?) Microtrombidium méridionale Sarcoptes scabiei var. capræ Sarcoptes scabiei var. cuniculi Psoroptes communis var. bovis Chorioptes symbiotes var. bovis Demodex bovis Linguatula serrata Hæmatopinus eurysternus Linognathus vituli Solenopotes capillatus Trichodectes scalaris Aphis sp. Vermipsylla alacurt Dermatophilus penetrans Echidnophaga gallinacea Chironomus sp. Melusina columbaczensis Melusina maculata Pangonia zonata Pangonia beckeri Pangonia magrettii Pangonia neo-caledonica Tabanus autumnalis Tabanus thoracinus Tabanus par Tabanus fasciatus Tabanus africanus Tabanus biguttatus Tabanus quadriguttatus Tabanus secedens Tabanus ustus Tabanus gratus Tabanus ditæniatus Tabanus nemoralis Tabanus atratus Tabanus molestus Tabanus bovinus Hæmatopota pluvialis Hæmatopota denshamii Hæmatopota mactans Hæmatopota noxialis Glossina palpalis Glossina brevipalpis Glossina longipalpis Glossina pallidipes Glossina morsitans Glossina longipennis Glossina tachinoides Stomoxys calcitrans Stomoxys nigra Stomoxys bouffardi Lyperosia irritans Lyperosia exigua Lyperosia flavohirta Hæmatobia stimulans Hæmatobia sanguisugens Musca pattoni Philæmatomyia insignis Pristirhynchomyia lineata Hydrotæa meteorica Wohlfahrtia magnifica Pycnosoma megacephala Pycnosoma marginale Pycnosoma sp. Hypoderma lineata Hypoderma bovis Dermatobia cyaniventris Hippobosca equina Hippobosca maculata Hippobosca rufipes Buffelus indicus. Parasites animaux. Monas pyophila (?) Trypanosoma evansi Trypanosoma brucei Sarcocystis bubali Sarcocystis hirsuta Sarcocystis siamensis Paramphistomum epiclitum Paramphistomum fraternum Paramphistomum scoliocœlium Fasciola hepatica Fasciola gigantica Eurytrema pancreaticum Filaria blini Setaria equina Thelazia rhodesi Onchocerca armillata Amblyomma testudinarium Hæmaphysalis cornigera Hæmatopinus tuberculatus Glossina brevipalpis Glossina longipalpis Glossina pallidipes Glossina morsitans Glossina longipennis Glossina tachinoides Stomoxys nigra Lyperosia exigua Bibos indicus. Parasites animaux. Trypanosoma angolense (cazalboui) Gastrothylax compressus Gastrothylax crumenifer Cotylophoron cotylophorum Paramphistomum epiclitum Paramphistomum (Orthocœlium)di- cranocœlium Paramphistomum (Bothriophoron) bothriophoron Paramphistomum(Cauliorchis) cau- liorchis Paramphistomum (Cauliorchis) cras- sum Paramphistomum (Cauliorchis?) pa- pillosum Paramphistomum indicum Paramphistomum siamense Paramphistomum parvipapillatum Paramphistomum explanatum Homalogaster poirieri (?) Schistosoma bomfordi Schistosoma spindale Onchocerca armillata Gongylonema scutatum Gongylonema verrucosum Trichuris discolor Nematodirus digitatus Agriostomum vryburgi Bunostomum phlebotomum Elephas indicus. Parasites végétaux. Discornyces bovis Parasites animaux. Trypanosoma evansi Pseudodiscus (Hawkesius) hawkesii Pseudodiscus ornatus Pfenderius papillatus Fasciolopsis jaksoni Strongy!us(?) sipunculiformis Bathmostomum sangeri Grammocephalus clathratus Ascaris lonchoptera Amblyomma elephantinum Hæmatomyzus elephantis Hæmatomyzus elephantis var. su- matranus Hæmatomyzus paradoxus Cobboldia elephantis Elephas africanus. Parasites végétaux. Discornyces bovis Parasites animaux. Trypanosoma elephantis Strongylus(?) rectus Amblyomma tholloni Dermacentor circumguttatus Rhipicephalus dux (?) Pharyngobolus africanus Cobboldia loxodontis Neocuterebra squamosa Camelus bactrianus. Parasites animaux. Trypanosoma evansi Leishmania furunculosa(?) Sarcocystis cameli Bütschlia parva Bütschlia neglecta Bütschlia lanceolata Isotricha prostoma Isotricha intestinalis Dasytricha runiinantium Ophryoscolex inermis Ophryoscolex caudatus Ophryoscolex cattaneoi Ophryoscolex purkinjei Entodinium bursa Entodinium caudatum Entodinium dentatum Entodinium rostratum Entodinium minimum Diplodinium maggii Diplodinium bursa Diplodinium caudatum Diplodinium mammosum Diplodinium dentatum Diplodinium rostratum Diplodinium ecaudatuin Fasciola hepatica Thelazia leesei Limnatis nilotica Ornithodoros savignyi Ornithodoros tholosani Hyalomma ægyptium Sarcoptes scabiei var. dromedarii Hæmatopinus tuberculatus Vermipsylla alacurt Pangonia zonata Pangonia beckeri Pangonia magrettii Pangonia distincta Tabanus africanus Tabanus morsitans Tabanus camelarius Tabanus mordax Tabanus leucostomus Glossina longipennis Stomoxys nigra Lyperosia exigua Cephalomyia maculata Hippobosca camelina Hippobosca maculata Camelus dromedarius. Parasites animaux. Trypanosoma evansi var. mborii Trypanosoma congolense Trypanosoma soudanense Stilesia vittata Cœnurus cerebralis Filaria evansi Onchocerca fasciata Trichuris echinophylla Hæmonchus longistipes Trichostrongylus probolurus Trichostrongylus vitrinus Trichostrongylus instabilis Ostertagia mentulata Nematodirus spathiger Hyalomma ægyptium Hyalomma ægyptium var. drome- darii Hyalomma syriacum Amblyomma variegatum Rhipicephalus sanguineus Sarcoptes seabiei var. dromedarii Hæmatopinus tuberculatus Pangonia magrettii Tabanus biguttatus Tabanus ditæniatus Tabanus tomentosus Tabanus nemoralis Tabanus nigritus Cephalomyia maculata Hippobosca equina Hippobosca camelina Hippobosca maculata Hippobosca dromedarina Ergates faber Tarandus rangifer. Parasites animaux. Isotricha prostoma Isotricha intestinalis Dasytricha ruminantium Ophryoscolex inermis Ophryoscolex caudatus Ophryoscolex cattaneoi Ophryoscolex purkinjei Entodinium bursa Entodinium caudatum Entodinium dentatum Entodinium rostratum Entodinium minimum Diplodinium maggii Diplodinium bursa Diplodinium caudatum Diplodinium mammosum Diplodinium dentatum Diplodinium rostratum Diplodinium ecaudatum Cysticercus tarandi Cephenomyia trompe Œdemagena tarandi Ovis aries. Parasites végétaux. Saccharomyces guttulatus Discomyces bovis Parasites animaux. Amœba parasitica Cercomonas rhizoidea Oicomonas communis Oicomonas minima Sphæromonas communis Sphæromonas minima Sphæromonas maxima Piromonas communis Piromonas minima Piromonas maxima Lamblia intestinalis Trypanosoma brucei Trypanosoma dimorphon Trypanosoma congolense Trypanosoma vivax Babesia ovis Spirochæta ovina Eimeria faurei Eimeria arloingi Sarcocystis tenella Gastrocystis gilruthi Bütschlia parva Bütschlia neglecta Bütschlia lanceolata Isotricha prostoma Isotricha intestinalis Dasytricha ruminantium Ophryoscolex inermis Ophryoscolex caudatus Ophryoscolex cattaneoi Ophryoscolex purkinjei Entodinium bursa Entodinium caudatum Entodirittrm dentatum Entodinium rostratum Entodinium minimum Diplodinium maggii Diplodinium bursa Diplodinium caudatum Diplodinium mammosum Diplodinium dentatum Diplodinium rostratum Diplodinium ecaudatum Moniezia planissima Moniezia benedeni Moniezia neumanni Moniezia expansa Moniezia trigonophora Moniezia alba Moniezia vogti Moniezia nullicollis Thysanosoma actinioides Avitellina centripunctata Stilesia globipunctata Stilesia hepatica Cysticercus cellulosæ Cysticercus tenuicollis Cœnurus cerebralis Echinococcus polymorphus Echinococcus multilocularis Cotylophoron indicum Paramphistomum epiclitum Paramphistomum calicophorum (?) Fasciola hepatica Fasciola gigantica Fasciola magna Dicrocœlium dendriticum Schistosoma bovis Gongylonema scutatum Gongylonema verrucosum Trichuris affinis Trichosoma papillosum Trichinella spiralis Metastrongylus apri Hæmonchus contortus Dictyocaulus filaria Synthetocaulus rufescens Synthetocaulus capillaris Synthetocaulus unciphorus Synthetocaulus ocreatus Trichostrongylus retortæformis Trichostrongylus probolurus Trichostrongylus vitrinus Trichostrongylus axei Trichostrongylus capricola Trichostrongylus instabilis Ostertagia ostertagi Ostertagia trifurcata Ostertagia marshalli Ostertagia occidentalis Ostertagia circumcincta Ostertagia trifida Cooperia curticei Nematodirus filicollis Strongylus pulmonaris Œsophagostomum venulosum Œsophagostomum columbianum Chabertia ovina Bunostomum trigonocephalum Gaigeria pachyscelis Ascaris ovis Ornithodoros moubata Ornithodoros tholosani Ornithodoros lahorensis Ixodes ricinus Ixodes ricinus var. scapularis Ixodes hexagonus Ixodes hexagonus var. cookei Ixodes pilosus Ixodes holocyclus Ixodes rubicundus Ixodes rubicundus var. limbatus Ixodes ugandanus Ixodes canisuga Hyalomma ægyptium Hyalomma ægyptium var. impreS' sum Amblyomma variegatum Amblyomma hebræum Amblyomma eburneum Hæmaphysalis concinna Hæmaphysalis punctata Hæmaphysalis flava Hæmaphysalis parmata Dermacentor reticulatus Dermacentor venustus Boophilus annulatus Boophilus annulatus var. calcaratus Rhipicephalus sanguineus Rhipicephalus simus Rhipicephalus bursa Rhipicephalus evertsi Rhipicephalus hæmaphysaloides Rhipicephalus appendiculatus Microtrombidium méridionale Sarcoptes scabiei var. capræ Sarcoptes scabiei var. ovis Sarcoptes scabiei var. cuniculi Psoroptes communis var. ovis Chorioptes symbiotes var. ovis Demodex folliculorum var. ovis Linguatula serrata Hæmatopinus ovillus Linognathus pedalis Linognathus aîricanus Trichodectes sphærocephalus Aphis sp. Vermipsylla alacurt Dermatophilus penetrans Melusina columbaczensis Melusina maculata Hæmatopota taciturna Glossina palpalis Glossina brevipalpis Glossina longipalpis Glossina pallidipes Glossina morsitans Glossina longipennis Glossina tachinoides Wohlfahrtia magnifica Calliphora oceanica Calliphora villosa Calliphora dux Œstrus ovis Melophagus ovinus Capra hircus. Parasites végétaux. Discomyces capræ Parasites animaux. Cercomonas rhizoïdea Oicomonas communis Oicomonas minima Sphæromonas communis Sphæromonas minima Sphæromonas maxima Piromonas communis Piromonas minima Piromonas maxima Trypanosoma brucei Trypanosoma dimorphon Trypanosoma congolense Trypanosoma vivax Trypanosoma angolense (cazalboui) Trypanosoma capræ Eimeria arloingi Gastrocystis gilruthi Bütschlia parva Bütschlia neglecta Bütschlia lanceolata Isotricha prostoma Isotricha intestinalis Ophryoscolex inermis Ophryoscolex caudatus Ophryoscolex cattaneoi Ophryoscolex purkinjei Entodinium bursa Entodinium caudatum Entodinium dentatum Entodinium rostratum Entodinium minimum Diplodinium maggii Diplodinium bursa Diplodinium caudatum Diplodinium mammosum Diplodinium dentatum Diplodinium rostratum Diplodinium ecaudatum Moniezia expansa Stilesia globipunctata Stilesia hepatica Cœnurus cerebralis Cœnurus serialis Echinococcus polymorphus Fasciola hepatica Fasciola gigantica Dicrocœlium dendriticum Onchocerca (?) capræ Gongylonema scutatum Trichuris affinis Hæmonchus contortus Dictyocaulus filaria Synthetocaulus rufescens Synthetocaulus capillaris Synthetocaulus unciphorus Trichostrongylus retortæformis Trichostrongylus axei Trichostrongylus capricola Ostertagia ostertagi Ostertagia triturcata Œsophagostomum venulosum Chabertia ovina Bunostomum trigonocephalum Syngamus nasicola Dermanyssus gallinæ Ornithodoros savignyi Ornithodoros moubata Ixodes ricinus Ixodes pilosus Ixodes rubicundus Ixodes rubicundus var. limbatus Hyalomma ægyptium Hyalomma ægyptium var. impres sum Amblyomma variegatum Amblyomma hebræum Amblyomma marmoreum Amblyomma eburneum Amblyomma lepidum Hæmaphysalis punctata Hæmaphysalis flava Hæmaphysalis bispinosa Hæmaphysalis parmata Dermacentor reticulatus Boophilus decoloratus Rhipicephalus capensis Rhipicephalus simus Rhipicephalus pulchellus Rhipicephalus bursa Rhipicephalus hæmaphysaloides Rhipicephalus appendiculatus Rhipicephalus gladiger Rhipicentor bicornis Sarcoptes scabiei var. capræ Psoroptes communis var. capræ Chorioptes symbiotes var. capræ Demodex folliculorum var. capræ Linguatula serrata Linognathus stenopsis Trichodectes capræ Trichodectes climax Trichodectes crassipes Trichodectes limbatus Vermipsylla alacurt Dermatophilus penetrans Melusina columbaczensis Melusina maculata Hæmatopota taciturna Glossina palpalis Glossina brevipalpis Glossina longipalpis Glossina pallidipes Glossina morsitans Glossina longipennis Glossina tachinoides Cordylobia anthropophaga Œstrus ovis Sus scrofa domesticus. Parasites végétaux. Saccharomyces guttulatus Endomyces albicans Cryptococcus granulomatogenes Discomyces bovis Parasites animaux, Amœba intestinalis Trichomonas suis Trypanosoma brucei Trypanosoma dimorphon Trypanosoma suis Anaplasma marginale Spirochæta doddi Eimeria jalina Sarcocystis miescheriana Balantidium coli Thysanosoma giardi Cysticercus cellulosæ Cysticercus tenuicollis Echinococcus polymorphus Echinococcus multilocularis Fasciola hepatica Fasciolopsis buski Paragonimus westermani Agamodistomum suis Clonorchis endemicus Dicrocœlium dendriticum Gnathostoma hispidum Filaria bauchei Setaria bernardi Spiroptera strongylina Physocephalus sexalatus Simondsia paradoxa Trichuris crenata Trichuris affinis (?) Trichosoma papillosum Trichinella spiralis Eust'rongylus visceralis Metastrongylus apri Metastrongylus brevivaginatus Strongylus rubidus Œsophagostomum dentatum Crassisoma urosubulatum Characostomum longemucronatum Stephanurus dentatus Ascaris suum Gigantorhynchus hirudinaceus Ornithodoros savignyi Ornithodoros moubata Ornithodoros turicata Ixodes pilosus Amblyomma hebræum Hæmaphysalis parmata Dermacentor reticulatus Sarcoptes scabiei var. parvulus Sarcoptes scabiei var. suis Demodex phylloides Linguatula serrata Hæmatopinus suis Hæmatopinus suis adventicius Dermatophilus penetrans Melusina columbaczensis Glossina palpalis Glossina brevipalpis Glossina longipalpis Glossina pallidipes Glossina morsitans Glossina longipennis Glossina tachinoides Wohlfahrtia magnifica Canis familiaris. Parasites végétaux. Cryptococcus hominis Trichophyton caninum Trichophyton faviforme Microsporum canis Oospora canina Eidamella spinosa Discomyces israeli Sporotrichum (Rhinocladium) beur- manni Parasites animaux. Cercomonas canis Lamblia intestinalis Trypanosoma evansi Trypanosoma brucei Trypanosoma dimorphon Trypanosoma pecaudi Babesia canis Nuttallia tropica Leishmania furunculosa Leishmania infantum Toxoplasma canis Plasmodium canis Spirochæta aboriginalis (?) Spirochæta regaudi Spirochæta laverani Diplospora bigemina Hæmogregarina canis Proteocephalus punicus Mesocestoides lineatus Mesocestoides litteratus Dipylidium caninum Dipylidium sexcoronatum Cysticercus cellulosæ Tænia pisiformis (T. serrata) Tænia hydatigena (T. rharginata) Tænia krabbei Tænia brachysoma Tænia brauni Tænia balaniceps Multiceps multiceps (T. cœnurus) Multiceps serialis Echinococcus granulosus Echinococcus polymorphus Echinococcus multilocularis Dithyridium elongatum Diphyllobothrium latum Diphyllobothrium cordatum Diphyllobothrium fuscum Diphyllobothrium serratum Diphyllobothrium decipiens Paragonimus westermani Opisthorchis felineus Opisthorchis noverca Clonorchis endemicus Metorchis albidus (?) Pseudamphistomum truncatum Ascocotyle minuta Ascocotyle italica Heterophyes heterophyes Heterophyes æqualis Heterophyes dispar Isthmiophora melis (?) Echinochasmus perfoliatus Dicrocœlium dendriticum Schistosoma japonicum Hemistomum alatum Rhabditis pellio Dracunculus medinensis Filaria acutiuscula Filaria osleri Filaria recondita Filaria grassii Filaria (?) oculi canini Microfilaria ochmanni Dirofilaria immitis Dirofilaria repens Thelazia callipæda Spiroptera sanguinolenta Trichuris depressiuscula Trichosoma plica Trichinella spiralis Eustrongylus visceralis Cloacina octodactyla Hæmostrongylus vasorum Ankylostoma caninum Ankylostoma braziliense Uncinaria stenocephala Belascaris marginata Toxascaris limbata Oxyuris compar (?) Gigantorhynchus moniliformis Echinorhynchus grassii Limnatis nilotica Dermanyssus gallinæ Ornithodoros savignyi Ornithodoros moubata Ixodes ricinus var. scapularis Ixodes ricinus var. ovatus Ixodes hexagonus Ixodes hexagonus var. cookei Ixodes pilosus Ixodes pilosus var. howardi Ixodes holocyclus Ixodes australiens^ Ixodes rasus Ixodes canisuga Aponomma exornatum Aponomma inornatum Hyalomma ægyptium Hyalomma ægyptium var. impres' sum Amblyomma cayennense Amblyomma maculatum Amblyomma striatum Amblyomma triguttatum Amblyomma calcaratum Hæmaphysalis leachi Hæmaphysalis concinna var. hi rudo Hæmaphysalis flava Hæmaphysalis neumanni Hæmaphysalis campanulata Dermacentor reticulatus Dermacentor electus Dermacentor occidentalis Dermacentor andersoni Dermacentor variabilis Boophilus annulatus Boophilus decoloratus Rhipicephalus sanguineus Rhipicephalus capensis Rhipicephalus simus Rhipicephalus bursa Rhipicephalus evertsi Rhipicephalus appendiculatus Trombidium striaticeps Metatrombium poriceps Microtrombidium méridionale Tydeus molestus Tarsonemus sauli Sarcoptes scabiei var. canis Sarcoptes scabiei var. ovis Otodectes cynotis Demodex folliculorum var. canis Linguatula serrata Porocephalus armillatus Porocephalus moniliformis Achorutes viaticus Linognathus piliferus Trichodectes latus Pulex irritans Ctenocephalus canis Ctenocephalus felis Dermatophilus penetrans Echidnophaga gallinacea Echidnophaga larina Pyretophorus superpictus Melusina venusta Melusina pertinax Tabanus gratus Gastrophilus equi Glossina palpalis Glossina brevipalpis Glossina longipalpis Glossina pallidipes Glossina morsitans Glossina longipennis Glossina tachinoides Stomoxys nigra Lyperosia exigua Wohlfahrtia magnifica Cordylobia anthropophaga Cuterebra emasculator Dermatobia cyaniventris Hippobosca equina Hippobosca capensis Felis domestica. Parasites végétaux. Mortierella sp. Trichophyton felineum Microsporum felineum Parasites animaux. Amœba enterica Amœba intestinalis Lamblia intestinalis Schizotrypanum cruzi Diplospora bigemina Hæmogregarina felis Mesocestoides lineatus Dipylidium caninum Dipylidium trinchesei Dipylidium pasqualei Dipylidium chyzeri Dipylidium ôrleyi Cysticercus cellulosæ Tænia tæniæformis (T. crassicollis) Echinococcus granulatus Echinococcus polymorphus Dithyridium elongaturn Diphyllobothrium latum Paragonimus westermani Opisthorchis felineus Opisthorchis pseudo-felineus Clonorchis endemicus Metorchis complexus Metorchis albidus Pseudamphistomum truncatum Ascocotyle minuta Heterophyes heterophyes Heterophyes æqualis Heterophyes dispar Isthmiophora melis Echinochasmus perfoliatus Schistosoma japonicum Gnathostoma spinigerum Filaria gastrophila Trichuris serrata Trichuris campanula Trichosoma aerophilum Trichosoma felis cati Trichosoma lineare Trichinella spiralis Synthetocaulus abstrusus Ankylostoma caninum Ankylostoma braziliense Ollulanus tricuspis Physaloptera gemina Chlamydonema felineum Belascaris mystax Oxyuris compar Corynosoma strumosum Dermanyssus gallinæ Ixodes ricinus Ixodes hexagonus var. cookei Ixodes pilosus Ixodes pilosus var. howardi Hyalomma ægyptium Hæmaphysalis leachi Rhipicephalus sanguineus Microtrombidium méridionale Tydeus molestus Notoedres cati Otodectes cynotis Demodex folliculorum var. cati Linguatula serrata Trichodectes subrostratus Lamus megistus Pulex irritans Ctenocephalus canis Ctenocephalus felis Dermatophilus penetrans Echidnophaga gallinacea Echidnophaga bradyta Cordylobia anthropophaga Cavia porcellus. Parasites végétaux. Cryptococcus niger Parasites animaux. Amœba coli Amœba spinosa Amœba cobayæ Trichomonas caviæ Eimeria stiedæ Eimeria jalina Trichinella spiralis Gyropus ovalis Gliricola gracilis Menopon extraneum Menopon jenningsi Lepus cuniculus domesticus. Parasites végétaux. Rhizopus cohni Saccharomyces guttulatus Parasites animaux. Amœba enterica Chlamydophrys stercorea Lamblia cuniculi Trypanosoma cuniculi Toxoplasma cuniculi Spirochæta raillieti Eimeria stiedæ Cittotænia ctenoides Cysticercus pisiformis Cœnurus serialis Echinococcus polymorphus Fasciola hepatica Dicrocœlium dendriticum Trichuris unguiculata Trichosoma papillosum Trichinella spiralis Synthetocaulus commutatus Synthetocaulus rufescens Graphidium strigosum Trichostrongylus retortæformis Oxyuris ambigua Echinorhynchus cuniculi Dermanyssus gallinæ Liponyssus sufîuscus Ixodes hexagonus Ixodes dentatus Aponomma inornatum Microtrombidium méridionale Cheyletiella parasitivorax Notoedres cuniculi Sarcoptes scabiei var. cuniculi Psoroptes communis var. cuniculi Chorioptes symbiotes var. cuniculi Listrophorus gibbus Demodex folliculorum var. cuniculi Linguatula serrata Hæmodipsus ventricosus Pulex irritans Ctenocephalus felis Spilopsyllus cuniculi Gallus gallinaceus Parasites végétaux Mucor racemosus Rhizopus nigricans Endoinyces albicans Cryptococcus infiltrans Achorion gallinæ Aspergillus herbariorum Aspergillus fumigatus Pénicillium crustaceum Parasites animaux. Cercomonas gallinarum Trichomonas eberthi Trichomonas gallinarum Chilomastix gallinarum Trichomastix gallinarum Trypanosoma calmettei Leucocytozoon caulleryi Leucocytozoon sabrasezi Spirochæta gallinarum Spirochæta nicollei Spirochæta neveuxi Spirochæta granulosa penetrans Eimeria avium Sarcocystis horvathi Davainea cesticillus Davainea tetragona Davainea longicollis Davainea proglottina Davainea proglottina var. dubla- nensis Davainea echinobothrida Davainea paraechinobothrida Davainea mutabilis Davainea volzi Davainea varians Cotugnia digonopora Choanotænia infundibulum Amœbotænia sphenoides Hymenolepis villosa (?) Hymenolepis exilis Hymenolepis cantaniana Hymenolepis carioca Hymenolepis exigua Hymenolepis inermis Fimbriaria fasciolaris (?) Dithyridium variabile Bunodera linearis Echinostoma revolutum Echinostoma recurvatum Hypoderæum conoideum Philophthalmus gralli Prosthogonimus cuneatus Prosthogonimus pellucidus Prosthogonimus japonicus Clinostomum commutatum Microfilaria seguini Spiroptera pectinifera Spiroptera perforans Oxyspirura mansoni Oxyspirura parvorum Gongylonema ingluvicola Dispharagus spiralis Dispharagus nasutus Dispharagus laticeps Dispharagus hamulosus Trichosoma retusum Trichosoma caudinflatum Trichosoma collare Trichosoma dubium Trichosoma gallinum Trichosoma annulatum Trichostrongylus tenuis Syngamus trachealis Physaloptera truncata Heterakis perspicillum Heterakis lineata Dermoglyphus minor Dermoglyphus elongatus Epidermoptes bilobatus Rivoltasia bifurcata Geophilus sodalis Goniocotes abdominalis Goniocotes gigas Goniocotes hologaster Lipeurus heterographus Lipeurus caponis Goniodes burnetti Goniodes dissimilis Menopon biseriatum Menopon trigonocephalum Clinocoris lectularius Clinocoris columbarius Clinocoris inodorus Conorhinus sanguisugus Pulex irritans Ceratophyllus gallinæ Vermipsylla alacurt Dermatophilus penetrans Echidnophaga gallinacea Melusina meridionalis Tenebrio molitor Heterakis compressa Heterakis vesicularis Heterakis brasiliensis Heterakis difîerens Heterakis pusilla Heterakis granulosa Dermanyssus gallinæ Liponyssus bursa Lophoptes patavinus Argas persicus Argas reflexus Argas victoriensis Ornithodoros savignyi Ornithodoros moubata Ornithodoros tholosani Hyalomma ægyptium Hæmaphysalis wellingtoni Trombidium striaticeps Metatrombium poriceps Microtrombidium méridionale Syringophilus bipectinatus Tydeus molestus Cytoleichus nudus Laminosioptes cysticola Cnemidocoptes gallinæ Cnemidocoptes mutans Meleagris gallopavo domestica. Parasites végétaux. Endomyces albicans Aspergillus îumigatus Parasites animaux Amœba meleagridis Amœba enterica Amœba gallopavonis Amœba intestinalis Leucocytozoon smithi Eimeria avium Davainea cesticillus Davainea friedbergeri 292 Choanotænfa infundibulum Metroliasthes lucida Hymenolepis cantaniana Hymenolepis meleagris Hymenolepis musculosa Echinococcus polymorphus Monostoma attenuatuin Clinostomum commutatum Oxyspirura mansoni Syngamus trachealis Heterakis perspicillum Heterakis vesicularis Dermanyssus gallinæ Argas persicus Hæmaphysalis chordeilis Laminosioptes cysticola Cnemidocoptes mutans Freyana (Microspalax) chanayi Dermoglyphus minor Megninia cubitalis Lipeurus meleagridis Goniodes stylifer Menopon biseriatum Menopon stramineum Ceratophyllus gallinæ Echidnophaga gallinacea Melusina meridionalis Numida meleagris. Parasites animaux. Trypanosoma numidæ (?) Leucocytozoon numidæ Microfilaria numidæ Trichosoma retusum Heterakis perspicillum Heterakis vesicularis Syringophilus bipectinatus Tydeus molestus Dermoglyphus minor Dermoglyphus varians Goniocotes hologaster Goniocotes rectangulatus Lipeurus numidæ Lipeurus caponis Goniodes numidianus Menopon numidæ Numida ptilorhyncha. Parasites animaux Trypanosoma numidæ Hæmoproteus balfouri Leucocytozoon neavei Zschokkeella linstowi Davainea pintneri Pnrogynia lata Microfilaria numidæ Echinorhynchus tæniatus Phasianus colchicus. Parasites végétaux. Aspergillus fumigatus Parasites animaux. Leucocytozoon macleani Eimeria avium (?) Davainea friedbergeri Davainea echinobothrida Choanotænia infundibulum Hymenolepis phasianina Trichosoma caudinflatum Trichosoma delicatissimum Trichosoma strumosum Syngamus trachealis Heterakis columbæ Heterakis vesicularis Heterakis isolonche Dermanyssus gallinæ Ixodes tenuirostris Cytoleichus nudus Laminosioptes cysticola Goniocotes chrysocephalus Lipeurus caponis Goniodes colchicus Goniodes truncatus Menopon biseriatum Menopon productum Columba domestica. Parasites végétaux Mucor racemosus ! Aspergillus fumigatus Parasites animaux, Cercomonas hepatica Trichomonas columbæ Trypanosoma columbæ Hæmoproteus columbæ Proteosoma danilewskyi Eimeria pfeifferi Balantidium viride Bertiella delafondi Davainea crassula Davainea echinobothrida Hymenolepis columbæ Clinostomum commutatum (?) Filaria clava Filaria mazzantii Trichosoma columbæ Strongylus quadriradiatiK Heterakis columbæ Dermanyssus gallinæ Argas reflexus Ixodes caledonicus Syringophilus bipectinatus Sarcopterinus nidulans Cheyletiella heteropalpa Cnemidocoptes lævis Falculifer rostratus Falculifer cornutus Analges bifidus Megninia columbæ Pterophagus strictus Goniocotes compar Lipeurus columbæ Goniodes damicornis Goniodes minor Liotheum longicaudum Menopon giganteum Menopon longicephalum Menopon trigonocephalum Clinocoris columbarius Ceratophyllus columbæ Hectopsylla psittaci Culex pipiens Lynchia maura Lynchia capensis Ortholfersia spinifera Ornithomyia avicularia Ornithoctona nigricans var. colum- bæ Dermestes lardarius Tenebrio molitor Silpha sp. Nicrophorus sp. Pavo cristatus. Parasites animaux. Oxyspirura mansoni Syngamus trachealis Physaloptera bulbosa Heterakis vesicularis Heterakis hamulus Cheletoides uncinatus Goniocotes rectangulatus Goniodes falcicornis Goniodes parviceps Menopon phæostomum Anas boschas domestica. Parasites végétaux. Aspergillus fumigatus Parasites animaux. Cercomonas anatis Trichomonas eberthi Eimeria avium (?) Eimeria truncata Davainea anatina Hymenolepis collaris Hymenolepis gracilis Hymenolepis tenuirostris Hymenolepis megalops Hymenolepis coronula Hymenolepis anatina Hymenolepis venusta Hymenolepis parvula Hymenolepis sagitta Drepanidotænia lanceolata Echinocotyle rosseteri Diploposthe lævis Fimbriaria fasciolaris Typhlocœlum obovale Notocotyle triserialis Opisthorchis simulans Metorchis xanthosomus Echinostoma revolutum Hypoderæum conoideum Prosthogonimus anatinus Bilharziella polonica Strigea gracilis Filaria (?) anatis Dispharagus uncinatus Tropisurus fissispinus Trichosoma contortum Hystrichis tricolor Eustrongylides elegans Eustrongylides tubifex Eustrongylides papillosus Trichostrongylus tenuis Ascaris crassa Heterakis lineata Heterakis vesicularis Heterakis dispar Echinorhynchus sphærocephalus Echinorhynchus (?) longicollis Polymorphus minutus Filicollis anatis Protoclepsis tessellata Holothyrus coccinella Argas persicus Syringophilus bipectinatus Tydeus molestus Freyana (Eufreyana) anatina Megninia velata Philopterus icterodes Lipeurus heterographus Lipeurus anatis Menopon trigonocephalum Menopon obscurum Trinoton luridum Echidnophaga gallinacea Anser cinereus domesticus. Parasites végétaux. Aspergillus fumigatus Parasites animaux. Spirochæta anserina Spirochæta nicollei Eimeria truncata Hymenolepis collaris Hymenolepis gracilis Hymenolepis tenuirostris Hymenolepis fasciculata Drepanidotænia lanceolata Tænia conscripta Fimbriaria fasciolaris Monostoma mutabile Monostoma arcuatum Notocotyle triserialis Catatropis verrucosa Echinostoma revolutum Hypoderæum conoideum Dispharagus uncinatus Trichosoma anatis Eustrongylides papillosus Trichostrongylus tenuis Syngamus bronchialis Amidostomum anseris Heterakis vesicularis Heterakis dispar Polymorphus minutus Filicollis anatis Protoclepsis tessellata Holothyrus coccinella Sternostoma rhinolethrum Argas persicus Ixodes brunneus Cnemidocoptes prolificus Freyana (Eufreyana) anserina Philopterus icterodes Lipeurus anseris Lipeurus crassicornis Trinoton anseris Trinoton continuum Trinoton lituratum Trinoton luridum Wohlfahrtia magnifica Cygnus olor domesticus. Parasites végétaux. Aspergillus fumigatus Parasites animaux. Hynienolepis setigera Hymenolepis æquabilis Hynienolepis anatina Echinostoma revolutum Filaria (?) cygni Hystrichis pachycephalus Heterakis circumvallata Polymorphus minutus Filicol'is anatis Freyana (Eufreyana) anserina Philopterus cygni Ornithonomus cygni Ornithonomus goniopleurus Trinoton anseris Struthio camelus. Parasites animaux. Dermoglyphus pachycnemis Lipeurus quadrimaculatus Læmobothrium lichtensteini Hippobosca struthionis Hippobosca rufipes. Davainea struthionis Filaria spicularia Strongylus douglasi Argas persicus Pterolichus (Eupterolichus) bicau- datus Table alphabétique A abdominalis (Goniocotes) 185 aboriginalis (Spirochæta) 51 abstrusus (Synthetocaulus) 117 AGANTHOGÈPHALES 135 ACARIENS 140 A caropsis 159 Achorion 16, 253 Achorutes 179 Acremonium 28 actinioides (Thysanosoma) 70 acuminata (Spirochæta) 50 acutiuscula ( Kilaria) 105 ADÉLÉIDÉÉS 54 ægyptium (Hyalomma) 149 ægyptium var. dromedarii (Hy- alomma) 149 ægyptium var. impressum (Hy- alomma) 149 æquabilis (Hymenolepis) 76 æqualis (Heteropbyes) 95 aerophilum (Trichosoma) 113 affinis (Sarcophaga) 231 affinis (Trichuris) 113 africana (Limnatis) * 139 africanus (Linognathus) 182 africanus (Nyctotherus) 60 africanus (Pharyngobolus) 238 africanus (Tabanus) 217 africanus (Tæniarhynchus) 79 Agamodistomum 93 Agamofilaria 107 A gamomermis 112 A griostomum 122 akamushi (Trombidium) 156 alacurt (Vermipsylla) 199 alatum (Hemistomum) 102 alba (Moniezia) 69 albicans (Endomyces) 6 albidus (Metorchis) 94 albimana (Melusina) 212 albiscicans (Trichophyton) 12 albolineatus (Culex) 206 album (Trichophyton) 12 albus (Parendomyces) 6 alfortensis (Thelazia) 108 alienus (Garpoglyphus) 175 alpestris (Parachordodes) 135 alveatum (Gylicostomum) 127 ambigua (Oxyuris) 133 AMBLYCÈRES 186 Amblyomma 150 americanum (Amblyomma) 150 americanum (Trombidium) 156 americanum (Trypanosoma) 42 americanus (Necator) 125 AMIBIENS 30 Amidostomum 129 Amœba 30, 253 Amœbotœnia 74 amœna (Eulyes) 192 Amphidinium 52 AMPHISTOMIENS 85 ampulla (Paraisotricha) 60 Analges 170 ANALGÉSIDÈS 168 ANALGÉSINÉS 170 Anaplasma 48 anatina (Davainea) 72 anatina (Eufreyana) 169 anatina (Freyana) 169 anatina (Hymenolepis) 76 anatinus (Prosthogonimus) 98 anatis (Gercomonas) 36 anatis (Filaria?) 106 anatis (Filicollis) 137 anatis (Lipeurus) 185 anatis (Trichosoma) 113 andersoni (Dermacentor) 152 anginæ (Saccharomyces) 5 AN GIOSTOMIDÉS 103 angolense (Trypanosoma) 42 ANGUILLULIDÈS 103 Anguillulina 103 angulata (Pangonia) 215 Ankylostoma 123 ANKYLOSTOMÉÉS 122 annamense (Trypanosoma) 255 ANNÉLIDES 137 annulatum (Trichosoma) 114 annulatus (Boophilus) 152 annulatus var. argentinus (Boo- philus) 152 annulatus var. calcaratus (Boo- philus) 152 annulatus var. caudatus (Boo- pliilus) 152 annulatus var. microplus (Boo- philus) 152 annulipes (Mansonia) 207 Anopheles 203 ANOPHÉLINÉS 202 A noplocephala 67 ANOPLURES 180 anserina (Eufreyana) 169 an serin a (Freyana) 169 anserina (Spirochæta) 50 anseris (Amidostomum) 129 anseris (Lipeurus) 185 anseris (Trinoton) 189 ANTHOCORIDÉS 191 Anthocoris 191 Anthomyia 230 anthropophaga (Cordylobia) 234 APH1DÉS 195 Aphiochœta 222 Aphis 195 apiostomum (Œsophagostomurn) 121 Aponomma 149 appendiculatus (Blepharocodon) 57 appendiculatus (Rhipicephalus) 154 apri (Mctastrongylus) 116 APÏÉRYGOTES 179 aquaticus (Gordius) 134 ARACHNIDES 140 arbustorum (Eristalis) 221 arcuatum (Monostoma) 84 Argas 145 ARGASIDÉS " 145 argentina (Theileria?) 46 argentipes (Pblebotomus) 202 argyrotarsis (Gellia) 205 ARHYNCHOBDELLIDÉS 138 arloingi (Eimeria) 54 armillata (Onchocerca) 109 armillatus (Porocephalus) 176 arnfieldi (Dictyocaulus) 117 ARTHROPODES 140 ASCARIDES 131 Ascaris 131 ASCHIZIENS 221 A scocotyle 95 ASCOMYCÈTES 5 asiatica (Davainea) 72 asiatica (Prowazekia) 254 asiaticus (Bodo) 38, 254 ASILIDÉS 220 Asilus 220 asini (Ilæmatopinus) 181 ASPERGILLACÉES 17 Aspergillus 17 asteroides (Discomyces) 21 asteroides (Sporotrichum) 25 ASTIGMATES 162 atratus (Tabanus) 218 atripalpis (Hæmatobosca) 227 attenuatum (Monostoma) 84 attenuatus (Rhipicephalus) 154 A uchmeromyia 234 audouini (Microsporum) 14 aureus (Discomyces) 22 auriculatum (Gylicostomum) 127 auris (Raillietia) 145 auristriata (Melusina) 212 australiensis (Ixodes) 148 autumnalis (Tabanus) 216 avicularia (Ornithomyia) 247 A vitellina 70 AVITELLININÉS 70 avium (Eimeria) 54 axei (Trichostrongylus) 119 azurea (Galliphora) 234 B Babesia 45 balaniceps (Taenia) 78 balanitidis (Spirochæta) 50 Balantidium 60 balfouri (Hæmoproteus) 44 bancrofti (Pilaria) 106 barbæ (Aspergillus) 19 barbæ (Pénicillium) 19 barbirostris (Myzorhyncbus) 205 Bargellinia 17 Bathmostomum 125 bathycotyle (Paramphistomum) 87 bauchei (Pilaria) 255 baxteri (Sparganum) 83 Bdellolarynx 227 beckeri (Pangonia) 216 beigeli (Trichosporum) 23 Belascaris 131 benedeni (Moniezia) 69 berbera (Spirochæta) 51 bernardi (Setaria) 256 Bertiella 67 bertrami (Sarcocystis) 55 beurmanni (Rbinocladium) 25 beurmanni (Sporotrichum) 25 bezzii (Mycterotypus) 209 bicaudatus (Pterolichus) 169 bicornis (Txodes) 148 bicornis (Rhipicentor) 155 bicoronatum (Gylicostomum) 127 bifidus (Analges) 170 bifurcata (Rivoltasia) 172 bifurcatus (Anopheles) 203 bigemina (Babesia) 46 bigemina (I)iplospora) 53 biguttatus (Rasahus) 194 biguttatus (Tabanus) 217 Bilharziella 101 bilobatus (Epidermoptes) 172 BINUGLÉÉS 40 bipalmatum (Gycloposthium) 64 bipeetinatus (Syringophilus) 157 biramosum (Œsophagostomum) 121 biseriatum (Menopon) 188 bispinosa (Hæmaphysalis) 151 blanchardi (Saccharomyces) 5 blanchardi (Trichophyton) 12 BLÉPHAROGÉR1DÉS 213 Blepharocodon 57 Blepharocorys 58 Blepharoprosthmm 57 Blepharosphœra 57 blini (Filaria) 106 blochii (Mastigocladium) 25 blocbii (Scopulariopsis) 253 bodini (Epidermopliyton) 13 Bodo 38, 254 BODONIDÉS 38 bomfordi (Schistosoma) 101 Boophilus 152 Bothriophoron 87 bothriophoron (Bothriophoron) 87 bothriophoron (Paramphistomum) 87 Botrytis 27 boueti (Glinocoris?) 190 bouffardi (Aspergillus) 18 bouffardi (Stomoxys) 226 bovinus (Tabanus; 218 bovis (Amœba) 32 bovis (Gysticereus) 79 bovis (Demodex) 176 bovis (Discomyces) 20 bovis (Hæmogregarina) 55 bovis (Hypoderma) 236 bovis (Mastigamœba' 35 bovis (Monilia) 26 bovis (Plasmodium) 49 bovis (Schistosoma) 101 bovis (Theileria) 46 bovoi (Madurella) 22 BRAGHYGÈRES 213 BRACHYMÈRES 248 brachysoma (Tænia' 78 bradyta (Echidnophaga) 200 brasiliensis (Discomyces) 20 brasiliensis (Heterakis) 133 brauni (Tænia) 78 Braunia 81 braziliense (Ankylostoma) 123 bremneri (Tænia?) 79 brevicaule (Pénicillium) 19 breviceps (Trichodectes) 183 brevipalpis (Glossina) 225 BRÈVIROSTRES 150 brevivaginatus (Metastrongylus) 116 bronchialis (Aspergillus) 18 bronchialis (Spiroehæta) 50 bronchialis (Syngamus) 128 brucei (Gulicoides) 210 brucei \Trypanosoma) 42 brumpti (Argas) 146 brunneus (Ixodes) 148 bubali (Sarcocystis) 55 buccalis (Amœba) 32 buccalis (Discomyces) 21 buccalis (Spiroehæta) 50 buissoni (Melusina) 212 bulbosa (Physaloptera) 130 Bunodera 95 BUNODÉRIDÉS 95 BUNOSTOMÉÉS 124 Bunostomum 124 burnetti (Goniodes) 186 bursa (Diplodinium) 63 bursa (Entodinium) 63 bursa (Liponyssus) 142 bursa (Rhipicephalus) 153 Bursattee-Leeches (parasite du) 29 buski (Fasciolopsis) 91 Bütschlia 57 c caballi (Babesia) 46 cæcutiens (Chrysops) 214 cæsar (Lucilia) 232 calcaratum (Amblyomma) 150 calcitrans (Stomoxys) 226 caledonicus (Ixodes) 148 ealicatuin (Cylicostomum) 127 calicophorum(Paramphistomum) 87 caliginea (Glossina) 226 Calliphora 233 CALLIPHORINÉS 232 callipæda (Thelazia) 109 calmettei (Trypanosoma) 43 Calobata 242 camelarius (Tabanus) 218 cameli (Sarcocystis) 55 camelina (Hippobosca) 244 campanula (Trichuris) 113 campanulata (Hæmaphysalis) 151 campestris (Lyctocoris) 191 candida (Monilia) 26 canicularis (Fannia) 229 canina (Oospora) 16 caninum (Ankylostoma) 123 caninum (Dipylidium) 73 caninum (Trichophyton) 12 canis (Babesia) 46 canis fCercomonas) 36 canis (Ctenocephalus) 197 canis (Hæmogregarina) 55 canis (Microsporum) 15 canis (Plasmodium) 49 canis (Toxoplasma) 48 canisuga (Ixodes) 148 cantaniana (Hymenolepis) 76 CANTHARIDIFORMES 247 cantliei (Pityrosporum) 28 canus (Tabanus) 217 capensis (Hippobosca) 245 capensis (Lynchia) 245 capensis (Rhipicephalus) 153 capillaris (Synthetocaulus) 117 capillatus (Solenopotes) 182 capitatus (Gyalocephalus) 127 capitis (Pediculus) 180 caponis (Lipeurus) 185 capræ (Discomyces; 21 capræ (Onchocerca?) 109 capræ (Trichodectes) 183 capræ (Trypanosoma) 43 capricola (Trichostrongylus) 119 capsulatum (Histoplasma) 48 carinatus (Prionotus) 193 carioca (Hymenolepis) 76 Carmyerius 86 carnaria (Sarcophaga) 231 carnea (Discomyces) 22 carougeaui (Discomyces) 21 Carp oy lyp h us 175 carpopliagus (Geopliilus) 178 carteri (Spirochæta) 50 casei (Piophila) 241 castellanii (Endodermophyton) 13 Catatropis 85 catenigera (Placobdella) 138 cati (Notoedres) 164 catinatum (Cylicostomum) 127 cattaneoi (Ophryoscolex) 62 caucasica (Physaloptera) 130 caudatum (Diplodinium) 63 caudatum (Entodinium) 63 caudatum (Triadinium) 64 caudatum (Uronema) 58 caudatus (Ophryoscolex) 62 eaudinflatum (Trichosoma) 113 Cauliorchis 87 cauliorchis (Cauliorchis) 87 cauliorchis (Paramphistomum) 87 caulleryi (Leucocytozoon) 44 caviæ (Trichomonas) 39 cavipalpus (Ixodes) 148 cayennense (Àmhlyomma) 150 cazalhoui (Trypanosoma) 42 Cellia 205 cellulosæ (Gysticercus) 78 centripunetata (Avitellina) 70 CENTROCESTIDÉS 94 cephalicus (Geophilus) 178 Cephalomyia 238 Cephenomyia 235 CÉRAMBYCIDÉS 249 Ceratophyllus 198 GÉRATOPOGONINÉS 208 GERGOMONAD1DÉS 35 Cercomonas 35 cerehralis (Gœnurus) 79 cerebriformis (Discomyces) 22 cervi (Lipoptena) 246 cervi (Paramphistomum) 87 cervicalis (Onchocerca) 109 cesticillus (Davainea) 71 GESTODES 65 ceylonense (Trichophyton) 12 ceylonensis (Fischœderius) 86 Chabertia 122 Chœtechelyne 178 chanayi (F’re.yana) 169 chanayi (Microspalax) 169 Characostomum 124 cliaudoyei (Pyretophorus) 204 Cheletoides 158 clieops (Xenopsylla) 197 GHEYLÉTIDÉS 157 Cheyletiella 159 Cheyletus 158 chilensis (Gordius) 134 Chilodon 58 Chilomastix 254 CHILOPODES 177 CHIRONOMIDÉS 208 CHIRONOMINÉS 208 Chironomus 208 Chlamydonema 130 CHLAMYDONÉMATIDÉS 130 Chlamydophrys 34 GHLOROPIDÉS 243 Choanotœnia 74 chordeilis (Hæmaphysalis) 151 Chorioptes 166 chrysocephalus (Goniocotes) 185 Chrysops 214 chrysostoma (Sarcophaga) 231 chyzeri (Dipylidium) 74 cibaria (Calobata) 242 CILIÉS 56 Ciliophores 56 cinctus (Paragordius) 134 cinerea (Melusina) 211 circonvolutum (Tricliophyton) 10 circumcincta (Ostertagia) 119 circumguttatus (Dermacentor) 152 circumvallata (Heterakis) 133 Cittotœnia 68 CLADORCHIINÉS 88 Cladosporium 28 clathratus (Grammocephalusi 126 clava (Filaria) 105 GLAY1GORNES 249 climax (Trichodectes) 184 CLINOCORIDÈS 190 Clinocoris 190 Clinostomum 99 Cloacina 115 CLOACININÉS 115 Clonorchis 93 Cnemidocoptes 165 cobayæ (Amœba) 33 Cobboldia 238 cobboldii (Fischœderius) 86 COCCIDIIDÉS 53 Coccidioides 28 coccinella (Holothyrus) 143 cœlomaticum (Eurytrema) 99 CŒNOSIINÉS 230 Cœnurus 79 cœnurus (Tænia) 79 cohni (Rhizopus) 4 colchicus (Goniodes) 186 COLÉOPTÈRES 247 coleoptrata (Scutigera) 177 coli (Amœba) 31 coli (Balantidium) 61 collare (Trichosoma) 113 collaris (Hymenolepis 76 GOLLEMBOLES 179 collinsii (Pseudodiscus) 88 Colpoda 58 colpoidea (Paraisotriclia) (30 columbaczensis (Melusina) 211 columbæ (Ceratophyllus) 198 columbæ (Hæmoproteus) 44 columbæ (Heterakis) 133 columbæ (Hymenolepis) 76 columbæ (Lipeurus) 185 columbæ (Megninia) 171 columbæ (Trichomonas) 39 columbæ (Trichosoma) 113 columbæ (Trypanosoma) 42 columbarius (Glinocoris) 190 columbianum (Œsophagostomum) 121 communis (Oicomonas) 36 communis (Piromonas) 37 communis (Psoroptes) 166 communis var. bovis (Psoroptes) 166 communis var. capræ (Pso- roptes) 166 communis var. cuniculi (Pso- roptes) 166 communis var. equi (Psoroptes) 166 communis var. ovis (Psoroptes) 166 communis (Sphæromonas) 36 commutatum (Glinostomum) 100 eommutatus (Synthetocaulus) 117 compactus (Stephanopharynx) 88 compar (Goniocotes) 185 compar (Heterakis) 133 compar (Oxyuris) 133 complanatus (Polydesmus) 140 complexus (Metorchis) 94 compressa (Heterakis) 133 compressus (Gastrotbylax) 85 Compsomyici 233 concentricum(Endodermophyton) 13 concinna (Ilæmaphysalis) 151 concinna var. hirudo (Hæma- physalis) 151 concinna var. longicornis (Hæ- mapliysalis) 151 confusa (Tænia?) 79 congolense (Trypanosoma) 42 congoiensis (Antliocoris) 191 conjonctivæ (F'ilaria) 106 conoideum (Hypoderæum) 97 Conorhinus 193 conscripta (Tænia) 78 continuum (Trinoton) 189 contortum (Tricliosoma) 113 contortus (Hæmonclius) 116 Cooperia 119 copemanii (Hæmatopota) 219 cordatum (Diphyllobothrium) 82 cordicola (Filaria) 106 Cordylobia 234 coriaceus (Ornithodoros) 146 cornigera (Hæmaphysalis) 151 cornutus (Falculifer) 169 coronatum (Gylicostomum) 127 coronula (Hymenolepis) 76 corporis (Pediculus) 180 corsellii (Cryptococcus) 7 corvina (Musca) 228 corymbifera (Liclitheimia) 3 GORYNÉTIENS 251 GORYNÉTINÉS 251 Corynosoma 137 costalis (Pyretophorus) 204 costalis (Tabanus) 218 Cotugnia 72 COTYLOGONIMIDÉS 95 Cotylophoron 86 cotylophorum (Cotylophoron) 87 coustani (Myzorhvnchus) 205 crabroniformis (Asilus) 220 crassa (Ascaris) 131 crassicollis (Taenia) 78 crassicornis (Lipeurus) 185 crassipes (Trichodectes) 184 Crassisoma 124 crassula (Davainea) 71 crassum (Gauliorchis) 87 crassum (Paramphistomum) 87 crenata (Trichuris) 113 crumenifer (Gastrothylax) 85 cruris (Epidermophyton) 13 crustaceum (Pénicillium) 19 cruzi (Prowazekia) 41 cruzi (Scliizotrypanum) 43 Cryptococcus 6 Cryptocystis 73 Clenocephalus 197 ctenoides (Gittotænia) 68 cubitalis (Megninia) 171 GUGUJ1DÉS 250 CUGUJINÉS 250 cucullus (Golpoda) 58 Culex 206 GULIGIDÉS 202 culicifacies (Myzomyia) 203 GULÏGINÉS 205 Cuit co ides 209 cuneatus (Prostliogonimus) 98 cuneatus (Rbipicephalus) 154 cuniculi (Echinorhynchus) 136 cuniculi (Lamblia) 40 cuniculi (Notoedres) 164 cuniculi (Spilopsyllus) 198 cuniculi (Toxoplasma) 48 cuniculi (Trypanosoma) 42 cunninghami (Leishmania) 47 curticei (Gooperia) 120 Curupira 213 curvula (Oxjuris) 133 cutaneum (Oïdium) 26 Cuterebra 240 CUTÉRÉBRINÉS 239 cyaniventris (Dermatobia) 240 Cycloleppteron 204 GY GLOPHYLLIDIENS 66 Cycloposthium 63 GYGLORHAPHES 221 cjgni (P’ilaria?) 106 cjgni (Ornithonomus) 186 cjgni (Philopterus) 184 GY LIGOSTOMÉÉS 126 Cylicost onium 126 Cynomyia 232 cynotis (Otodectes) 167 Cysticercus 78, 79 cysticola (Laminosioptes) 163 CYTOLEICHIDÉS 162 Cytoleichus 163 D damicornis (Goniodes) 186 damnosa (Melusina) 211 danilewskyi (Proteosoma) 49 Dasytrichn 59 Davainea 71 DAVAINEIDÉS 71 DA VAINE1NÉS 71 decipiens (Dipliyllobothriumi 82 decoloratus (Boophilus) 152 degenerans (Gryptococcus) 7 delafondi (Bertiella) 67 delicatissimum (Trichosoma) 113 deminutus (Ternidens) 122 Demodex 175 DÉM0DIC1DÉS 175 dendriticum (Dicrocœlium) 99 denshamii (Hæmatopota) 218 dentatum (Diplodinium) 03 dentatum (Entodinium) 63 dentatum (Œsophagostomum) 121 dentatus (Chilodon) 58 dentatus (Ixodes) 148 dentatus (Stephanurus) 129 denticornis (Rhinomjza) 215 denticulatum (Trichophyton) 11 dentium (Spirochæta) 50 depauperatum (M icrosporum) 253 depilans (Trichophjton) 12 depressiusculus (Trichuris) 113 Dermacentor 151 DERMANYSSIDÉS 142 ' DERMANYSSINÉS 142 Dermanyssus 142 dermatitis (Cryptococcus) 7 Dermatobia 240 Dermatophilus 199 Dermestes 248 DERMEST1DÉS 248 DERMOGLYPHINÉS 169 Dermoglyphus 170 desjardensii (Fannia) 229 diana (Hypoderma) 236 diaphana (Amœba) 31 DIBOTHRIOCÉPHALOIDÉS 81 dicranocœlium (Orthocœlium) 87 dicranocœlium (Paramphisto- mum) 87 DICROCŒLIIDÉS 98 Dicrocœlium 99 Dictyocaulus 116 Didesmis 64 308 diflfcrens (Heteralds) 133 DIGENÈSES 83 digitatus (Nematodirus) 120 digonopora (Davainea) 72 dimidiata (Gbrysops) 214 dimidiatus (Eristalis) 222 diminuta (Hymenolepis) 76 (Fimorphon (Trypanosoma) 42 DIN OFLAGELLÉS 52 DIN OPH Y SIDÉS 52 DIPHYLLOBOTHRIIDÉS 81 DIPHYLLOBOTHRIINÉS 81 Diphyllobothrium 82 Diplodinium 63 Diplogonoporus 82 DIPLOPODES 140 Diploposthe 80 Diplospora 53 DIPLOSPORIDÉS 53 DIPTÈRES 200 DIPYLIDIINÉS 73 Dipylidium 73 Dirofilaria 108 discoides (Trichophyton) 12 discolor (Trichuris) 113 Discomyces 20 dispar (Heteralds) 133 dispar (HeteropbyesJ 95 Dispharagus 111 (Mssimile (Amblyomma) 150 dissimilis (Goniodes) 186 distincta (Melusina) 212 distincta (Pangonia) 216 distinctipennis (Gbrysops) 214 DISTOMIENS 90 ditæniatus (Tabanus) 217 Dithyridium 80 diurna (Microfilaria) 105 doddi (Spirorîiæta) 51 domestica (Musca) 228 domestica (Seira) 179 domesticus (Glyciphagus) 174 domesticus (Tæniorhynchus) 207 donovani (Leishmania) 47 dori (Sporotrichum) 25 douglasi (Strongvlus) 120 Dracunculus 105 Drepanidotænia 77 dromedarina (Hippobosca) 245 Drosophüa 242 DROSOPHILIDÉS 242 dubium (Tricbosoma) 113 duboscqi (Phlebotomus) 202 dufouri (Culicoides) 210 duodenale lAnkylostoma) 123 duttoni (Rbipicephalus) 154 duttoni (Spirochæta) 50 dux (Galliphora) 234 dux (Rbipicephalus) 154 dysenteriæ (Ainœba) 31 E ebertbi (Trichomonas) 39 eburneum (Amblyomma) 150 ecaudatum (Diplodinium) 63 Echidnophaga 200 echinobothrida (Davainea) 72 Echinococcus 79 Echinocotyle 77 ecbinophylla (Trichuris) 113 ÈGHINORHYNGHIDÉS 135 Echinorhynchus 135 Echinochasmus 97 Echinostoma 96, 255 ÉGHIN OSTOMIDÉS 96 ectotbrix (Trichophyton) 11 edentatus (Strongylus) 123 eifractum (Trichophyton) 10 Eidamella 16 Eimeria 53 EIMÉRIDÉÉS 53 EIMÉRIDÉS 53 electricus (Geophilus). 178 electus (Dermacentor) 152 elegans (Eustrongylides) 115 elephantinum 'Amhlyomma) 150 elepliantis (Gobboldia) 239 elephantis (Hæmatomyzus) 183 elepliantis var. sumatranus (Hæmatomyzus) 183 elephantis (Trypanosoma) 43 ellipsoideus (Saccharomyces) 6 elongatum Gylicostomum) 127 elongatum iDithyridium) 81 elongatus (Dermoglyphus) 170 elongatus (Fischœderius) 86 émasculator (Guterehra) 240 endemicus (Glonorchis) 94 Endodermvphyton 13 endo-ectothrix (Trichophyton) 10 Endomyces 6 endothrix (Trichophyton) 9 enterica (Amoeha) 33 Entodiniura 62 entomophagus (Histiogaster) 173 ÉPHYDRLDÉS 243 ÈPHYDRINÉS 243 Epidermophyton 13 Epiderm optes 172 É P IDE R M O PTI NÉS 171 epielitum (Paramphistomum) 87 equi (Ascaris 131 equi (Gastrophilus) 224 equi (Hypoderma) 236 equi (Nuttallia) 47 equi (Spirochæta) 50 equi (Spirodinium) 64 equina (Hippobosca) 244 equina (Setaria) 107 equinum (Fusarium) 27 equinum (Microsporum) 15 equinum (Trichophyton) 12 equinum (Trypanosoma) 42 equinus (Rhizopus) 4 equinus (Strongylus) 122 equiperdum (Trypanosoma) 42 Ergates 249 erinacei (Ctenocephalus) 198 Eristalis 221 eruditus (Cheyletus) 158 erythrocepliala (Galliphora) 234 EUASCÉES 5 EUFLAGELLÉS 35 Eufreyana 168 eugyrata (Spirochæta) 51 Eulyes 192 EUPOD1DÉS 160 EUPODOIDÉS 159 Eupterolichus 169 eurysternus (Hæmatopinus) 181 Eurytrema 99 Eusimulium 211 Euslrongylides 115 EUSTRONGYLIDÉS 114 Eustrongylus 114 evansi (Filaria) 106 evansi (Trypanosoma) 42 evansi var. mborii(Trypanosoma) 255 evertsi (Rhipicephalus) 153 exigua (Hymenolepis) 255 exigua (Lyperosia) 227 exilis (Hymenolepis) 76 exornatum (Aponomma) 149 expansa (Moniezia) 69 explanatum (Paramphistomum) 88 exsiccatum (Trichophyton) 10 extraneum (Menopon) 188 F faba 60 faber (Ergates) 249 falcicornis (Goniodes) 186 Falculifer 169 Fanapepea 254 Fannia 229 faranti (Anopheles) 203 farciminosus (Gryptococcus) 7 farcinicus (Discomyces) 20 farinæ (Tyroglyphus) 173 farinulentum (Trichophyton) 11 fasciata (Onchocerca) 109 fasciata (Stegomyia) 206 fasciatus (Tabanus) 217 fasciculata (Hymenolepis) 76 Fasciola 90 fasciolaris (Gysticercus) 78 fasciolaris (Fimbriaria) 80 FASGIOLIDÉS 90 Fasciolopsis 91 fatigans (Gulex) 206 faurei (Eimeria) 54 faviforme (Trichophyton) 12 fecalis (Amœha) 33 felineum (Chlamydonema) 131 felineum (Microsporum) 15 felineum (Trichophyton) 11 felineus (Opisthorchis) 93 felis (Gtenocephalus) 198 felis (Hæmogregarina) 55 felis cati (Trichosoma) 113 ferruginea (Aphiochæta) 222 Filaria 105, 255 filaria (Dictyocaulus) 117 FILAR1IDÉS 105 Filicollis 136 filicollis (Nematodirus) 120 Fimbriaria 80 FIMBRIARIIDÉS 80 fiscliœderi (Fischœderius) 85 Fischœderius 85 fissispinus (Tropisurus) 111 flava (Hæmaphysalis) 151 flavescens (Aspergillus) 17 ilavipes (Gastrophilus) 224 flavohirta (Lyperosia) 227 flavopubescens (Melusina) 212 iiavum (Trichophyton) 1 0 fœrsteri (Discomyces) 21 folliculorum (Demodex) 175 folliculorum var. canis (Demo- dex) 175 folliculorum var. capræ (De- modex) 175 folliculorum var. cati (Demo- dex) 175 folliculorum var. cuniculi (De- modex) 176 folliculorum var. etjui (Demo- dex) 176 folliculorum var. ovis (Demo- dex) 176 fontoynonti Aspergillus) 10 forficatus (Lithobius) 177 formosaensis (Anopheles' 203 Foxia 23 franki (Trypanosoma' 42 fraternum (Paramphistomum) 87 freeri (Discomyces) 20 Freyana 168 friedbergeri (Davainea) 72 Frien (champignons du) 29 frobeniusi (Trypanosoma) 255 fuliginosus (Nyssorhynchus) 205 fülleborni (Fasciolopsis) 91 fulvum (Microsporum) 15 fumatum (Trichophyton) 10 fumigatus (Aspergillus) 17 funebris (Drosophila) 242 funesta (Myzomyia) 203 furens (Œcacta) 210 furfur (Malassezia) 23 furunculosa (Leishmania) 47 Fusarium 27 fusca (Discomyces) 22 fusca (Glossina) 226 fusca (Tichomyza) 243 fuscum (Diphyllobothrium) 82 G Gaigeria 125 gallinacea (Echidnophaga) 200 gallinæ (Achorion) 16 gallinæ (Ceratophyllus) 198 gallinæ (Cnemidocoptes) 165 gallinæ Dermanyssus) 142 gai 1 inarum (Gercomonas) 36 gallinarum (Ghilomastix) 2o4 gallinarum (Spirochæta) 50 gallinarum (Trichomastix) 254 gallinarum (Trichomonas) 254 gallinum (Trichosoma) 113 gallopavonis (Amœba) 33 GAMASIDÉS 144 GAMASOIDÉS 140 gambiense (Trypanosoma) 42 garteni (Discomyces) 21 Gastrocystis 56 GASTROMSCIDÉS 89 Gcistrodiscus 90 gastrophila (Filaria) 106 GASTROPHILINÉS 223 Gastrophilus 224 Gastrothylacias 86 Gastrothylacides 86 GASTROTHYLACIDÉS 85 Gastrothylax 85 gedanensis (Discomyces) 21 gelidus (Gulex) 206 gemina (Physaloptera) 130 gemma (Amblyomma) 150 gemmipara (Leydenia) 34 GÉOPHILIDÉS 177 Geophilus 178 georgiana (Agamolilaria) 107 gervaisi (Himantarium) 178 giardi (Thysanosoma) 70 gibbus (Listrophorus) 168 gibsoni (Oncbocerca) 109 gibsoni (Strongylus) 120 giganteum (Menopon) 188 giganteum (Trichosporum) 24 giganteus iNyctotberus) 60 gigantica (Fasciola) 91 GIGANTORH YN CHIDÉS 135 Gigcintorhynchus 135 gilruthi (Gastrocystis) 56 gingivalis (Amœba) 31 glabrum (Trichophyton) 10 gladiger (Rhipicepbalus) 154 globipunctata (Stilesia) 71 Glossina 225 GLOSSOSIPHONIIDÉS 138 gluteitis (Gryptococcus) 8 glycophile (Trichosporum) 24 Glyciphagus 174 glyphis (Rhipicephalus) 154 Glyricola 187 GNATHOBDELLIDÉS 138 Gnathostoma 105 GNATHOSTOMIDÉS 104 Gongylonema 110 Goniocotes 184 Goniodes 186 goniopieurus (Ornithonomus) 186 GORD1ACÉS 134 GORDIIDÉS 134 Gordius 134 gottii (Gryptococcus) 7 gougeroti (Sporotrichum) 25 grabhami (Cycloleppteron) 204 gracile (Parampliistomum) 88 gracilis (Glyricola) 187 gracilis (Hymenolepis) 76 gracilis (Spirochæta) 51 gracilis (Strigea) 102 grahamii (Gulicoides) 210 gralli (Pliilophthalmus) 98 Grammocephalus 126 grandis (Diplogonoporus) 82 granulatus (Saccharomyces) 5 granulomatogenes (Gryptococcus) 7 granulosa (Heterakis) 133 granulosa (Limnatis) 139 granulosa penetrans (Spiro- cheeta) 255 granulosum (Trichophyton) 11 granulosus (Ecbinococcus) 79 G raphidiu m 118 graphii (Verticillium) 24 grassii (Echinorhynchus) 136 grassii (Filaria) 106 gratus (Tabanus) 217 gregarius (Garmyerius) 86 griseicollis (Melusina) 211 gulosa (Pangonia) 216 gulosa (Thelazia) 108 guttulatus (Saccharomyces) 6 gutturosa (Onchocerca) 109 Gyalocephcilus 127 GYMNOASCÉES 8 GYMNOGÉRATES 189 GYMNOSTOMATES 57 gypseurn (Achorion) 16 gypseum (Trichophyton) 11 GYROP1DÉS 187 Gyropus 187 H habereri (Culicoides) 210 Hæmadipsa 139 HÆM ADIPSINÉS 139 Hœmaphysalis 151 hæmaphysaloides (Rbipicepba- lus) 154 Hœmatobia 227 bæmatobium (Schistosoma) 100 Hæmatobosca 227 bæmatodes (Sarcopbaga) 231 Hœmcitomyidium 210 Hæmatomyzus 183 Ilœmatopinus 181 Hœmatopota 218 Hæmen teria 138 Hœmodipsus 182 Hæmogregarina 55 Hœmonchus 116 313 Hœmoproteus 44 liæmorrhagica 'Filariai 106 hæmorrhoidalis (Gastrophilus) 224 hæmorrhoidalis (Sarcophaga) 231 Hœmostrongylus 118 HALTÉRIDIIDÉS 44 hamulosus (Dispharagus) 111 hamulus (Heterakis) 133 Haplophilus 178 harkeri (Strongylus) 120 harteri * Cryptococcus) 8 hawkesi Hawkesius) 88 hawkesi (Pseudodiscus) 88 Hcackesius 88 hebræum Amblyomma) 150 Rectopsylla 200 HÉM ATO M YZIDÉS 183 HÉMATOPINIDÉS 181 HÉMATOPININÉS 181 HÉMIPTÈRES 189 Hemispora 27 Hemistomum • 102 HÉMOGRÉGARINIDÉS 54 hepatica (Cercomonas) 36 hepatica (Easciola) 90 hepatica (Stilesia) 71 herbariorum (Aspergillus) 17 herpetica (Filaria) 106 hesleri (Cryptococcus) 7 Heterakis 132 HÉTÉRODAGTYLES (Brachy- cères) 220 heterographus (Lipeurus) 185 HÉTÉRO MÈRES 248 Heteromita 38 heteropalpa (Gheyletiella) 159 Heterophyes 95 heterophyes (Heterophyes) 95 HÉTÉROPTÈRES 189 HÉTÉROTRIGHES 60 hexagonus (Ixodes) 148 hexagonus var. cookei ilxodes) 148 HEXAPODES 179 himalayanum (Trypanosoma) 42 Himantarium 178 hippicum \Trypanosorna) 43 Hippobosca 244 HIPPOBOSGIDÉS 244 HIPPOBOSCINÉS 244 Hippocentrum 219 hirsuta (Sarcocystis) 55 hirudinaceus (Gigantorhynchus) 135 HIRUDINÉES 137 HIRUDININÊS 138 Hirudo 139 hirundinis (Dermanyssus 142 hirundinis (Œciacus) 191 hispidum (Gnathostoina) 105 Histiogaster 173 Histoplasma 48 holmesi (Discomyces) 21 holocyclus (Ixodes) 148 hologaster /Goniocotes) 185 HOLOMÉTOPES 241 HOLOSTOMIENS 101 HOLOTHYRINÈS 143 HOLOTHYRUS 143 HOLOTRICHES 56 Homalogaster 89 liominis (Gercomonas) 36 hominis (Cryptococcus) 7 hominis (Discomyces) 21 hominis (Echinorhynchus) 136 liominis (Eimeria) 54 hominis (Gastrodiscus) 90 hominis (Paramœba) 34 hominis (Saccharomyces' 6 hominis (Tæniarhynchus) 79 hominis (Tarsonemus) 162 hominis (Trichomonas) 39 hominis oris (Agamomermis) 112 HOMŒODAGTYLES (Brachy- cères' 213 HOMOPTÈRES 195 horvathi (Sarcocystis) 55 hospes (Dicrocœlium) 99 hostilissima lŒcacta) 210 hudeli (Gryptococcus) 8 hudsonia (Babesia) 46 Hyalormva 149 hydatigena (Tænia) 78 Hydrotœa 229 H Y M ÉNOLÉPIDIBÉS 73 H YM ÊN OLÊPIDINÉS 75 Hymenolepis 75, 255 H YM ÈNOSTOMATES 58 HYPHOMYGÈTES 20 Hypoderœum 96 Hypoderma 236 HYPODERMINÊS 235 hypodytes (Ustilago) 29 Hystrichis 114 I icterodes (Philopterus) 184 ilocanum (Echinostoma) 255 immitis (Goccidioides 28 immitis (Dirofilaria) 108 incisa (Paraisotricha) 60 incisurata (Fannia) 229 indica (Melusina) 211 indicum (Gotylophoron) 87 indicum (Endodermophyton) 14 indicum Paramphistomum) 87 indicum (Schistosoma) 101 indicum (Sporotrichum) 25 indicum (Trypanosoma) 42 Indiella 22 inermis Gastrophilus) 224 inermis (Hymenolepis) 255 inermis (Ophryoscolex) 62 infantum (Leishmania) 47 infiltrans (Cryptococcus) 8 iniiatum (Trichophyton) 10 infundibulum (Ghoanotænia) 74 infuscata (Melusina) 212 ingens (Trypanosoma) 43 ingluvicola (Gongylonema) 110 inodorus (Clinocoris) 100 inornatum (Aponomma) 149 insignis (Philæmatomyia) 228 instabilis (Trichostrongylus) 119 intectus (Tarsonemus) 161 intestinalis (Amœba) 33 intestinalis (Blepharosphæra) 58 intestinalis Fanapepea) 254 intestinalis (Isotricha) 59 intestinalis (Lamblia) 40 iracundus iRhinocoris) 192 irritans (Filaria) 106 irritans (Lyperosia) 2'^7 irritans (Mycterotypus) 209 irritans Pulex) 196 irritans (Trombidium) 156 ISGHNOGÈRES 183 isolonche (Heterakis) 133 Isotricha 59 israeli (Discomyces) 20 Isthmiophora 97 italien 'Ascocotylel 95 Ixocles 147 IXODIDÉS 147 IXODOIDÈS 145 J jaksoni (Fasciolopsis) 91 jalina (Eimeria) 54 japonicum (Scliistosoma) 100 japonicus (Discomyces) 21 japonicus (Prosthogonimus) 98 jassyensis (Braunia) 81 jeanselmei (Sporotricbum) 25 jenningsi (Menoponi 188 jeyporensis (Pyretopborus) 204 jinjaense (Trypanosoma) 42 Johavnseniella 210 jubata (Blepbarocorys) 58 JULIDÈS 140 JULIFORMES • 140 Juins 140 juncea 'Filaria) 106 K kartulisi (Amœba) 32 kilimaræ (Filaria?) 107 kinealyi (Rhinosporidium) 56 kingi (Anthocoris) 191 kingsleyi (Tabanus) 217 kochi (Monilia) 26 kocbi (Rbipicepbalus) 154 krabbei (Tænia) 78 krusei (Saccharomyces) 6 L labialis (P’ilaria) . 106 laluato-papillosa (Setaria) 107 labiatum (Cylicostomum) 127 labratum (Cylicostomum) 126 lacessens (Hæmatopota) 2 ! 9 lacrymalis (Thelazia) 109 lacticolor (Trichophyton) 11 lacustre (Amphidinium) 52 Lœlaps 144 Lœrnobothrium 189 lævis (Cnemidocoptes) 165 lævis iDiploposthe) 80 Lagochilascaris 132 lahorensis (Ornithodoros) 147 lambens (Sarcophaga) 231 Lamblia 40 Larninosioptes 163 Lamus 193 lanceolata (Bütschlia) 57 lanceolata (Drepanidotænia) 77 lardarius (I)ermestes) 248 larina (Echidnophaga) 200 larvarum (Tachina) 241 LARVÉVORIDÉS 230 laryngeus Syngamus) 128 lata (Porogynia) 73 lateralis (Pangonia) 216 laticeps (Dispharagus) 111 latifrons (Sarcophila) 231 latum (Diphyllobothrium) 82 latus (Trichodectes) 184 laverani (Spirochæta) 255 Laver ania 49 leachi (Hæmaphy salis) 151 lectularius (Glinocoris) 190 leesei (Thelazia) 109 Leishmania Al lens (Monas) 37 lepidum (Amblyomma) 150 leporis (Hæmaphysalis) 151 LEPTIDIDÉS 219 lesnei (Rbinocladium) 25 lesnei (Sporotrichum) 25 LEUGOGYTOZOIDÉS 44 Leucocytozoon 44 leucostomus iTabanus) 218 Ley dénia 34 licbtensteini (Læmobothrium) 189 Lichtheimia 2 lienalis (Onchocerca?) 109 LIGULINÉS 81 limax (Amœba) 253 limbata (Toxascaris) 132 limbatus (Tricbodectes) 184 iimensis (Galliphora) 233 Limnatis 139 lindemanni (Sarcocystis) 55 lineare (Trichosoma) 114 linearis (Bunodera) 96 lineata (Heterakis- 133 lineata (Hypoderma) 236 lineata (Pristirhynchomyia) 229 lineatus (Mesocestoides) 66 lineola (Tal)anus) 218 lingardi (Trypanosoma) 42 linguæ-pilosæ (Cryptococcusj 7 lingualis (Discomyces) 21 Linguatula 176 LIN GUATULIDÉS 176 LINOGNATHINÉS 182 Linognathus 182 linstowi (Zscliokkeella) 69 LINSTOWINÉS 69 LIOTHÉIDÉS 187 Liotheum 187 Lipeurus 185 Liponyssus 142 Lipoptena 246 LIPOPTÉNINÉS 246 liquefaciens (Discomyces) 21 listoni (Myzomyia) 203 LISTROPHORIDÉS 167 Listrophorus LITHOBIIDÉS 177 Lithobius 177 litteratus (Mesocestoides) 66 lituratum (Trinoton) 189 Loa 105 loa (Filaria) 105 loa (Loa) 105 lobosa var. guttula (Amœba) 31 lobosa var. oblonga (Amœba) 31 lombricoides (Ascaris) 131 lommeni (Pycnosporium) 28 lonchoptera (Ascaris) 131 londinensis (Julus) 140 longecirratum (Bunostomum) 125 longemucronatum ( Characosto- mum) 124 longicauda (Gercomonas) 36 longicaudum (Liotheum) 187 longicepbalum (Menopon) 188 longicollis (Davainea) 72 longicollis (Ecbinorhynchus) 136 longior (Tyroglyphus) 173 longipalpis (Glossina) 225 longipennis (Glossina) 226 LONGIROSTRES 149 longistipes (Hæmonchus) 116 longus (Rbipicephalus) 154 Lophoptes 143 loxodontis (Cobboldia) 239 lucida (Metroliasthes) 75 Lucilia 232 lunulatus (Rbipicephalus■ 154 luridum \Trinoton) 189 luteola (Auchmeromyia) 234 luteolus (Discomyces) 22 Lyctocoris 191 Lynchia 245 Lyperosia 227 M macellaria (Compsomyia) 233 macfadyeni (Trichophyton) 13 macleani (Leucocytozoon) 44 mactans (Hæmatopota) 219 macula ta (Gephalomyia) 238 maculata (Hippobosca) 244 maculata (Melusina) 211 maculatum (Amblyomma) 150 maculipalpis (Nyssorhynchus) 205 maculipennis (Anopheles) 203 maculosa (Limnatis) 139 maculosa (Stygeromyia) 227 madagascariensis (J)ayainea) 72 maduræ (Discomyces) 20 Madurella 22 magalhâesi (Dirofilaria' 108 maggii (Diplodinium) 63 magna (Anoplocephala) 67 magna (Fasciola) 91 magnifica (Wohlfahrtia) 232 magrettii (Pangonia) 216 MALACOGOTYLÉS 83 MALACODERMES 250 malariæ (Laveranial 49 malariæ (Plasmodium' 49 Malassezia 23 malignus (Aspergillus) 17 MALLOPHAGES 183 mamillana (Anoplocep' ala) 67 mammosum (Diplodinium) 63 mancupatus (Garmyerius) 86 mancupatus (Gastrothylacides) 86 manicata (Fannia) 229 mansoni (Foxia) 23 mansoni (Indiella) 22 mansoni (Oxyspirura) 110 mansoni (Schistosoma) 100 mansoni (Sparganum) 83 Mcinsonia 207 Margaropus 153 marginale (Anaplasma) 48 marginale (Pycnosoma) 233 marginata (Belascaris) 132 marginata (Tænia) 78 maritima (Ascaris) 131 marmoreum (Amblyomma) 150 marshalli (Ostertagia) 119 martini (Anopheles) 203 Mastigamœba 35 Mastigocladium 24, 253 mastigodes (Oxyuris) 133 MASTIGOPHORES 35 maura (Lynchia) 245 maxima (Piromonas) 37 maxima Sphæromonas) 37 mazzantii (F il aria) 106 medicinalis (Hirudo) 139 medinensis (Dracunculus) 105 mediopunctatum (Gycloleppteron) 204 megacephala (Pycnosoma) 233 megalops (Hymenolepis) 76 megastoma (Spiroptera) 110 megistus (Lamus) 193 megnini (Ornithodoros) 147 megnini (Trichophyton) 11 Megninia 170 meigeni (Sarcophila) 231 melanogastra (Drosophila) 242 Melanolestes 194 melanops (Litbobius) 177 meleagridis (Amœba) 32 meleagridis (Lipeurus) 185 meleagris (Hymenolepis) 76 melis (Isthmiophora) 97 Melophagus 246 Melusina 211 MÉLUSINIDÉS 211 MÉLYRIDÉS 250 membranogenes (Saccbaromyces) 5 Menopon 188 mentagrophytes (Tricliophyton) 11 mentulata (Ostertagia) 119 mericourti (Acaropsis) 159 méridionale (Microtrombidium) 156 meridionalis (Melusina) 212 MERMITHIDÉS 112 mesnili (Tetramitusl 40, 254 Mesocestoides 66 MÉSOCESTOIDIDÉS 66 MÉTASTATIQUES 101 MÉTASTIGMATES 140 MÉTASTRIÉS 148 MÉTASTRONGYLINÉS 115 Metastrongylus 116 Metatrombium 156 meteorica (Hydrotæa) 229 MÉTORCHIINÉS 94 Metorchis 94 Metroliasthes 75 Microfilaria ! 05 MICRO P E Z11 ) É S 242 Microspalax 168 Microsporum 14, 253 microstoma (Spiroptera) 110 Microtrombidium 156 miescheriana (Sarcocystis) 55 milnei (Culicoides) 210 minei (Spirochæta) 51 minima (Oicomonas) 36 minima (Piromonas) 37 minima (Sphæromonas) 37 minimum (Entodinium) 63 minimum (Pénicillium) 19 minor (Dermoglypbus1 170 minor (Goniodes' 186 minor (Lagocbilascaris) 132 minor (Triodontophorus) 127 minuscula (Melusina) 212 minuta (Amœba) 33 minuta (Ascocotyle) 95 minutissimus (Discomyces) 21 minutum (Balantidium) 61 minutus (Polymorpbus) 136 miurai (Amœba) 32 modestus (Dermacentor) 152 molestissimus ( Tetranycbusl 157 molestus (Tabanus) 218 molestus (Tydeus) 160 molitor (Tenebrio) 249 M0NAD1DÉS 37 Monas 37 Moniezia 68 Monilia 26 moniliformis (Gigantorbyncbus) 135 moniliformis (Porocepbalus 176 monospora (Bargellinia) 17 Monostoma 84 MONOSTOMIDÉS 84 MONOSTOMIENS 83 monstrosum (Hyalomma) 149 montgomeryi (Melusina) 212 montgomeryi iTrypanosoma) 255 montoyai (Monilia) 26 montoyai (Pénicillium) 19 Montoyella 27 mordax (Tabanus) 218 mordens (Physaloptera) 130 morèliæ lAmblyomma' 150 morsitans (Glossina) 226 morsitans (Tabanus) 217 Mortierella 4 MORTIÊRELLÈES 4 mortinatalium (Amœba) 33 mortuorum (Gynomyia) 232 moubata (Ornithodoros) 146 mucedo (Mucor) 2 Mucor 1 MUGORÉES ' 1 MUGORINÈES 1 muktesari (Trypanosoma) 42 Midticeps 79 multiceps (Multiceps) 79 multilocularis (Echinococcus) 80 murina (Hymenolepis) 76 Musca 228 MUSGIDÈS 223 MUSCIDINÊS 224 Muscina 230 MUSGINÉS 228 musculosa (Hymenolepisj 76 mutabile (Monostoma) 84 niulabilis (Davainea) 72 mutans (Gnemidocoptes) 165 mutans (Tbeileria) 46 mycetomi (Madurella) 22 Mycterotypus 209 mysomelas (Limnatis) 139 mystax (Belascaris) 132 Myzomyia 203 Myzorhynchus 204 N NABIDÈS 195 naiæ-sputatricis (Porocephalus) 176 nanum (Trypanosoma) 42 nasalis (Gastrophilus) 224 nasicola (Syngamus) 128 nassatum (Gvlicostomum) 127 nasutus (Dispharagus) 111 neavei (Leucocvtozoon) 44 Necator 125 Necrobia 251 neglecta (Bütschlia) 57 NÉMATHELMINTHES 103 NÉMATODES 103 Nematodirus 120 NÉMOGÈRES 201 nemoralis (Tabanus) 217 neo-caledonica (Pangonia) 216 Neocuterebra 239 néo-endothrix (Trichopbyton) 10 NÊOSPORID1ES 55 Nephrophages 162 neumanni (Hæmaphysalis) 151 neumanni (Moniezia) 69 neveuxi (Spirocliæta) 51 nieollei (Spirocliæta) 51 JSicrophorus /2 52 nidulans (Aspergillus) 17 nidulans (Sarcopterinus) 158 niellyi (Rhabditis) 103 niger (Aspergillus) 17 niger (Gryptococcus) 7 niger (Rhizopus) 4 nigra (Montoyella) 27 nigra (Musca) 228 nigra (Stomoxys) 226 nigricans (Rhizopus) 4 320 nigricans var. columbæ (Orni- thoctonaj 247 nigricornis (Hæmalopola) 218 nigritus (Tabanus) 217 nigrofusca (Glossina) 226 nigrolineatus (Dermacentor) 152 nigrovarius (Gonorhinus) 193 nilotica (Limnatis) 139 nipponica (Amœba) 33 nitens (Dermacentor) 152 nitens (Rhipiceplialus) 154 niveum (Trichophy ton) 11 nobilis (Lucilia) 232 noctnrna (Microfilaria) 106 Notocotyle 84 NOTOCOTYLIDÉS 84 Notoedres 164 noverca (Opisthorcbis) 93 novyi (Spirochæta) 50 noxialis (Hæmatopota) 219 nudus (Gytoleichus) 163 nullicollis (Moniezia) 69 numidæ (Leucocytozooni 45 numidæ (Lipeurus) 185 numidæ (Menopon) 188 numidæ (Microfilaria) 107 numidæ (Trypanosoma) 43 numidianus (Goniodes) 186 Nuttallia 46 Nyctotherus 60 Nyssorhynchus 205 O oblonga (Paraisotricba) 60 obovale (Typblocœlum) 84 obscurissimus (Tabanus) 216 obscurum (Menopon) 188 obtusa (Spirochæta) 50 occidentalis (Dermacentor) 152 occidentalis (Ostertagia) 119 oceanica (Gallipliora) 234 ochmanni (Microfilaria) 107 ochraceum (Trichophyton) 12 ocreatus (Synthetocaulus) 117 octodactyla (Gloacina) 115 oculatus (Rhipicephalus) 154 oculi (Agamofilaria) 107 oculi canini (Filaria?) 100 Œcacta 210 Œciacus 190 Œdemagena 236 Œsophagodontus 127 ŒSOPHAGOSTOMÉÉS 121 Œsophagostomum 121 ŒSTR1NÉS 236 Œstrus 237 offîeinalis (Hæmenteria) 138 Oicomonas 36 Oïdium 26 OLFERSIINÊS 245 OLIGOTRIGHES 61 Ollulanus 129 Onchocerca 109 oncophora (Gooperia) 120 Oospora 16, 26 Ophryoscolex 62 ophthalmobium (Agaraodistomum) 93 OPISTHORCHIIDÉS 93 OPISTHORCH UN ÈS 93 Opisthorchis 93 orldtalis (Melusina) 212 ôrleyi (Dipylidium) 74 ornatus (Pseudodiscus) 88 Ornithoctonci 247 Ornithodoros 146 Ornithomyia 246 ORN1THOMYINÈS 246 Ornithonomus 186 Orthocœlium 87 orthocœlium (Orthocœlium) 87 orthocœlium (Paramphistomum) 87 Ortholfersia 245 ORTHORHAPHES 201 Oscinis 243 osleri (Filaria) 106 ostertagi (Ostertagia) 119 Ostertagia 119 Otodectes 167 ovale (Pityrosporum) 28 ovale (Trichosporum) 24 ovalis (Didesmis) 64 ovalis (Gyropus) 187 ovalis (Paraisotricha) 60 ovalis (Trichosporum) 24 ovillus (Hæmatopinus) 181 ovina (Ghabertia) 122 ovina (Spirochæta) 50 ovinus (Melophagus) 246 ovis (Ascaris) 131 ovis (Bahesia) 45 ovis (Œstrus) 237 Oxyspiru ra 110 Oxyuris 133 P pachycephalus (Hystrichis) 115 paehycnemis (Bermoglyphus) 170 pachyscelis (Gaigeria) 126 pallicera (Glossina) 226 pallida (Xenopsylla) 197 pallidipennis (Hæmatopota) 218 pallidipes (Glossina) 226 pallidum (Treponema) 51 palpalis (Glossina) 225 palpebralis (Agamofilaria) 107 paludis (■Myzorhynclius) 205 pancreaticum (Eurytrema) 99 Pangonia 215 PANGONINÈS 214 papatasii (Phlebotomus) 202 papillatus (Pfenderius) 89 papillosum (Gauliorchis) 87 papillosum (Paramphistoraum) 87 papillosum (Trichosoma) 255 papillosus (Eustrongylides) 115 par (Tabanus) 217 Parachordodes 134 paradoxa (Simondsia) 112 paradoxus fHæmatomyzus) 183 paraechinobothrida (Davainea) 72 paraense (Hæmatomyidium) 211 Paragonimus 92 Paragordius 134 paraguayensis (Melusina) 212 Paraisotricha 60 Paramœba 33 PARAMPHISTOMIDÉS 86 PARAMPHISTOMINÉS 86 Paramphistomum 87 parasitica (Amœba) 31 parasiticus (Rhizoglyphus) 174 parasiticus (Rhizomucor) 3 parasitivorax (Gheyletiella) 159 paratropicalis (Endomyces) 6 Parendomyces 6 parmata (Hæmaphysalis) 151 parumpilosus (Trichodectes) 184 PARUTÈRININÈS 75 parva (Bütschlia) 57 parva (Cercomonas) 36 parva (Theileria) 46 parviceps (Goniodes) 186 parvopapillatum (Paramphisto- mum) 87 parvorum (Oxyspirura) 110 parvula (Hymenolepis) 76 parvum iDiphyllobothrium) 82 pasqualei (Hipylidium) 74 patavinus (Lophoptes) 143 pattoni (Musca) 228 pavimentosus (Ornithodoros) 147 pecaudi (Trypanosoma) 42 pecorum (Gastrophilus) 224 pecorum (Trypanosoma) 43 pectinata (Gooperia) 120 pectinifera (Spiroptera) 110 pedalis (Linognathus) 182 PÉDICULIDÉS 180 PÈDICULINÉS 180 Pediculoides 160 PÉDIGULOIDINÈS 160 Pediculus 180 pellio (Rhabditis) 103 pellucidus (Prosthogonimus) 98 pendula (Tubifera) 222 penetrans (Dermatophilus) 199 Pénicillium 19 perflava (Melusina) 212 perfoliata (Anoplocephala) 67 perfoliatus (Echinochasmus) 97 perforans (Spiroptera) 110 PÉRID1NIDÉS 52 Peridinium 52 perneti ( Epidermophyton) 13 pernigra (Melusina) 212 persicolor (Trichophyton) 11 persicus (Argas) 145 personatus (Reduvius) 192 perspicillum (Heterakis) 132 perstans (Filaria) 106 pertenue (Treponema) 51 pertinax (Melusina) 212 pertinens (Hâematopota) 219 perturbans (Hæmatobosca) 227 pfeifferi (Eimeria) 54 Pfenderius 89 phagocytoides (Amœba) 32 pharoensis (Gellia) 205 Pharyngobolus 238 phasianina (Hymenolepis) 76 Philœmatomyia 228 philippinensis (Homalogaster) 89 philippinensis (Microfilaria) 107 philippinus (Tæniarhynchus) 79 PHILOPHTHALMIDÉS 97 Philophthalmus 98 PHILOPT ÈRI DÈS 184 Philopterus 184 PHLÈBOTOMIN ÉS 201 phlebotomum (Bunostomum) 125 Phlebotomus 201 phœostomum (Menopon) 188 Phonergates 194 PHORIDÈS 222 phthirioides (Margaropus) 153 Phthirus 180 PHYGOMYGÈTES 1 phylloides (Demodex,) 176 Physaloptera 130 Physocephalus 256 PHYTOPHAGES 249 pictor (Aspergillus) 19 piliferus (Linognathus) 182 pilosum (Trichophyton) 10 pilosus (Ixodes) 148 pilosus (Trichodectes) 184 323 pintneri (Davainea) 72 Piophila 241 pipiens Culex) 206 pipistrelli (Clinocoris) 190 pireum (Blepharoprosthium) 57 piriformis (Heteromita) 38 Piromonas 37 PIROPL ASM ID ÉS 45 pisiformis (Gysticercus) 78 pisiformis (Taenia) 78 pityriasicus (Podurhippus) 179 Pityrosporum 28 Placobdella 138 planissima (Moniezia) 69 PLASMODIID ÉS 48 Plasmodium 48 PLASMODROMES 30 PLAT HELMINTHES 05 1 dectascinées 8 plica (Trichosoma) 113 plicatile (Trichophyton) 10 plinthopyga (Sarcophagal 231 pluto (Tabanus) 217 pluvialis (Anthomyia) 230 pluvialis (Hæmatopota 218 poculatum (Cylicostoinum) 127 Podurhippus 179 poirieri (Homalogaster) 89 Pollcnia 235 polonica (Bilharziella) 101 polychromogenes (Discomyces) 21 POLYDESMIDÉS 140 Poly desmus 140 polvgonum (Trichophyton) 10 POLYMASTIGIDÈS 40 POLYMASTIGINÉS 38 Polymorphus 136 polymorpbus (Echinococcus) 79 POLYTRIGHES 60 poriceps (Metatrombium) 156 Porocephalus 176 Porogynia 73 postciliata (Bütschlia) 57 potronii (Acremonium) 28 powelli (Microfilaria) 107 PRIONIENS 249 Prionotus 193 Pristirhynchomyia 228 probolurus (Trichostrongylus) 119 Probstmayria 104 PROCTOPHYLLODINÈS 171 production (Menopon) 188 proglottina (Davainea' 72 proglottina var. tlublanensis (Davainea) 72 proliferum (Sparganum) 83 prolificus (Cnemidocoptes) 165 prolixus (Rhodnius) 194 Prosimulium 211 PROSTHOGONIMIDÉS 98 Prosthogonimus 98 PROSTIGMATES 155 prostoma (Isotrichai 59 PROSTRIÉS 147 Proteocephalus 65 Proteosoma 49 proteus (Discomyces) 22 Protoclepsis 138 PROTOMONADINÈS 35 PROTOZOAIRES 30 protractus (Conorhinus) 193 Prowazekia 41 pruinosa iMelusinai 212 Pseudamphistomum 94 Pseudodiscus 88 pseudo-felineus (Opisthorchis) 93 pseudo-pallida (Spirochæta) 50 pseudopictus (Myzorhynchus) 204 pseudo-tropicalis (Endomyces) 6 psittaci (Hectopsylla) 200 Psoroptes 166 PSYCHODIDÉS 201 PTÈ ROLIGHIN ÉS 168 » Pterolichus 169 Pterophagus 171 PTÉRYGOTES 179 pubescens (Microsporum) 15 pubis (Plithirus) 181 pulchellus (Rbipicepbalus) 153 Pulex 196 pulicaris (Gulicoides) 209 PULICIDÈS 196 PULIGINÈS 196 pulmonalis (Amœbal 32 pulmonalis (Discomyces) 21 pulmonalis (Trichomonas) 39 pulmonaris (Strongylus) 120 punctata (Gooperia) 120 punctata (Hæmapbysalis) 151 punctatus (Pediculus) 180 punctigera (Lyperosia) 227 punicus (Proteocephalus) 66 PUP1PARES 244 purkinjei (Opbryoscolex) 62 purpureum (Tricbophyton) 12 purpureus (Rhinœstrus) 238 pursati (Anopheles) 203 pusilla (Heterakis) 133 pusillum (Microtrombidium) 156 pusillus (Mucor) 2 pustulosus (Paracbordodes) 134 putorium (Pycnosoma) 233 putrefaciens (Anguillulina) 103 putus (Ixodes) 148 Pycnosoma 233 Pycnosporium 28 pyogenes (Botrytis) 27 pyogenes (Spirochæta) 50 pyophila (Menas) 37 Pyretophorus 204 Q quadrata (Didesmis) 64 quadriguttatus (Tabanus) 217 quadrimaculatus (Lipeurus) 185 quadriradiatus (Strongylus) 120 quadrivittata (Melusina) 212 quinckeanum fAchorion) 26 R racemosus (Mucor) 2 radiatum (Cylicostomum) 127 radiatum (Œsophagostomum ) 121 radiatus iDiscomyces) 22 radiolatum (Tricbophyton) 11 raillieti ("Spirochæta) 51 Kaillietia 145 ramosa (Lichtheimia) 3 Rasahus 194 rasus (Ixodes) 148 rathouisi (Fasciolopsis) 91 recondita (Filaria) 106 rectangulus (Goniocotes) 185 reclus (Strongylus?) 123 recurrentis (Spirochæta) 50 recurvatum (Echinostoma) 96 RÈDUVIIDÈS 192 Reduviolus 195 Reduvius 192 rellexus (Argas) 145 Psoroptes 325 refringens (Spirochæta) 50 regaudi (Spirochæta) 51 regina (Lucilia) 232 regnieri (Licbtheimia) 3 regulare (Trichophyton) • 10 renggeri (Gonorbinus, 193 repens (Aspergillus) 17 repens (Dirofilaria) 108 restiformis (Agamomermis) 112 rePcularis (Amœba) 32 reticulata (Oncbocerca) 109 reticulatus (Dermacentor) 151 reticulatus (Dispbaragus) 1 11 retortæformis (Tricliostrongylus) 118 retusum (Trichosorna) 113 revolutum (Echinostoma) 96 revnieri (Indiella) 22 Rhabditis 103 Rhctgio 219 RHAGIONIDÊS 219 Rhinocladium 25 Rhinocoris 192 Rhinœstrus 237 rhinolethrum (Sternostoma) 144 Rhinomyza 214 RHINONYSSINÉS 143 Rhinosporidium 56 Rhipicentor 154 Rhipicephalus 153 Rhizoglyphus 174 rhizoïdea (Cercomonas) 36 RIIIZOMASTIGIDÉS 35 Rhizomucor 3 RHIZOPODES 30 Rhizopus 3 rbodt'si (Tbelazia) ! 08 rhodesiense (Trypanosoma) 43 Rhodnüts 194 rhoi (Endomyces) 6 RHYNCHOBDELLIDÉS 137 ricinus (Ixodes) 147 ricinus var. ovatus (Ixodes) 148 ricinus var. scapularis 1 Ixodes) 147 Rivoltasia 172 robustus tŒsophagodontus) 127 rodhaini (Cordylobia) 234 rogieri (Cryptococeus) 8 romanorum (Microfilaria) 107 rosenbachi (Discomyces) 21 roseum (Trichothecium) 24 roseus (Saccharomyces) 6 rosseteri (Echinocotyle( 77 rossii (Myzomyia) 203 rossii (Spirochæta) 51 rostrata (Pangonia) 215 rostratum iDiplodinium) 63 rostratum (Entodinium) 63 rostratus (Falculifer) 169 rotunda (Heteromita) 38 rotundatus (Glinocoris) 190 rubicundus (Ixodes) 148 rubidus (Strongylus) 120 rubrithorax (Melusina) 212 rubrofasciatus (Gonorbinus) 193 rubrum (Epidermophyton) 13 rudis (Pollenia) 235 rufescens (Synthetocaulus) 117 ruficornis (Sarcophaga) 231 ruficrus (Tabanus) 217 rulipes (Aphiochæta) 222 rulipes (Hippobosca) 245 ruminantium (Dasvtricba) 59 rüppellii (Pangonia) 216 rural is Sarcophila) 231 326 scabiei var. cuniculi (Sarcoptes) 165 scabiei var. dromedarii (Sar- coptes) 164 scabiei var. equi (Sarcoptes) î 64 scabiei var. leonis (Sarcoptes; 165 scabiei var. ovis (Sarcoptes) 165 scabiei var. parvulus (Sarcoptes) 165 scabiei var. suis (Sarcoptes) 165 scabiei var. vulpis (Sarcoptes) ! 65 scabiei var. wombati (Sarcoptes) 165 scalaris (Fannia' 229 scalaris (Tricbodectes) 184 schaudinni (Spirochæta) 50 schenki (Sporotrichum) 25 Schistosoma 100 SGHISTOSOMIDÈS 100 SCHIZOMÈTOPES 223 Schizotrypanum 43 schonleinii (Achorion) 16 scoliocœlium (Parampbistomum) 88 scolopaceus (Rhagio) 220 Scopulariopsis 253 seutatum (Gongylonema) 110 Scutigera 177 SCUTIGÈRIDÊS 177 scutistriata (Melusina) 212 secedens (Tabanus) 217 secundus (Gastrodiscus' 90 seguini (Microfilaria) 107 Seirci 179 SEPSIDÈS 241 serialis (Cœnurus) 79 serialis iMulticeps) 79 sericata (Lucilia) 232 serrata (Linguatula) 176 serra ta (Tænia) 78 serrata (Tricburis) 113 serratum 'Diphyllobothrium) 82 S sabouraudi (Trichophyton) 9 sabrazesi (Leucocytozoon) 44 Saccharomyces 5 SACGHAROM YGÉTIN ÉES 5 saginatus (Tæniarhynchus) 79 sagitta fHymenolepis) 76 sakurani fGryptococcus) 8 salmoni 'Dermacentor) 152 saltatrix (Fannia) 229 samboni (Saccharomyces) 5 sangeri (Bathmostomum) 125 sanguinaria (Stygeromyia) 227 sanguinarius (Nephrophages) 162 sanguineus (Rhipicephalus) 153 sanguinis equi (Microfilaria) 107 sanguinolenta (Spiroptera) 110 sanguinolentus (Bdellolarynx) 228 sanguisugens (Hæmatobia) 227 saïiguisugus (Gonorhinus) 193 Sarcocystis 55 Sarcophaga 231 SARGOPHAGINÉS 230 Sarcophila 231 SA RGOPS YLL1DÉS 199 Scircopterinus 158 Sarcoptes 164 SARGOPTIDÈS 163 SARGOPTOIDÉS 162 SARCOSPORIDIES 55 sauli (Tarsonemus) 162 savignyi (Ornithodoros) 146 scabiei (Sarcoptes) 164 scabiei var. aucheniæ (Sarcoptes) 165 scabiei var. canis (Sarcoptes) 164 scabiei var. eapræ (Sarcoptes) 164 scabiei var. crustosæ (Sarcoptes) 165 327 serratus (Triodontophorus) 128 Setaria 107, 256 setigera (Hymenolepis) 76 sexalatus iPhysocephalusi 256 sexcoronatum (Dipylidium) 74 siamense (Paramphistomuni) 87 siamensis (Fischœderius) 86 siamensis (Sarcocystis) 55 siebenmanni (Aspergillus) 17 silacea (Ghrysops) 214 Si/p ha 252 SILPHIDÈS 25! SILPHIENS 251 SILPHINÉS 251 Silvanus 250 similis (Geophilus) , 178 Simondsia 112 simplicicolor (Melusina) 212 sirnulans (Opisthorchis) 93 SIMULIIDÉS 211 Simulium 211 simus (Rhipicephalus) 153 sinensis (Glonorchis) 94 sinensis (Myzorhynchus) 205 SIPHONAPTÈRES 195 sipuneuliformis (Strongylus ?) 123 siro (Tyroglyphus) 173 sitiens (Culex) 206 smitlii (Leucocytozoon) 44 socialis (Tabanus) 217 sodalis (Geophilus) 178 Solevopotes 182 solium (Taenia) 78 somaliensis (Indiella) 23 sordidella 'Johannseniella) 210 soudanense (Trypanosoma) 42 Sparganum 83 spathiger (Nematodirus) 120 spatiosus (Garmyerius) 86 spatiosus (Gastrothylacias) 86 spermaticus (Histiogaster) 174 sphærocephalus(Echinorhynchus) 136 sphærocephalus (Trichodectes) 184 Sphœromonas 36 sphénoïdes 'Arnœbotænia) 74 spieularia (Filaria) 106 Spilopsyllus 198 spindale (Schistosoma) 101 spinifera (Ortholfersiai 245 spinigera (Hæmaphysalis) 151 spinigerum (Gnathostoma) 105 spinosa (Amœba) 32 spinosa 'Eidamella) 16 spinosus (Mucor) 2 spiralis (Dispharagus) 111 spiralis (Trichinella) 114 Spirochœtci 50, 255 SPIIIOCHÉTII) ES 49 Spirodinium 64 Spiroptera 110 splendidum (Amblyomma) 150 spongoïdes (Trichophyton) 10 Sporotrichum 25 squamosa (Neocuterebra) 239 stabulans iMuscina) 230 stabularis (Lælaps) 144 stanleyi (Pseudodiscus) 88 STAPHYLINIFORMES 251 Stegomyia 206 stellata (Hemispora) 27 stenocephala (Uncinaria) 124 stenogyrata (Spirochæta) 51 stenopsis (Linognathus) 182 ST ÉPHANOP HARYNGIN ÈS 88 Stephanopharyvx 88 stephanostomum var. Tiiomasi (Œsophagostomum) 121 Stephanurus 129 stephensi (Nyssorhynchus '.05 stercoralis (Strongyloides) 104 stercorea (Chlamydophrys) 34 Sternostoma 143 stiedæ (Eimeria) 54 stigmaticalis (Ghrysops) 214 Stilesia 70 stimulans (Hæmatobia' 227 STOMOXYNÉS 224 Stomoxys 226 stramineum (Menopon) 188 streptocœlium (Paramphistomum) 87 striaticeps (Trombidium) 155 striatum (Amblyomma) 150 strictus (Pterophagus) 171 Strigea 102 strigosum (Graphidium) 118 strigosus iRhagio) 220 STRONGYLIDÉS 115 strongylina (Spiroptera) 110 STRONGYLINÈS 121 Strongyloides 104 Strongylus 122 strumosum (Gorynosoma) 137 strumosum (Trichosoma) 113 struthionis (Davainea) 71 struthionis (Hippobosca) 245 Stygeromyia 226 stylifer (Goniodes) 186 subcoleoptratus (Reduviolus) 195 subnigra (Melusina) 212 subpallida (Melusina) 212 subrostratus (Trichodectes1 184 subterraneus (Haplophilus) 178 subtile (Oïdium) 26 suffuscus (Liponyssus) 142 suis (Agamodistomum) 93 suis (Hæmatopinus) 181 suis (Trichomonas) 39 suis (Trypanosoma) 42 suis adventicius ( Hæmatopinus) 181 sulfureum (Trichophyton) 10 superpictus (Pyretophorus) 204 supertritus (Rhipicephalus) 154 surinamensis (Silvanus) 250 suum (Ascaris) 131 sylviarum (Liponyssus) 143 symbiotes (Ghorioptes) 1G6 symbiotes var. bovis (Ghorioptes) 167 symbiotes var. capræ (Gho- rioptes) 167 symbiotes var. cuniculi |Cho- rioptes) 167 symbiotes var. equi (Ghorioptes) 167 symbiotes var. ovis (Ghorioptes) 167 Symphoromyia 220 Syneth.es 86 synethes (Garmyerius) 86 synethes (Synethes) 86 SYNGAMÈÉS 128 Syngamus 128 Synthetocaul us 117 syriaeum (Hyalomma) 149 Syrwgophilus 157 SYRPHIDÈS 221 T TABANIDÉS 213 tabaniformis (Glossina) 226 TABANINÈS 216 Tobanus 216 tabulatum (Peridinium) 52 Tachina 241 TAGHININÈS 241 tacliinoides 226 329 taciturna (Hæmatopota) 219 Tænia 77 Tœniarhynchus 79 tæniatus (Echinorbyncbus) 136 TÆNIIDÊS 77 tæniola (Tabanus) 217 Tœniorhynchus 207 talaje (Ornithodoros) 146 tanigucbii (Filaria) 106 tarandi 78 tarandi (Œdemagena) 236 tardum (Microsporum) 14 TARSONÉMIDÉS 160 TARSONÉMINÈS 161 Tarsonemus 161 telarius (Tetranychus) 157 TÉLOSPORIDIES 52 TENDIPÈDIDÉS 208 Tenebrio 249 TÊNÈBRIONIDÉS 248 TÈN ÈBRIONIENS 248 TÉN È B RIONIN ÈS 248 tenella (Sarcocystis) 55 teniæformis (Tænia) 78 tenuicollis (Gysticercus 78 tenuirostris (Hymenolepis) 76 tenuirostris (Ixodes) 148 tenuis (Trichostrongylusj 119 Ternidens 122 terrestris (Julus) 140 Tersesthcs 209 tessellata (Protoclepsis) 138 testudinarium (Arnblyomma) 150 tetracanthum .Gylicostomuni) 126 tetragona (Amœba) 33 tetragona (Davainea) 72 TÈTRAMITIDÈS 39 Tetramitus 39, 254 TÈTRAN Y GHID ÈS 157 Tetranychus 157 T ÈTRAPHYLLIDIENS 65 texana (Ascaris) 131 theileri (Spirochæta) 50 theileri (Trypanosoma) 42 Theilvria 46 Thelazia 108 theobaldi (Nyssorhynchus) 205 thibiergei (I)iseomyces) 21 tholloni (Arnblyomma) 150 tholozani iOrnithodoros) 147 tboracinus tTabanus) 217 Thysanosoma 69 TH YSANOSO MINÉS 69 Tichomyza - 243 tlalsabuate (Trombidium) 156 togolense (Trypanosoma) 43 tokishigei (Cryptococcus) 7 tolosanus (Parachordodes) 134 tomentosum (Microsporon) 15 tomentosus (Tabanus) 217 tonsurans (Trichophyton) 9 torquens (Hæmatopota) 219 torrens (Tersesthes) 209 torrentium (Gurupira) 213 Toxciscaris 132 Toxoplasma 47 tozeuri (Oospora) 27 trachealis (Syngamus) 128 transvaaliense (Trypanosoma) 42 TRKMATODES 83 Treponema 51 Ti'iadinium 64 triangularis (Paraisotricba) 60 Trichinella 114 trichiura (Tricburis) 1 ! 3 Trichodectes \ 83 330 TRICHODECTIDÉS 183 tricbodectis (Gryptocystis) 73 Trichomastix 254 Trichomonas 39, 254 Trichophyton 8 Trichosoma 113, 255 Trichosporum 23 Trichostrongylus 118 Trichothecium 24 TRICHOTRACHÉLIDÈS 112 Trichuris 112 tricolor (Hystrichis) 114 tricuspidatus (Paragordius) 134 tricuspis (Ollulanus) 130 tricuspis (Rhipicepbalus) 154 trifida (Dstertagia) 119 trifurcata (Ostertagia) 119 trigonocephalum (Bunostomum) 125 trigonocephalum (Menoponj 188 trigonophora (Moniezia) 69 triguttatum (Amblyomma) 150 trimaculatum (Aponomma' 149 trinchesei (DipylidiumJ 74 7'rinoton 188 Triodontophorus 1^7 triserialis (Notocotyle/ 84 TROMB1DIDÊS 155 Trombidium 155, 156 trompe (Geplienomyia) 235 tropica (Malassezia) 23 tropica (Nuttallia) 47 tropicale (Oïdium) 26 tropicalis (Amœba) 33 tropicalis (Endomyces; 6 tropicus (Tabanus; 218 Tropisurns 111 trucbisi (Licbtbeimia) 3 truncata (Eimeria) 54 truncata (Paraisolricba) 60 truncata (Pbysaloptera) 130 truncatum iPseudamphistomum) 94 truncatus (Goniodesj 186 TIl Y P A NO PL ASM 11) ËS 40 Trypanosoma 41, 255 TRYPANOSOMIDÊS 41 tuberculatum (Paramphistomum) 88 tuberculatus (Hæmatopinus) 181 Tubifera 222 tubifex (Eustrongylides) 115 tumefaciens (Saccharomyces' 5 turicata (Ornitbodoros) 146 turkhudi (Myzomyia) 203 Tydeus 160 Typhlocœlum 84 TYROGLYPHIDÉS 172 Tyroglyphus 173 U ugandanus (Ixodes) 148 umbilicatum (Trichophyton) 10 umbonatum (Microsporuin) 14 Uncinaria 123 uncinala (Blepharocorys) 58 uncinatus (Cheletoides) 58 uncinatus (Cliilodon) 58 uncinatus Tlispliaragus) 111 uncipborus (Syntbetocaulus) 117 undulans (Aniœl)a) 32 unguiculata vTrichuris) 113 uniforme iTrypanosoma) 43 uniformis (Mansonia) 207 unilineatus (Tabanus) 218 urinarius (Bodo) 38 urogenitalis (Amœba) 31 Uronema 58 331 urosuhulatum (Crassisoma) 124 Ustilago 29 ustus (Tahanus) 217 utero-vaginalis vitulæ (Tricho- monas) 39 V vaccinæ (Spirochæta) 50 vaginalis (Gercomonas) 36 valvata (Blepliarocorys) 58 valvulas destruens hovis (Dis- comyces) 21 vandersandei (Microtromhidium) 156 variabile (Dithyridium) 81 variahilis (Dermacentor) 152 varians (Davainea) 72 varians (Dermoglyphus) 170 variatus (Tabanus) 217 variegatum (Amblyomma) 150 variegatus (Conorhinus) 193 variegatus (Dermacentor) 152 varius (Culicoides) 210 varius (Paragordius) 134 vasorum (Hæmostrongylus) 118 velata (Megninia) 171 velveticum (Microsporum) 14 venezuelense (Trypanosoma) 43 ventricosus (Hæmodipsus) 182 ventricosus (Pediculoides) 161 venulosum (Œsophagostomum) 121 venusta (Hymenolepis) 76 venusta (Melusina) 212 venustus (Dermacentor) 152 vermicularis (Amœba) 32 vermicularis (Oxyuris) 133 VERMIFORMES 175 Vermipsylla 199 VERMIPSYLLINÉS 199 verrucosa (Gatatropis) 85 verrucosum (Gongylonema) 110 verrucosum (Trichophyton) 12 VERS 65 versicolor (Amblyomma) 150 versicolor (Hippocentrum) 219 Verticillium 24 vesicularis (Heterakis) 130 yespertilionis (Argas; 146 vesuviana (Chætecheline) 178 viaticus (Achorutes) 179 victoriensis (Argas i 146 villosa \Galliphora) 234 villosa (Hymenolepis) 75 villosum (Microsporum) 15 vincenti (Anopheles) 203 vincenti (Spirochæta) 50 vinosum (Trichophyton) 12 violaceum (Achorion) 253 violaceum (Trichophyton) 9 violaceus (Parachordodes) 135 viride (Balantidium) 61 viridula (Gompsomyia) 233 visceralis (Eustrongylus) 114 vitrinus (Trichostrongylus) 119 yittata (Stilesia) 71 vituli (Linognatlms) 182 vitulorum (Ascaris) * 131 vivax (Plasmodium) 49 vivax (Trypanosoma) 42 vivipara (Prohstmayria) 104 viviparus (Dictyocaulus) 117 vogti (Moniezia) 69 volvulus (Oncliocerca) 109 volzi (Davainea) vomitoria (Calliphora) 233 vryburgi (Agriostomum) 122 vulgaris (Strongylus) 123 332 w watsoni (Watsonius) 89 Watsonius 89 weinbergi (Prowazekia) 41 wellingtoni (Hæmaphysalis) 151 wellmanni (Melusina) 212 westermani (Paragonimus) 92 wichmanni (Microtrombidium) 156 williamsi (Amœba) 253 Wohlfahrtia 231 X xanthosomus (Metorcliis) 94 Xenopsylla 197 Z zeylanica (Hæmadipsa) 139 zeylanica (Heteromita) 38 zieraanni (Anopheles) 203 ziemanni (Rliipicephalus) 154 zonata (Pangonia) 215 Zschokkeella 69 zürni (Eimeria) 54 ZYGOMYCÈÏES 1